mRNA m5C修飾的鑒定、效應分子、分子機制及其生理病理功能深度綜述
5-甲基胞嘧啶（m5C）是一種在轉運RNA（tRNA）和核糖體RNA（rRNA）中廣泛存在的核酸修飾，同時也在轉錄組中廣泛分布，是真核生物信使RNA（mRNA）的內部修飾之一。越來越多的證據(jù)證實了m5C在mRNA中的存在。隨著檢測技術的進步，尤其是亞硫酸鹽測序（bisulfite sequencing）的應用，m5C修飾在轉錄組中的分布和功能逐漸被揭示，人們對其在mRNA中的分子機制和生物學意義有了一定的初步認識。本文旨在全面總結m5C在mRNA中的鑒定與篩選、分布、分子功能和生物學功能的最新研究進展，并概述當前研究現(xiàn)狀，展望其未來潛在應用前景。
m5C修飾的鑒定和分布
m5C修飾已在多種RNA種類中被鑒定，包括核糖體RNA（rRNA）、轉運RNA（tRNA）、信使RNA（mRNA）、增強子RNA（eRNA），并且最近還在長非編碼RNA（lncRNA）、環(huán)狀RNA（circRNA）和微小RNA（miRNA）中檢測到m5C修飾。m5C修飾的研究最初集中在tRNA和rRNA上，而對mRNA的研究則相對滯后。然而近年來，用于檢測m5C修飾的高通量技術發(fā)展迅速，例如亞硫酸鹽測序（BS-seq）、5-氮雜胞苷交聯(lián)測序（Aza-IP）或單核苷酸分辨率交聯(lián)免疫沉淀測序（miCLIP-seq）。特別是超快速亞硫酸氫鹽測序（UBS-seq）和m5C-TAC-seq等新技術的出現(xiàn)，進一步提高了檢測的效率和準確性。由于上述高通量測序技術的進步，現(xiàn)在可以確定細胞RNA中m5C的整體分布情況。與DNA不同，mRNA m5C修飾相對較少，且由于其低豐度和高背景噪聲，對轉錄組范圍內的m5C圖譜進行繪制在技術上具有挑戰(zhàn)性。
B. 不同的RNA亞硫酸鹽測序分析流程用于鑒定mRNA中的m5C位點。Cs：未甲基化的胞嘧啶。
通過利用RNA亞硫酸鹽轉化與基于SOLiD技術的全轉錄組RNA測序相結合，首次以單堿基分辨率獲得了轉錄組中胞嘧啶修飾的高分辨率視圖。采用預定義的選擇標準，在mRNA序列中鑒定出8495個新的候選m5C位點，顯示出m5C在mRNA非翻譯區(qū)（UTR）和近Argonaute蛋白結合區(qū)域富集。
隨后，BS-seq轉向利用Illumina技術，并已在多種生物和條件下應用，不同研究采用不同的選擇標準來篩選潛在的m5C候選位點。其中一項研究利用BS-seq在人類HeLa細胞和多種小鼠組織中繪制了轉錄組范圍內的m5C圖譜，鑒定出1955個mRNA上的5065個m5C位點，揭示了mRNA m5C位點的中位甲基化水平約為20.5%，與mRNA假尿苷化程度相似。在這些位點的分布特征方面，m5C修飾主要位于編碼序列（CDS）中，主要在CG環(huán)境中，以及mRNA翻譯起始位點的下游區(qū)域。在小鼠組織樣本的m5C測序中，觀察到它們顯示出與小鼠和人類HeLa細胞中發(fā)現(xiàn)的中位甲基化水平和m5C分布模式相似的結果。這些發(fā)現(xiàn)表明，在哺乳動物細胞mRNA中，m5C的分布模式具有高度的保守性。進一步的研究揭示了不同小鼠組織和睪丸發(fā)育過程中m5C修飾的分布，表明了哺乳動物轉錄組中m5C修飾的保守性、組織特異性和動態(tài)特征。
