1.         接種5 mL含有酵母攜帶所需質粒的YDP培養(yǎng)液，將其振蕩培養(yǎng)在30℃16-24小時。

2.         取1-3ml酵母培養(yǎng)菌體(使用< 2×107細胞)，室溫下5000× g離心5 min。

3.         棄培養(yǎng)液，收集菌體，加入480μL Buffer SE和30μL Lyticase solution。以最快的速度渦旋懸浮1min。充分懸浮細胞顆粒有助于提高得率。將其置于30℃消化30min左右。

注：在使用前確保β-mercaptoethanol已添加到Buffer SE (10µL /毫升)中，這種混合液可以在室溫很好的放置時間為1周。

4.         將混合液顆粒在4,000 x g室溫離心5min，棄上清完全。

5.         加入250 µL Buffer YPI重新懸浮混合液顆粒。

6.         加入50 mg 玻璃珠，然后以最快速度渦旋5min，讓樣品在玻璃珠作用下沉降穩(wěn)定下來。轉移上清至一個1.5ml離心管中。

7.         加入250 µL Buffer YPII，反復顛倒混勻離心管4-6次以獲得干凈的溶解產物。將其室溫放置5 min。

注：此步應避免高強度混合，因為這將使染色體DNA斷裂以及降低質粒純度。YPII在存儲時要蓋緊蓋子。

8.         加入350µL Buffer YP III，用手大幅度顛倒混勻樣品直到形成絮凝白色沉淀。室溫下13,000 × g離心10min。

9.         將干凈的上清液小心轉移至DNA Mini Column，取上清時盡量不要打擾顆粒與沉淀。室溫下10,000 × g離心30s。倒掉廢液，將吸附柱重新插入收集管中。

10.      向吸附柱中加入500 μL Buffer KB，12,000 rpm轉離心30秒，棄收集管與廢液。

11.      將吸附柱放入一個新的收集管中，加入650 μL Wash Bufffer（確保已加入乙醇），12,000離心30秒，倒掉廢液，將吸附柱重新插入收集管中。

注：Wash Buffer 用無水乙醇稀釋后使用。

12.      可選步驟：重復步驟11。

13.      13,000 rpm 開蓋離心2分鐘。

注：開蓋離心有助于去除殘留乙醇，乙醇的有效去除保證DNA的洗脫。

14.      將柱子放入一個新的1.5ml離心管中，向柱中加入50-100 µL Elution Buffer(10 mM Tris-HCL, pH 8.5)，室溫放置1 min，13,000 x g離心1 min進行洗脫。