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用 FDA二乙酸熒光素和 PI碘化丙啶對細胞球狀體進行活力染色操作手冊

瀏覽次數(shù):1191 發(fā)布日期:2024-9-6  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負
前言

基于熒光染色的細胞活力檢測法可用于評估哺乳動物細胞的活力。同時使用兩種熒光染料可以對活細胞群和死細胞群進行雙色區(qū)分。在本應(yīng)用指南中,我們介紹了一種使用二乙酸熒光素(FDA)和碘化丙啶(PI)的染色方案,它們可分別對存活細胞和死亡細胞進行染色。染色方案適用于貼壁細胞、嵌入細胞外基質(zhì)的單細胞3D細胞簇,例如細胞球狀體。

實驗原理

在生物學(xué)研究中,F(xiàn)DA(二乙酸熒光素)和PI(碘化丙啶)被用作活/死細胞的染色劑。FDA 能夠被細胞吸收,并在酯酶的作用下,無熒光的 FDA 可被轉(zhuǎn)化為帶綠色熒光的代謝物熒光素。這種轉(zhuǎn)化過程可以作為細胞活力的指標(biāo),因為它依賴于活細胞內(nèi)的酯酶活性。

與之相對,PI 作為一種細胞核染色染料,它無法穿越活細胞的完整細胞膜。然而,當(dāng)細胞死亡時,其細胞膜的結(jié)構(gòu)會發(fā)生變化,PI能夠通過這些無序的區(qū)域進入細胞核,并與 DNA 雙螺旋結(jié)構(gòu)結(jié)合。

實驗材料與設(shè)備
  • 二乙酸熒光素(FDA)

將 5 mg FDA 溶解在 1 mL 丙酮中,配制得 FDA 儲存液(儲存液需 -20 °C 保存)

  • 碘化丙啶

將 2 mg PI 溶于 1 mL PBS( 4 °C 儲存),配制得 PI 原液。

  • 不含胎牛血清的細胞培養(yǎng)

  • 磷酸鹽緩沖液或其他緩沖液

  • 帶 Texas Red 和 FITC 濾片的倒置熒光顯微鏡

 

染色步驟

為確保實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性,染色體系應(yīng)即配即用,且其有效使用時間應(yīng)嚴(yán)格控制在 2 h 以內(nèi)。在非使用時段,為確保染色體系的穩(wěn)定性和有效性,應(yīng)將其避光保存,并置于 4°C 恒溫條件下進行保存。

圖 1:二乙酸熒光素/碘化丙啶染色體系

針對單個細胞的染色步驟

對于粘附在培養(yǎng)表面或嵌入細胞外基質(zhì)中的單細胞,建議采用以下染色方案:

  1. 根據(jù)圖1所示之配方,準(zhǔn)確配制染色體系,并將其存放在 4 ℃ 冰箱中冷藏;
  2. 將細胞離心后棄上清(去除細胞培養(yǎng)基);
  3. 加入染色體系——其體積應(yīng)基于所用載玻片或培養(yǎng)皿的尺寸和規(guī)格確定(請參考相應(yīng)的產(chǎn)品規(guī)格說明);
  4. 在室溫下避光孵育細胞 4~5 min;
  5. 將細胞離心后棄上清(去除染色體系);
  6. 用適量磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗樣本,以去除殘留的染色體系;
  7. 加入 PBS 或不含胎牛血清的培養(yǎng)基;
  8. 使用熒光顯微鏡觀察細胞。
針對 3D 細胞培養(yǎng)的染色步驟

以下方案適用于 3D 細胞培養(yǎng),如細胞球狀體、組織等:

  1. 根據(jù)圖1所示之配方,準(zhǔn)確配制染色體系,并將其存放在 4 ℃ 冰箱中冷藏;

  2. 收集細胞團;如有必要,將細胞培養(yǎng)體系離心后棄上清,以收集細胞團;

  3. 離心后棄上清;

  4. 精確加入 1 mL 染色體系;

  5. 在室溫下避光孵育細胞 4~5 min;

  6. 將細胞離心后棄上清(去除染色體系);

  7. 用適量磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗樣本,以去除殘留的染色體系;

  8. 加入 PBS 或不含胎牛血清的培養(yǎng)基;

  9. 將細胞團轉(zhuǎn)移至 ibidi µ-Slide 8 孔腔室載玻片中(ibidi, 80826);

  10. 使用熒光顯微鏡觀察細胞。

    ibidi, 80826

常見實驗問題

1.信號弱

針對信號弱的問題,建議根據(jù)實驗的具體情況調(diào)整染料濃度或延長孵育時間。同時,務(wù)必確保染色液的使用時間不超過兩小時,以保持其活性。另外,建議將染色液儲存于 4°C 的避光環(huán)境中。

2.背景信號高

高背景信號可能由培養(yǎng)基成分引起,這些成分可能干擾熒光信號的檢測。為確保實驗的準(zhǔn)確性,推薦使用不含血清的培養(yǎng)基。另外,可嘗試使用無酚紅培養(yǎng)基或磷酸鹽緩沖液(PBS)作為替代。在除去染色液后,增加額外的清洗步驟有助于降低背景信號的干擾。

3.光漂白效應(yīng)

熒光信號可能因光漂白效應(yīng)而隨時間減弱。因此,快速操作對于保持實驗條件的一致性和可重復(fù)性至關(guān)重要。在處理大量樣品時,建議分批次進行染色,每次僅處理有限數(shù)量的樣品。為確保細胞的最佳生長條件,建議使用 ibidi 載物臺培養(yǎng)箱進行培養(yǎng)。

ibidi 載物臺培養(yǎng)箱
 

應(yīng)用示例

1.對單個細胞進行染色

貼壁細胞系 MDA-MB-231 的活力染色顯示細胞活力很高(從左到右:相差顯微鏡鏡檢(明場)圖像、示 PI 信號圖像、示 FDA 信號圖像、FDA 和 PI 信號的疊加場圖像)比例尺:200 μm

對包埋在膠原基質(zhì)膠中的 Jurkat 細胞進行活力染色,結(jié)果顯示細胞活力為 65%。(A:相差顯微鏡鏡檢(明場)圖像;B:示 PI 信號圖像;C:示 FDA 信號圖像;D:FDA 和 PI 信號的疊加場圖像)比例尺:200 μm。

2.對細胞球狀體進行染色
 

MCF-7 細胞球狀體的活力染色(從左到右:相差顯微鏡鏡檢(明場)圖像、示 PI 信號、示 FDA 信號、FDA 和 PI 信號的疊加場圖像)比例尺:200 μm。
 

MCF-7 細胞球狀體的共聚焦激光掃描顯微鏡圖像顯示了球狀體的內(nèi)部結(jié)構(gòu):壞死的中心被一層有活力的細胞包圍(從左到右:示 PI 信號圖像、示 FDA 信號圖像、FDA 和 PI 信號的疊加場圖像)。標(biāo)尺:200 μm


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