另一項研究關注了小鼠胚胎干細胞（ESCs）和大腦中總和核poly(A) RNA的表觀轉錄組中胞嘧啶甲基化的全面圖譜，觀察到m5C位點在翻譯起始密碼子附近（如5'UTR末端和CDS起始處）有顯著積累，在編碼序列中耗竭，并在3'UTR中有混合的富集模式。通過比較ESCs和大腦組織中的甲基化位點，發(fā)現(xiàn)ESCs中有57%的甲基化位點在大腦組織中未甲基化。此外，這些差異甲基化通常不由差異表達引起，表明mRNA中的胞嘧啶甲基化可能以高度細胞和組織特異性的方式發(fā)生，與轉錄表達水平無關。
然而，不同研究中估計的mRNA m5C位點數(shù)量差異很大，觀察結果不一致，難以定義一組通用的mRNA底物或常見的甲基化目標序列。隨后，mRNA中m5C的研究轉向了更嚴格的位點鑒定。Rui Zhang等人開發(fā)了一種計算流程，以準確識別mRNA m5C位點，涵蓋了與轉化效率、覆蓋率和截止標準相關的標準。隨后，多個研究采用了這一工作流程。
圖2：m5C的全轉錄組測序方法示意圖。
A. 在RNA BS-seq中，亞硫酸鹽處理將未修飾的胞嘧啶脫氨基為尿嘧啶，而甲基化的胞嘧啶則保持不變。
B. 5-氮雜胞苷（5-aza-C）是一種胞嘧啶類似物，在轉錄過程中，RNA聚合酶會隨機將其摻入到初生（nascent ）RNA轉錄本的胞嘧啶位點。在m5C-RCMT催化結構域中，半胱氨酸殘基的硫原子與目標RNA堿基的C6位置形成共價鍵。隨后，通過甲基供體S-腺苷甲硫氨酸（SAM）的作用，目標胞嘧啶的C5位置發(fā)生甲基化。在C5甲基化后，通過后續(xù)的β-消除反應斷裂共價鍵，從而恢復自由酶。由于5-氮雜胞苷中C5位置的碳原子被氮原子（N）取代，共價鍵得以穩(wěn)定，最終導致細胞內內源性酶的耗竭，從而使RNA和DNA的甲基化水平降低。
C. 在甲基化過程中，保守的半胱氨酸殘基Cys1暫時與甲基化胞嘧啶形成共價鍵，而第二個半胱氨酸Cys2對于這種催化中間體的分解至關重要。在miCLIP中，Cys2突變?yōu)楸彼幔ˋla），便于捕獲催化中間體，并允許甲基轉移酶與內源性RNA靶標發(fā)生交聯(lián)，而無需光交聯(lián)。最終，這些交聯(lián)的表位標記的酶-底物復合體得以形成。
D. 從機制上講，BS-seq中存在兩條競爭性途徑：一條實現(xiàn)從C到U的期望轉化，另一條則導致不期望的DNA/RNA降解。超快速BS測序方法（UBS-seq）使用高濃度亞硫酸鹽（約10M）和98°C的高反應溫度，通過縮短反應時間來減少RNA降解，并提高反應溫度以實現(xiàn)完全的C到U轉化。
E. 在m5C-TAC-seq中，m5C被氧化為f5C，隨后用1,3-茚二酮（AI）的疊氮衍生物進行標記。這一過程通過生物素拉下來富集含有m5C的RNA，并在m5C位點誘導C到T的轉化。
總之研究表明，m5C修飾在mRNA中的分布具有一定的規(guī)律性。它主要集中在編碼序列（CDS）區(qū)域，尤其是在mRNA翻譯起始位點附近的區(qū)域。此外，m5C修飾在不同組織和細胞類型中表現(xiàn)出保守性、組織特異性和動態(tài)性。例如，在小鼠和人類細胞中，m5C修飾的分布模式高度保守。
m5C修飾的效應分子
m5C修飾是一個動態(tài)的過程，涉及三種主要的調控效應分子：甲基轉移酶（“writers”）、去甲基化酶（“erasers”）和結合蛋白（“readers”）。
B. NSUN2和NSUN6在tRNA和mRNA上偏好的修飾位點示意圖。NSUN2靶向甲基化人類中絕大多數(shù)tRNA的特定位點（C48、C49和C50）。NSUN6特異性地靶向帶有UCCA尾的tRNAThr和tRNACys的3'端C72位點。NSUN2依賴的位點傾向于包含m5CNGG motif，并且位于5'端。NSUN6主要催化II型m5C位點（m5CTCCA motif），其甲基化位點優(yōu)先富集在hairpin loops結構中心。
