基于熒光染色的細胞活力檢測法可用于評估哺乳動物細胞的活力。同時使用兩種熒光染料可以對活細胞群和死細胞群進行雙色區(qū)分。在本應(yīng)用指南中,我們介紹了一種使用二乙酸熒光素(FDA)和碘化丙啶(PI)的染色方案,它們可分別對存活細胞和死亡細胞進行染色。染色方案適用于貼壁細胞、嵌入細胞外基質(zhì)的單細胞和3D細胞簇,例如細胞球狀體。
實驗原理在生物學(xué)研究中,F(xiàn)DA(二乙酸熒光素)和PI(碘化丙啶)被用作活/死細胞的染色劑。FDA 能夠被細胞吸收,并在酯酶的作用下,無熒光的 FDA 可被轉(zhuǎn)化為帶綠色熒光的代謝物熒光素。這種轉(zhuǎn)化過程可以作為細胞活力的指標(biāo),因為它依賴于活細胞內(nèi)的酯酶活性。
與之相對,PI 作為一種細胞核染色染料,它無法穿越活細胞的完整細胞膜。然而,當(dāng)細胞死亡時,其細胞膜的結(jié)構(gòu)會發(fā)生變化,PI能夠通過這些無序的區(qū)域進入細胞核,并與 DNA 雙螺旋結(jié)構(gòu)結(jié)合。
實驗材料與設(shè)備二乙酸熒光素(FDA)
將 5 mg FDA 溶解在 1 mL 丙酮中,配制得 FDA 儲存液(儲存液需 -20 °C 保存)
碘化丙啶
將 2 mg PI 溶于 1 mL PBS( 4 °C 儲存),配制得 PI 原液。
不含胎牛血清的細胞培養(yǎng)基
磷酸鹽緩沖液或其他緩沖液
帶 Texas Red 和 FITC 濾片的倒置熒光顯微鏡
染色步驟
為確保實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性,染色體系應(yīng)即配即用,且其有效使用時間應(yīng)嚴(yán)格控制在 2 h 以內(nèi)。在非使用時段,為確保染色體系的穩(wěn)定性和有效性,應(yīng)將其避光保存,并置于 4°C 恒溫條件下進行保存。
圖 1:二乙酸熒光素/碘化丙啶染色體系
針對單個細胞的染色步驟對于粘附在培養(yǎng)表面或嵌入細胞外基質(zhì)中的單細胞,建議采用以下染色方案:
以下方案適用于 3D 細胞培養(yǎng),如細胞球狀體、組織等:
根據(jù)圖1所示之配方,準(zhǔn)確配制染色體系,并將其存放在 4 ℃ 冰箱中冷藏;
收集細胞團;如有必要,將細胞培養(yǎng)體系離心后棄上清,以收集細胞團;
離心后棄上清;
精確加入 1 mL 染色體系;
在室溫下避光孵育細胞 4~5 min;
將細胞離心后棄上清(去除染色體系);
用適量磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗樣本,以去除殘留的染色體系;
加入 PBS 或不含胎牛血清的培養(yǎng)基;
將細胞團轉(zhuǎn)移至 ibidi µ-Slide 8 孔腔室載玻片中(ibidi, 80826);
使用熒光顯微鏡觀察細胞。
ibidi, 80826
常見實驗問題
1.信號弱針對信號弱的問題,建議根據(jù)實驗的具體情況調(diào)整染料濃度或延長孵育時間。同時,務(wù)必確保染色液的使用時間不超過兩小時,以保持其活性。另外,建議將染色液儲存于 4°C 的避光環(huán)境中。
2.背景信號高高背景信號可能由培養(yǎng)基成分引起,這些成分可能干擾熒光信號的檢測。為確保實驗的準(zhǔn)確性,推薦使用不含血清的培養(yǎng)基。另外,可嘗試使用無酚紅培養(yǎng)基或磷酸鹽緩沖液(PBS)作為替代。在除去染色液后,增加額外的清洗步驟有助于降低背景信號的干擾。
3.光漂白效應(yīng)熒光信號可能因光漂白效應(yīng)而隨時間減弱。因此,快速操作對于保持實驗條件的一致性和可重復(fù)性至關(guān)重要。在處理大量樣品時,建議分批次進行染色,每次僅處理有限數(shù)量的樣品。為確保細胞的最佳生長條件,建議使用 ibidi 載物臺培養(yǎng)箱進行培養(yǎng)。
ibidi 載物臺培養(yǎng)箱
MCF-7 細胞球狀體的活力染色(從左到右:相差顯微鏡鏡檢(明場)圖像、示 PI 信號、示 FDA 信號、FDA 和 PI 信號的疊加場圖像)比例尺:200 μm。
MCF-7 細胞球狀體的共聚焦激光掃描顯微鏡圖像顯示了球狀體的內(nèi)部結(jié)構(gòu):壞死的中心被一層有活力的細胞包圍(從左到右:示 PI 信號圖像、示 FDA 信號圖像、FDA 和 PI 信號的疊加場圖像)。標(biāo)尺:200 μm
廣州科適特科學(xué)儀器有限公司是德國ibidi公司在中國區(qū)合作伙伴
如果你感興趣請和我們聯(lián)系
電話:020-38102730
服務(wù)QQ:501747125
郵箱:info@kosterscience.com
地址:廣州市天河區(qū)體育西路駿匯大廈北塔110 D房