和細(xì)胞第一次見(jiàn)面的時(shí)候我們要做好什么準(zhǔn)備呢?快跟著小M 一起看看吧~
▐ 01 記錄細(xì)胞重要信息
當(dāng)?shù)谝淮卧趯?shí)驗(yàn)室接收細(xì)胞系時(shí),有幾條與細(xì)胞系有關(guān)的信息應(yīng)該被整理和記錄,這些將確保細(xì)胞系的成功繁殖、擴(kuò)增、冷凍保存和儲(chǔ)存。小 M 強(qiáng)烈建議在細(xì)胞擴(kuò)增開(kāi)始之前記錄以下信息:(1) 背景信息,(2) 傳代培養(yǎng),(3) 冷凍保存,(4) 細(xì)胞系儲(chǔ)存。
表 1. 需要記錄與細(xì)胞系有關(guān)的信息[1]。
注意:細(xì)胞培養(yǎng)時(shí),連續(xù)細(xì)胞系在培養(yǎng)中會(huì)發(fā)生變化。然而,許多研究已經(jīng)證明了長(zhǎng)期培養(yǎng)對(duì)細(xì)胞系形態(tài)、發(fā)育和基因表達(dá)的各種影響:如細(xì)胞生長(zhǎng)變異,導(dǎo)致細(xì)胞污染等。因此,當(dāng)?shù)谝淮螌⒓?xì)胞系接收到實(shí)驗(yàn)室時(shí),留有低傳代的細(xì)胞種子庫(kù)是非常重要的。▐ 02 培養(yǎng)細(xì)胞的形態(tài)觀察監(jiān)測(cè)和記錄細(xì)胞形態(tài)和行為是十分重要的,推薦做法是在傳代培養(yǎng)之前定期仔細(xì)地檢查培養(yǎng)細(xì)胞,以確定其狀態(tài)和健康狀況。細(xì)胞形態(tài)觀察結(jié)果可以幫助“科研汪”們判斷 (1) 細(xì)胞的形態(tài):健康 or 惡化 (即衰老或壞死的細(xì)胞)?(2) 是否存在細(xì)胞污染?(3) 區(qū)分細(xì)胞及細(xì)胞密度。大多數(shù)細(xì)胞培養(yǎng)生長(zhǎng)為:懸浮培養(yǎng)和貼壁培養(yǎng)。然而,在某些情況下可能會(huì)觀察到懸浮和貼壁的混合群體。
培養(yǎng)中的動(dòng)物細(xì)胞的形狀可分為三個(gè)基本形態(tài):成纖維細(xì)胞樣(Fibroblast-like)、上皮細(xì)胞樣(Epithelial-like) 和類(lèi)淋巴母細(xì)胞樣(Lymphoblastoid-like)。
圖 1. 培養(yǎng)細(xì)胞的一般特征和形狀[1]。
(A) 上皮樣 (貼壁);(B) 成纖維細(xì)胞樣 (貼壁);(C) 淋巴母細(xì)胞樣 (懸浮液)。
(以收到 T25 培養(yǎng)瓶為例)
1. 先觀察培養(yǎng)基顏色以及是否有漏液情況,再在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞狀態(tài),并對(duì)細(xì)胞進(jìn)行不同倍數(shù)拍照,排除細(xì)胞本身污染或狀態(tài)不好的情況;
2. 確認(rèn)細(xì)胞狀態(tài)正常后將細(xì)胞瓶外壁消毒,放在培養(yǎng)箱靜置數(shù)小時(shí) (根據(jù)細(xì)胞密度定) 以穩(wěn)定細(xì)胞狀態(tài);
3.1 貼壁細(xì)胞:細(xì)胞生長(zhǎng)密度超過(guò) 80% 時(shí),可根據(jù)情況傳代,若細(xì)胞未超過(guò)80%匯合度時(shí),可對(duì)其培養(yǎng)基進(jìn)行半換液處理,即吸去一半的原培養(yǎng)基 (不要丟掉可以留給細(xì)胞過(guò)渡用),再加入等量的完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),直至細(xì)胞密度超過(guò) 80% 以后再進(jìn)行傳代;
3.2 懸浮細(xì)胞:將細(xì)胞培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)液體轉(zhuǎn)移至離心管,500 g 離心 5 min,溫柔的倒出上清液 (也可以先保留下來(lái)以備不時(shí)之需),管底細(xì)胞沉淀加入 10 mL 完全培養(yǎng)基吹打、重懸。放入新的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過(guò)夜,根據(jù)細(xì)胞密度及生長(zhǎng)情況分瓶傳代。