m5C修飾在mRNA中的分子功能
圖4：mRNA中m5C相關識別蛋白。mRNA上的m5C對翻譯調控有顯著貢獻。YBX1增強mRNA的穩(wěn)定性，其中YBX1冷休克結構域（CSD）中的W65是識別m5C核苷酸的關鍵殘基。ALYREF識別m5C修飾以促進mRNA出核；K171殘基與含有m5C的寡核苷酸結合。RNA上的m5C增強YBX2的液-液相分離，其中W100是識別m5C的關鍵殘基。SRSF2結合m5C標記并通過其“reader”功能調節(jié)NSUN2介導m5C的可變剪切效應。P95H突變降低SRSF2對RNA m5C的結合親和力。
m5C修飾的生物學功能和病理功能
B. ALYREF介導出核。
C. m5C可能通過某種未知的中間介質調控翻譯效率和核糖體占有率。
D. SRSF2優(yōu)先結合m5C-mRNA。NSUN2缺失會降低mRNA的m5C水平，并改變SRSF2的RNA結合和剪切。
E. RNA上的m5C調節(jié)依賴于YBX2的液-液相分離。
研究挑戰(zhàn)和未來展望
技術挑戰(zhàn)：
m5C修飾的檢測技術仍面臨一些挑戰(zhàn)，如亞硫酸鹽測序的不完全轉化和RNA降解問題。需要開發(fā)更精確、更靈敏的檢測技術，以實現(xiàn)對m5C修飾的全面和準確檢測。
臨床應用：
目前關于m5C修飾在疾病診斷、預后分析和治療效果評估中的研究還處于初級階段。需要進一步探索m5C修飾在疾病中的應用價值，開發(fā)相關的診斷和治療方法。
未來展望：
隨著新技術的不斷涌現(xiàn)，如超快速亞硫酸鹽測序、m5C-TAC-seq等，m5C修飾的研究將不斷深入。此外，對m5C修飾的分子功能、發(fā)育動態(tài)、進化意義等方面的研究也將進一步揭示其在生物體中的重要作用。
易小結：
本文全面總結了mRNA上m5C修飾的最新研究進展，包括其鑒定方法、分布特征、分子功能以及在生理和病理過程中的作用。文章強調了m5C修飾在多種生物學過程中的重要性，并指出了當前研究中存在的挑戰(zhàn)和未來的研究方向。隨著技術的不斷進步和研究的深入，m5C修飾有望成為疾病診斷和治療的新靶點。
RNA-BS-seq（RNA亞硫酸鹽測序）在m5C修飾檢測中發(fā)揮著重要作用
A. 確認m5C修飾的存在
在RNA-BS-seq技術出現(xiàn)之前，由于檢測方法的限制，研究人員無法精確驗證mRNA中是否存在m5C修飾。早期的研究主要集中在tRNA和rRNA中的m5C修飾，而對mRNA中的m5C修飾知之甚少。而RNA-BS-seq通過亞硫酸鹽處理將未修飾的胞嘧啶（C）轉化為尿嘧啶（U），而甲基化的胞嘧啶（m5C）則保持不變。這種技術首次在轉錄組水平上確認了m5C修飾的存在，并且能夠以單堿基分辨率進行檢測。
B. 繪制m5C修飾的全轉錄組圖譜
RNA-BS-seq結合高通量測序技術，能夠對細胞中的RNA進行整體分析，從而繪制出m5C修飾的全轉錄組圖譜。這使得研究人員能夠系統(tǒng)地了解m5C修飾在不同RNA種類（如mRNA、tRNA、rRNA等）中的分布情況。且該技術被應用于多種生物和組織條件，例如人類HeLa細胞和多種小鼠組織，通過這些研究，發(fā)現(xiàn)了m5C修飾在不同物種和組織中的保守性、組織特異性和動態(tài)性特征。
C. 揭示m5C修飾的分布特征
