免疫熒光技術(Immunofluorescence technique)又稱熒光抗體技術,是標記免疫技術中發(fā)展最早的一種。它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術。很早以來就有一些學者試圖將抗體分子與一些示蹤物質結合,利用抗原抗體反應進行組織或細胞內抗原物質的定位。
一.傳統(tǒng)的免疫熒光實驗步驟
(一)、實驗材料
1. 細胞樣品
2. 試劑、試劑盒: 多聚甲Quan;70% 甲醇;丙Tong;PBS;Triton ;BSA;DAPI 染液;DABCO;Tris;甘油
3. 儀器、耗材:玻片
(二)、實驗步驟
細胞爬片免疫熒光實驗步驟
第一天:
1. 在培養(yǎng)板中將已爬好細胞的玻片用 PBS 浸洗 3 次,每次 3 min;
2. 用 4% 的多聚甲Quan固定爬片 15 min, PBS 浸洗玻片 3 次,每次 3 min;
3. 0.5%Triton X-100( PBS 配制 ) 室溫通透 20 min(細胞膜上表達的抗原省略此步驟);
4. PBS 浸洗玻片 3 次,每次 3 min,吸水紙吸干 PBS,在玻片上滴加正常山羊血清,室溫封閉 30 min;
5. 吸水紙吸掉封閉液,不洗,每張玻片滴加足夠量的稀釋好的一抗并放入濕盒,4℃ 孵育過夜;
第二天:
6. 加熒光二抗: PBST 浸洗爬片 3 次,每次 3 min,吸水紙吸干爬片上多余液體后滴加稀釋好的熒光二抗,濕盒中 20-37℃ 孵育 1 h,PBST 浸洗切片 3 次,每次 3 min;注意:從加熒光二抗起,后面所有操作步驟都盡量在較暗處進行。
7. 復染核:滴加 DAPI 避光孵育 5 min,對標本進行染核,PBST 5 min×4 次洗去多余的 DAPI;
8. 用吸水紙吸干爬片上的液體,用含抗熒光淬滅劑的封片液封片,然后在熒光顯微鏡下觀察采集圖像
二 傳統(tǒng)免疫熒光實驗主要問題
1. 爬片效果欠佳
2. 細胞和試劑用量大,成本高
3. 染液分布不均
4. 操作繁瑣,費時費力
三. 一體化免疫熒光技術簡介
一體化的培養(yǎng)室-固定-染色-成像 免疫熒光的解決方案
技術特點:
1.快速簡便的樣品制備,一體化培養(yǎng)室簡化了免疫熒光染色方案
2.均勻細胞分布,通道載玻片幾何結構可以產(chǎn)生均勻的細胞分布
3.經(jīng)濟實惠的實驗方案,需要少量的細胞和試劑
4.高分辨率成像,適用于寬場熒光,共焦成像,F(xiàn)RAP-FRET-FLIM和高質量的相差成像(Phase Contrast)
主要工作模式:
1. 通道模式:ibidi通道載玻片是使用少量試劑的理想選擇。μ-Slides VI0.4是一般免疫熒光檢測的理想選擇,而μ-Slide I0.4Luer可在低密度培養(yǎng)和流動實驗中進行免疫熒光染色。
2.開放腔室模式
Ibidi μ-Slide 8 孔和μ-Dish35mm 能夠在全內腔中實現(xiàn)標準免疫熒光方案,無蓋玻片。染色后,使用高分辨率顯微鏡通過聚合物蓋玻片底部觀察樣品。
3. 可拆卸腔室載玻片模式
帶有腔室的可拆卸硅墊片為個體細胞培養(yǎng)和孵育提供了理想的模式。ibidi micro-Insert 4 Well可以使用極低的試劑量?刹鹦3Well|8Well|12 Well Chambers是長期樣品儲存的理想選擇。