圖 2. 臺(tái)盼藍(lán)染色圖[2]。
4. 細(xì)胞計(jì)數(shù):無(wú)血清培養(yǎng)基將細(xì)胞懸液稀釋到 200-2000 個(gè)/毫升,在 10-100 µl 的細(xì)胞懸液中加入等體積的 0.4% 的臺(tái)盼藍(lán)溶液。輕輕混勻,用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)細(xì)胞。活細(xì)胞排斥臺(tái)盼藍(lán),依舊是透亮的狀態(tài),死細(xì)胞會(huì)被染成藍(lán)色。有細(xì)胞計(jì)數(shù)儀的,可直接用計(jì)數(shù)儀進(jìn)行計(jì)數(shù)更方便哦~
選擇合適的培養(yǎng)基對(duì)于細(xì)胞培養(yǎng)的成功至關(guān)重要,不同類(lèi)型的細(xì)胞具有不同的生長(zhǎng)需求和特定的培養(yǎng)條件。首先,培養(yǎng)基中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)是維持細(xì)胞生長(zhǎng)和代謝所必需的。不同類(lèi)型的細(xì)胞需要各種不同的氨基酸、糖類(lèi)、維生素、無(wú)機(jī)鹽和脂質(zhì)等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)以滿(mǎn)足其生理需求。如果培養(yǎng)基中缺乏必要的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),細(xì)胞可能無(wú)法正常生長(zhǎng)和分裂,甚至?xí)䦟?dǎo)致細(xì)胞死亡[3][4]。選擇合適的培養(yǎng)基的時(shí)候優(yōu)先根據(jù)細(xì)胞來(lái)源公司提供的培養(yǎng)條件,無(wú)法確定來(lái)源的可以參考 ATCC 推薦細(xì)胞對(duì)應(yīng)培養(yǎng)基。表 2. 常見(jiàn)細(xì)胞的培養(yǎng)體系。
其次,不同類(lèi)型的細(xì)胞需要特定的生長(zhǎng)因子和激素來(lái)維持其特定的功能和特性。例如,神經(jīng)細(xì)胞培養(yǎng)基中通常添加神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子 ,以促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和突觸形成;胎牛血清 通常被添加到培養(yǎng)基中,提供細(xì)胞所需的生長(zhǎng)因子、蛋白質(zhì)和其他重要組分。
此外,必要時(shí)候也可以加入抗生素來(lái)防止污染保衛(wèi)細(xì)胞。例如雙抗 (青霉素/鏈霉) 甚至三抗 (青霉素、鏈霉素、兩性霉素 B) 以抑制細(xì)菌和真菌等微生物的生長(zhǎng),青霉素-鏈霉素可有效抑制多數(shù)革蘭氏陽(yáng)性菌 和革蘭氏陰性菌的生長(zhǎng),兩性霉素 B 可用于抑制真菌、酵母的污染。
隨著時(shí)間的推移,細(xì)胞的數(shù)量會(huì)增加,而空間和資源卻有限。所以,當(dāng)細(xì)胞達(dá)到一定密度時(shí),就該考慮給他們一個(gè)更廣闊的居住空間,讓他們繼續(xù)昌盛繁衍。
圖 3. 傳代流程圖。
常見(jiàn)的細(xì)胞傳代步驟參考如下:
(以 T25 培養(yǎng)瓶為例)
1. 從培育箱中取出細(xì)胞,顯微鏡下觀察細(xì)胞,匯合度大于 80% 即可傳代;
2. 準(zhǔn)備操作:培養(yǎng)基和 PBS 放置 37℃ 水浴鍋預(yù)熱,將傳代所用耗材(移液管、移液槍、T25 培養(yǎng)瓶、槍頭等) 放入超凈工作臺(tái),紫外滅菌 30 min 后通風(fēng),將胰酶和預(yù)熱后的培養(yǎng)基以及 PBS 用 75% 酒精消毒后放入超凈工作臺(tái);
3. 吸棄培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)舊培養(yǎng)液,5 mL PBS 潤(rùn)洗細(xì)胞,吸棄 PBS;