RNA-BS-seq技術揭示了m5C修飾在mRNA中的分布特征。例如，m5C修飾主要集中在編碼序列（CDS）區(qū)域，尤其是在mRNA翻譯起始位點附近的區(qū)域。此外，m5C修飾在非翻譯區(qū)（UTR）中也有分布，尤其是在5'UTR和3'UTR區(qū)域。盡管RNA-BS-seq技術提供了高分辨率的m5C修飾圖譜，但不同研究之間仍存在差異。例如，不同研究中鑒定出的m5C位點數(shù)量和分布模式可能不同，這表明m5C修飾的分布可能受到多種因素的影響，如物種、細胞類型、發(fā)育階段和RNA結構等。
D. 推動m5C修飾功能研究
RNA-BS-seq技術為研究m5C修飾的分子功能提供了基礎。通過鑒定m5C修飾位點，研究人員能夠進一步研究這些位點對mRNA穩(wěn)定性、出核、翻譯效率等生物學過程的影響。同時，RNA-BS-seq技術還為研究m5C修飾在疾病中的作用提供了重要工具。例如，在癌癥、神經發(fā)育障礙和病毒感染等疾病中，m5C修飾的異�？赡芘c疾病的發(fā)病機制密切相關。通過RNA-BS-seq技術，研究人員能夠鑒定與疾病相關的m5C修飾位點，從而為疾病的診斷和治療提供潛在的靶點。
E. 技術改進和優(yōu)化
為了克服傳統(tǒng)BS-seq技術的局限性，如反應時間長、RNA降解等，研究人員開發(fā)了超快速BS-seq技術。UBS-seq通過使用高濃度亞硫酸鹽和高溫反應條件，縮短了反應時間，減少了RNA降解，并提高了C到U的轉化效率。
總之，RNA-BS-seq技術在本文中發(fā)揮了重要作用，不僅確認了m5C修飾的存在，還繪制了m5C修飾的全轉錄組圖譜，揭示了其分布特征，并推動了m5C修飾在分子功能和疾病相關研究中的應用。隨著技術的不斷改進和優(yōu)化，RNA-BS-seq技術將繼續(xù)為m5C修飾的研究提供強有力的支持。
參考文獻：
Wang R, Ding L, Lin Y, Luo W, Xu Z, Li W, Lu Y, Zhu Z, Lu Z, Li F, Mao X, Xia L, Li G. The Quiet Giant: Identification, Effectors, Molecular Mechanism, Physiological and Pathological Function in mRNA 5-methylcytosine Modification. Int J Biol Sci 2024; 20(15):6241-6254. doi:10.7150/ijbs.101337. https://www.ijbs.com/v20p6241.htm
m5C修飾的鑒定和分布
m5C修飾已在多種RNA種類中被鑒定，包括核糖體RNA（rRNA）、轉運RNA（tRNA）、信使RNA（mRNA）、增強子RNA（eRNA），并且最近還在長非編碼RNA（lncRNA）、環(huán)狀RNA（circRNA）和微小RNA（miRNA）中檢測到m5C修飾。m5C修飾的研究最初集中在tRNA和rRNA上，而對mRNA的研究則相對滯后。然而近年來，用于檢測m5C修飾的高通量技術發(fā)展迅速，例如亞硫酸鹽測序（BS-seq）、5-氮雜胞苷交聯(lián)測序（Aza-IP）或單核苷酸分辨率交聯(lián)免疫沉淀測序（miCLIP-seq）。特別是超快速亞硫酸氫鹽測序（UBS-seq）和m5C-TAC-seq等新技術的出現(xiàn)，進一步提高了檢測的效率和準確性。由于上述高通量測序技術的進步，現(xiàn)在可以確定細胞RNA中m5C的整體分布情況。與DNA不同，mRNA m5C修飾相對較少，且由于其低豐度和高背景噪聲，對轉錄組范圍內的m5C圖譜進行繪制在技術上具有挑戰(zhàn)性。
