熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)中的常見(jiàn)問(wèn)題及其解答
瀏覽次數(shù):802 發(fā)布日期:2024-8-21
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熒光實(shí)時(shí)定量 PCR 技術(shù) (real-time quantitative PCR,qPCR) 幾乎是現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)中最重要、應(yīng)用最廣泛的核酸定量檢測(cè)技術(shù)。成功的定量 PCR 實(shí)驗(yàn)離不開(kāi)精準(zhǔn)的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和操作流程。
實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 分析的部分實(shí)施需要經(jīng)過(guò)優(yōu)化以確保所有反應(yīng)參數(shù)均設(shè)置精確,從而獲得準(zhǔn)確的結(jié)果。雖然PCR實(shí)驗(yàn)操作簡(jiǎn)單,但有時(shí)仍避免不了各種各樣的問(wèn)題。下面整理了關(guān)于PCR實(shí)驗(yàn)中幾個(gè)常見(jiàn)的問(wèn)題來(lái)進(jìn)行詳細(xì)解答。
01 、沒(méi)有ct值
檢測(cè)結(jié)果遇到?jīng)]有Ct值情況,排查是否有以下問(wèn)題:
1)、循環(huán)數(shù)不夠(一般不超過(guò)45循環(huán),不僅背景值提高,定量也不準(zhǔn));
2)、PCR程序設(shè)置錯(cuò)誤,檢測(cè)熒光信號(hào)的步驟有誤。一般SG法采用72℃延伸時(shí)采集,TaqMan法則一般在退火結(jié)束時(shí)或延伸時(shí)采集信號(hào),另外熒光采集是否選中;
3)、引物或探針降解?赏ㄟ^(guò)PAGE電泳檢測(cè)引物和探針是否降解;
4)、模板量可能降解或上樣量不足(不超過(guò)500ng,根據(jù)試劑盒說(shuō)明書(shū)即可),對(duì)未知濃度的樣本應(yīng)從系列稀釋樣本的最高濃度做起;如果發(fā)生模板降解,應(yīng)考慮樣本準(zhǔn)備中雜質(zhì)的引入及反復(fù)凍融的情況,建議將模板樣本小量分裝儲(chǔ)備,避免反復(fù)凍融;
5)、引物探針是否合適(尤其是引物跨越內(nèi)含子,以確保擴(kuò)增基因組DNA;上下游引物Tm值超過(guò)4℃以上也會(huì)影響擴(kuò)增)。
02、標(biāo)準(zhǔn)曲線不佳
標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系不佳R2<0.9,很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問(wèn)題:
1)、標(biāo)準(zhǔn)品稀釋或者加樣誤差,使得標(biāo)準(zhǔn)品不呈梯度;
2)、標(biāo)準(zhǔn)品出現(xiàn)降解。應(yīng)避免標(biāo)準(zhǔn)品反復(fù)凍融,將高濃度DNA模板分裝,保存于-20℃或-80℃,現(xiàn)配現(xiàn)用;
3)、引物或探針不佳。重新設(shè)計(jì)更好更穩(wěn)定的引物或探針;
4)、模板中存在抑制物。模板濃度過(guò)高,根據(jù)現(xiàn)有商品化熒光定量試劑盒的要求,一般模板量以50—500ng為宜。
03、ct值過(guò)晚
在相對(duì)定量中,Ct值一般控制在15—25之間比較好,如果在絕對(duì)定量中,對(duì)低拷貝數(shù)的樣品,Ct值會(huì)增大,但是一般不宜超過(guò)40循環(huán),否則定量不準(zhǔn)確。因此,判斷Ct值出現(xiàn)過(guò)晚是否屬于非正常情況,需要根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和目的進(jìn)行。
1)、 擴(kuò)增效率低。引物之間或者引物和探針的比例不合適,需要進(jìn)行優(yōu)化;引物或探針設(shè)計(jì)不合理,需要重新設(shè)計(jì);
2)、PCR程序不合適,改用三步法進(jìn)行反應(yīng),或者優(yōu)化退火/延伸溫度,可以適當(dāng)降低退火溫度;退火/延伸時(shí)間短(可以在推薦的時(shí)間條件下延長(zhǎng)10s);
3)、MgCl2 濃度不合適,增加鎂離子濃度等。PCR各種反應(yīng)成分的降解或加樣量的不足;
4)、PCR產(chǎn)物太長(zhǎng)。PCR產(chǎn)物設(shè)計(jì)超過(guò)500bp;
5)、模板中存在抑制物。用高純度模板進(jìn)行PCR檢測(cè)或?qū)⒛0暹M(jìn)行稀釋。
04、熔解曲線峰不特異
熔解曲線峰不特異很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問(wèn)題:
1)、引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化。應(yīng)避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn);引物濃度不佳,尤其是涉及二聚體存在時(shí),適當(dāng)降低引物濃度,并注意上下游引物的濃度比例;
2)、模板有基因組污染。RNA提取過(guò)程中避免基因組DNA的引入,或通過(guò)引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增。
3)、離子濃度不合適。適當(dāng)降低鎂離子濃度,或選擇更適合的mix試劑盒,不同試劑盒在該方面的優(yōu)化能力不適合,有些情況下可以通過(guò)更換試劑盒改善結(jié)果;
05、陰性對(duì)照擴(kuò)增有信號(hào)
照擴(kuò)增有信號(hào)排查各操作環(huán)節(jié)是否有不當(dāng),造成交叉污染:
1)、引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化。應(yīng)避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)。
2)、引物濃度不佳。適當(dāng)降低引物濃度,并注意上下游引物的濃度配比。
3)、鎂離子濃度過(guò)高。適當(dāng)降低鎂離子濃度,或選擇更適合的mix試劑盒。
4)、模板有基因組的污染。RNA提取過(guò)程中避免基因組DNA的引入,或通過(guò)引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增。
5)、交叉污染。在所用的試劑中有交叉污染,或操作環(huán)境中有氣溶膠造成污染,建議對(duì)操作環(huán)境進(jìn)行處理,或者更換新的環(huán)境、加樣器、槍頭以及所有的引物、試劑等。
06、擴(kuò)增曲線異常
遇到擴(kuò)增曲線異常,比如“S”型曲線等等情況,有可能是以下環(huán)節(jié)存在問(wèn)題:
1)、模板的濃度太高或者降解;
2)、熒光染料的降解;
3)、在操作熒光定量PCR時(shí),帶上新的一次性手套,蓋上避免任何指紋或者字跡等;
4)、液體揮發(fā)。耗材氣密性等問(wèn)題引起液體蒸發(fā),沒(méi)有很好的聚集在管子里;
5)、氣泡。操作問(wèn)題如移液槍加樣引起的氣泡問(wèn)題。
07、擴(kuò)增效率低
該情況適用于針對(duì)所有的基因,特別是內(nèi)參基因仍無(wú)法獲得較好的擴(kuò)增信號(hào)時(shí),應(yīng)考慮如下情況:
1)、反應(yīng)試劑中部分成分比例是否最佳,另外考慮熒光染料是否降解;
2)、反應(yīng)條件不夠優(yōu)化?蛇m當(dāng)降低退火溫度或改為三步擴(kuò)增法,適當(dāng)延長(zhǎng)變性退火時(shí)間;
3)、反應(yīng)體系中有PCR反應(yīng)抑制物。一般是加入模板時(shí)所引入的,應(yīng)先把模板適度稀釋?zhuān)偌尤敕磻?yīng)體系,減少抑制物的影響。