圖1：mRNA中m5C的動態(tài)調控過程及RNA亞硫酸鹽測序分析流程。
A. m5C及其相關調控因子的動態(tài)過程。NSUN1、NSUN2、NSUN5和NSUN6作為mRNA上m5C甲基化的催化酶，而TET家族中的去甲基化酶則負責m5C去甲基化。B. 不同的RNA亞硫酸鹽測序分析流程用于鑒定mRNA中的m5C位點。Cs：未甲基化的胞嘧啶。
通過利用RNA亞硫酸鹽轉化與基于SOLiD技術的全轉錄組RNA測序相結合，首次以單堿基分辨率獲得了轉錄組中胞嘧啶修飾的高分辨率視圖。采用預定義的選擇標準，在mRNA序列中鑒定出8495個新的候選m5C位點，顯示出m5C在mRNA非翻譯區(qū)（UTR）和近Argonaute蛋白結合區(qū)域富集。
隨后，BS-seq轉向利用Illumina技術，并已在多種生物和條件下應用，不同研究采用不同的選擇標準來篩選潛在的m5C候選位點。其中一項研究利用BS-seq在人類HeLa細胞和多種小鼠組織中繪制了轉錄組范圍內的m5C圖譜，鑒定出1955個mRNA上的5065個m5C位點，揭示了mRNA m5C位點的中位甲基化水平約為20.5%，與mRNA假尿苷化程度相似。在這些位點的分布特征方面，m5C修飾主要位于編碼序列（CDS）中，主要在CG環(huán)境中，以及mRNA翻譯起始位點的下游區(qū)域。在小鼠組織樣本的m5C測序中，觀察到它們顯示出與小鼠和人類HeLa細胞中發(fā)現(xiàn)的中位甲基化水平和m5C分布模式相似的結果。這些發(fā)現(xiàn)表明，在哺乳動物細胞mRNA中，m5C的分布模式具有高度的保守性。進一步的研究揭示了不同小鼠組織和睪丸發(fā)育過程中m5C修飾的分布，表明了哺乳動物轉錄組中m5C修飾的保守性、組織特異性和動態(tài)特征。
另一項研究關注了小鼠胚胎干細胞（ESCs）和大腦中總和核poly(A) RNA的表觀轉錄組中胞嘧啶甲基化的全面圖譜，觀察到m5C位點在翻譯起始密碼子附近（如5'UTR末端和CDS起始處）有顯著積累，在編碼序列中耗竭，并在3'UTR中有混合的富集模式。通過比較ESCs和大腦組織中的甲基化位點，發(fā)現(xiàn)ESCs中有57%的甲基化位點在大腦組織中未甲基化。此外，這些差異甲基化通常不由差異表達引起，表明mRNA中的胞嘧啶甲基化可能以高度細胞和組織特異性的方式發(fā)生，與轉錄表達水平無關。
然而，不同研究中估計的mRNA m5C位點數(shù)量差異很大，觀察結果不一致，難以定義一組通用的mRNA底物或常見的甲基化目標序列。隨后，mRNA中m5C的研究轉向了更嚴格的位點鑒定。Rui Zhang等人開發(fā)了一種計算流程，以準確識別mRNA m5C位點，涵蓋了與轉化效率、覆蓋率和截止標準相關的標準。隨后，多個研究采用了這一工作流程。
圖2：m5C的全轉錄組測序方法示意圖。
B. 5-氮雜胞苷（5-aza-C）是一種胞嘧啶類似物，在轉錄過程中，RNA聚合酶會隨機將其摻入到初生（nascent ）RNA轉錄本的胞嘧啶位點。在m5C-RCMT催化結構域中，半胱氨酸殘基的硫原子與目標RNA堿基的C6位置形成共價鍵。隨后，通過甲基供體S-腺苷甲硫氨酸（SAM）的作用，目標胞嘧啶的C5位置發(fā)生甲基化。在C5甲基化后，通過后續(xù)的β-消除反應斷裂共價鍵，從而恢復自由酶。由于5-氮雜胞苷中C5位置的碳原子被氮原子（N）取代，共價鍵得以穩(wěn)定，最終導致細胞內內源性酶的耗竭，從而使RNA和DNA的甲基化水平降低。
C. 在甲基化過程中，保守的半胱氨酸殘基Cys1暫時與甲基化胞嘧啶形成共價鍵，而第二個半胱氨酸Cys2對于這種催化中間體的分解至關重要。在miCLIP中，Cys2突變?yōu)楸彼幔ˋla），便于捕獲催化中間體，并允許甲基轉移酶與內源性RNA靶標發(fā)生交聯(lián)，而無需光交聯(lián)。最終，這些交聯(lián)的表位標記的酶-底物復合體得以形成。
D. 從機制上講，BS-seq中存在兩條競爭性途徑：一條實現(xiàn)從C到U的期望轉化，另一條則導致不期望的DNA/RNA降解。超快速BS測序方法（UBS-seq）使用高濃度亞硫酸鹽（約10M）和98°C的高反應溫度，通過縮短反應時間來減少RNA降解，并提高反應溫度以實現(xiàn)完全的C到U轉化。
E. 在m5C-TAC-seq中，m5C被氧化為f5C，隨后用1,3-茚二酮（AI）的疊氮衍生物進行標記。這一過程通過生物素拉下來富集含有m5C的RNA，并在m5C位點誘導C到T的轉化。
總之研究表明，m5C修飾在mRNA中的分布具有一定的規(guī)律性。它主要集中在編碼序列（CDS）區(qū)域，尤其是在mRNA翻譯起始位點附近的區(qū)域。此外，m5C修飾在不同組織和細胞類型中表現(xiàn)出保守性、組織特異性和動態(tài)性。例如，在小鼠和人類細胞中，m5C修飾的分布模式高度保守。
m5C修飾的效應分子
m5C修飾是一個動態(tài)的過程，涉及三種主要的調控效應分子：甲基轉移酶（“writers”）、去甲基化酶（“erasers”）和結合蛋白（“readers”）。
- 甲基轉移酶：m5C修飾主要由NOL1/NOP2/SUN結構域（NSUN）家族蛋白（NSUN1-7）和DNA甲基轉移酶（DNMT）家族成員催化。其中，NSUN2和NSUN6是mRNA m5C修飾的主要甲基轉移酶。
- 去甲基化酶：關于mRNA上m5C修飾的去甲基化酶研究較少，但有研究表明TET家族蛋白可能參與m5C的擦除。
- 結合蛋白：目前已知的mRNA m5C修飾的結合蛋白包括Aly/REF出口因子（ALYREF）和Y盒結合蛋白1（YBX1）。這些蛋白能夠識別并結合m5C修飾的mRNA，從而影響mRNA的穩(wěn)定性和核質運輸。
圖3：mRNA中m5C修飾的分布格局及NSUN2和NSUN6對m5C位點的偏好。
A. 來自不同研究的Metagene圖顯示了m5C位點的分布情況。B. NSUN2和NSUN6在tRNA和mRNA上偏好的修飾位點示意圖。NSUN2靶向甲基化人類中絕大多數(shù)tRNA的特定位點（C48、C49和C50）。NSUN6特異性地靶向帶有UCCA尾的tRNAThr和tRNACys的3'端C72位點。NSUN2依賴的位點傾向于包含m5CNGG motif，并且位于5'端。NSUN6主要催化II型m5C位點（m5CTCCA motif），其甲基化位點優(yōu)先富集在hairpin loops結構中心。
m5C修飾在mRNA中的分子功能
- 穩(wěn)定性：m5C修飾能夠影響mRNA的穩(wěn)定性。例如，NSUN2通過m5C修飾增強SLC7A11 mRNA的穩(wěn)定性，從而賦予子宮內膜癌細胞對鐵死亡的抗性。此外，YBX1和ALYREF等蛋白通過識別m5C修飾的mRNA，進一步增強了mRNA的穩(wěn)定性。
- 出核：ALYREF能夠識別m5C修飾的mRNA，并促進其從細胞核到細胞質的轉運。例如，ALYREF通過識別NSUN5介導的ACC1 mRNA上的m5C修飾，促進其出核。
- 翻譯：m5C修飾對翻譯的影響較為復雜。一方面，m5C修飾可能通過影響mRNA的核質分布來間接影響翻譯效率；另一方面，m5C修飾可能直接調節(jié)翻譯過程。例如，NSUN6介導的m5C修飾可能參與翻譯終止的質控。
- 其他：除了上述兩種經典的m5C識別蛋白外，通過多項研究還發(fā)現(xiàn)了新的m5C結合蛋白。如SRSF2、YBX1、YBX2。
m5C修飾的生物學功能和病理功能
- 胚胎發(fā)育：m5C修飾在胚胎發(fā)育過程中起著重要作用。例如，在斑馬魚中，m5C修飾能夠保護母源mRNA的穩(wěn)定性，從而促進母源-合子轉換（MZT）。
- 代謝和炎癥：m5C修飾與代謝和炎癥過程密切相關。例如，NSUN2能夠通過m5C修飾激活抗氧化應激反應，抑制心肌損傷。
- 免疫：m5C修飾與免疫響應密切相關。例如，NSUN2與RoRγt耦合，通過m5C修飾調節(jié)特定細胞因子mRNA的轉錄，從而影響Th17細胞的命運。
- 病毒感染：m5C修飾在病毒感染中也發(fā)揮重要作用。例如，在SARS-CoV-2感染過程中，NSUN2的表達水平下降，從而增強抗病毒反應。
- 遺傳病：m5C修飾與多種遺傳病發(fā)生發(fā)展有關。例如，NSUN2和NSUN6的突變與智力障礙等遺傳病有關。
- 癌癥：許多調控m5C修飾的mRNA m5C效應分子已被確定參與癌癥發(fā)生發(fā)展。具體來說，m5C修飾通過調節(jié)mRNA的穩(wěn)定性、剪切、表達和翻譯，參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和轉移。m5C在多種癌癥（如膀胱癌、食管癌、結直腸癌、膠質瘤等）中調控細胞增殖、轉移、腫瘤形成、分化、耐藥性、鐵死亡和微環(huán)境。
圖5：不同研究中mRNA上m5C甲基化的多樣化生物學功能。
A. m5C促進mRNA穩(wěn)定性。B. ALYREF介導出核。
C. m5C可能通過某種未知的中間介質調控翻譯效率和核糖體占有率。
D. SRSF2優(yōu)先結合m5C-mRNA。NSUN2缺失會降低mRNA的m5C水平，并改變SRSF2的RNA結合和剪切。
E. RNA上的m5C調節(jié)依賴于YBX2的液-液相分離。
研究挑戰(zhàn)和未來展望
技術挑戰(zhàn)：
m5C修飾的檢測技術仍面臨一些挑戰(zhàn)，如亞硫酸鹽測序的不完全轉化和RNA降解問題。需要開發(fā)更精確、更靈敏的檢測技術，以實現(xiàn)對m5C修飾的全面和準確檢測。
臨床應用：
目前關于m5C修飾在疾病診斷、預后分析和治療效果評估中的研究還處于初級階段。需要進一步探索m5C修飾在疾病中的應用價值，開發(fā)相關的診斷和治療方法。
未來展望：
隨著新技術的不斷涌現(xiàn)，如超快速亞硫酸鹽測序、m5C-TAC-seq等，m5C修飾的研究將不斷深入。此外，對m5C修飾的分子功能、發(fā)育動態(tài)、進化意義等方面的研究也將進一步揭示其在生物體中的重要作用。
易小結：
本文全面總結了mRNA上m5C修飾的最新研究進展，包括其鑒定方法、分布特征、分子功能以及在生理和病理過程中的作用。文章強調了m5C修飾在多種生物學過程中的重要性，并指出了當前研究中存在的挑戰(zhàn)和未來的研究方向。隨著技術的不斷進步和研究的深入，m5C修飾有望成為疾病診斷和治療的新靶點。
RNA-BS-seq（RNA亞硫酸鹽測序）在m5C修飾檢測中發(fā)揮著重要作用
A. 確認m5C修飾的存在
在RNA-BS-seq技術出現(xiàn)之前，由于檢測方法的限制，研究人員無法精確驗證mRNA中是否存在m5C修飾。早期的研究主要集中在tRNA和rRNA中的m5C修飾，而對mRNA中的m5C修飾知之甚少。而RNA-BS-seq通過亞硫酸鹽處理將未修飾的胞嘧啶（C）轉化為尿嘧啶（U），而甲基化的胞嘧啶（m5C）則保持不變。這種技術首次在轉錄組水平上確認了m5C修飾的存在，并且能夠以單堿基分辨率進行檢測。
B. 繪制m5C修飾的全轉錄組圖譜
RNA-BS-seq結合高通量測序技術，能夠對細胞中的RNA進行整體分析，從而繪制出m5C修飾的全轉錄組圖譜。這使得研究人員能夠系統(tǒng)地了解m5C修飾在不同RNA種類（如mRNA、tRNA、rRNA等）中的分布情況。且該技術被應用于多種生物和組織條件，例如人類HeLa細胞和多種小鼠組織，通過這些研究，發(fā)現(xiàn)了m5C修飾在不同物種和組織中的保守性、組織特異性和動態(tài)性特征。
C. 揭示m5C修飾的分布特征
RNA-BS-seq技術揭示了m5C修飾在mRNA中的分布特征。例如，m5C修飾主要集中在編碼序列（CDS）區(qū)域，尤其是在mRNA翻譯起始位點附近的區(qū)域。此外，m5C修飾在非翻譯區(qū)（UTR）中也有分布，尤其是在5'UTR和3'UTR區(qū)域。盡管RNA-BS-seq技術提供了高分辨率的m5C修飾圖譜，但不同研究之間仍存在差異。例如，不同研究中鑒定出的m5C位點數(shù)量和分布模式可能不同，這表明m5C修飾的分布可能受到多種因素的影響，如物種、細胞類型、發(fā)育階段和RNA結構等。
D. 推動m5C修飾功能研究
RNA-BS-seq技術為研究m5C修飾的分子功能提供了基礎。通過鑒定m5C修飾位點，研究人員能夠進一步研究這些位點對mRNA穩(wěn)定性、出核、翻譯效率等生物學過程的影響。同時，RNA-BS-seq技術還為研究m5C修飾在疾病中的作用提供了重要工具。例如，在癌癥、神經發(fā)育障礙和病毒感染等疾病中，m5C修飾的異�？赡芘c疾病的發(fā)病機制密切相關。通過RNA-BS-seq技術，研究人員能夠鑒定與疾病相關的m5C修飾位點，從而為疾病的診斷和治療提供潛在的靶點。
E. 技術改進和優(yōu)化
為了克服傳統(tǒng)BS-seq技術的局限性，如反應時間長、RNA降解等，研究人員開發(fā)了超快速BS-seq技術。UBS-seq通過使用高濃度亞硫酸鹽和高溫反應條件，縮短了反應時間，減少了RNA降解，并提高了C到U的轉化效率。
總之，RNA-BS-seq技術在本文中發(fā)揮了重要作用，不僅確認了m5C修飾的存在，還繪制了m5C修飾的全轉錄組圖譜，揭示了其分布特征，并推動了m5C修飾在分子功能和疾病相關研究中的應用。隨著技術的不斷改進和優(yōu)化，RNA-BS-seq技術將繼續(xù)為m5C修飾的研究提供強有力的支持。
參考文獻：
Wang R, Ding L, Lin Y, Luo W, Xu Z, Li W, Lu Y, Zhu Z, Lu Z, Li F, Mao X, Xia L, Li G. The Quiet Giant: Identification, Effectors, Molecular Mechanism, Physiological and Pathological Function in mRNA 5-methylcytosine Modification. Int J Biol Sci 2024; 20(15):6241-6254. doi:10.7150/ijbs.101337. https://www.ijbs.com/v20p6241.htm
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