4. 加入 1 mL 胰蛋白酶,輕晃培養(yǎng)瓶使胰蛋白酶充分覆蓋細(xì)胞,放入 37℃ 培養(yǎng)箱中孵育 30 s-2 min (實(shí)際孵育時(shí)間因所使用的細(xì)胞系而異);
5. 顯微鏡下觀察,當(dāng) ≥90% 的細(xì)胞脫落時(shí),加入兩倍胰酶體積的含血清的完全培養(yǎng)基,終止消化,吹打細(xì)胞層表面數(shù)次,使其分散成單個(gè)細(xì)胞;
6. 500× g 離心 3-5 分鐘,將細(xì)胞沉淀重懸于含血清的完全培養(yǎng)基;
7. 將細(xì)胞懸液按傳代比例分裝到培養(yǎng)瓶,補(bǔ)充新鮮完全培養(yǎng)基,輕晃培養(yǎng)瓶使細(xì)胞分布均勻,并做好標(biāo)記;
8. 顯微鏡下觀察細(xì)胞密度及狀態(tài),把細(xì)胞送回培養(yǎng)箱。
注意:利用胰蛋白酶進(jìn)行動(dòng)物細(xì)胞傳代培養(yǎng)時(shí)需要考慮許多因素。胰蛋白酶具有水解蛋白質(zhì)的活性,可影響細(xì)胞的多種生理代謝功能。
Tips:胰蛋白酶?jìng)鞔囵B(yǎng)細(xì)胞的最佳方法
在添加胰蛋白酶之前,用不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的生理鹽水/PBS 清洗,以去除這些離子 (溶液中的 Ca2+、Mg2+ 和血清會(huì)降低胰酶活力);
用最低濃度和體積的胰蛋白酶從培養(yǎng)瓶表面去除細(xì)胞;
如果可能的話(huà),在室溫或更低的溫度下使用胰蛋白酶溶液,以減少酶的內(nèi)吞作用;
盡可能短的時(shí)間使用胰蛋白酶處理細(xì)胞,避免消化過(guò)度影響細(xì)胞;
用胰蛋白酶抑制劑如含血清或血清的完全培養(yǎng)基中和終止胰蛋白酶活性,然后用離心除去胰蛋白酶;
細(xì)胞脫落后立即離心除去培養(yǎng)瓶表面的胰蛋白酶。
細(xì)胞凍存就像是給細(xì)胞一個(gè)冰凍的時(shí)間旅行機(jī)票,保證它們?cè)谖磥?lái)可以“解凍”回到活力四溢的狀態(tài)。這一過(guò)程可以確保你的珍貴細(xì)胞庫(kù)不會(huì)因?yàn)闀r(shí)間的推移而遭受損失。
那么凍存細(xì)胞的最佳時(shí)機(jī)是什么時(shí)候?什么樣的細(xì)胞濃度合適?要用多少凍存液呢?怎么實(shí)現(xiàn)細(xì)胞的“慢凍”?復(fù)蘇后第二天發(fā)現(xiàn)細(xì)胞沒(méi)有活?好不容易復(fù)蘇的細(xì)胞竟然污染了?怎么才能讓細(xì)胞滿(mǎn)血復(fù)活呢?
關(guān)于這些問(wèn)題小 M 在往期推文中已經(jīng)為大家整理過(guò)了,本期不再贅述。詳情可見(jiàn)往期推文:干貨分享 | 細(xì)胞凍存與復(fù)蘇避坑指南 ( 不看后悔 !!!)
今天小 M 和您的細(xì)胞之旅就到這里啦,我們下次見(jiàn)~
Fetal Bovine Serum (FBS)特級(jí)胎牛血清,烏拉圭 |
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BM-Cyclin 支原體清除試劑有效抑制和清除在細(xì)胞培養(yǎng)中廣泛存在的支原體污染 |
Penicillin-Streptomycin雙抗,可以對(duì)許多細(xì)菌引起的污染進(jìn)行有效的控制 |
0.25% Trypsin-EDTA (1x), phenol red用于細(xì)胞解離、常規(guī)細(xì)胞培養(yǎng)傳代及原代組織解離,使組織或貼壁細(xì)胞分散成單個(gè)細(xì)胞 |
[1] Reid YA. Best practices for naming, receiving, and managing cells in culture. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2017 Oct;53(9):761-774.
[2] Aung S M, et al. Live and dead cells counting from microscopic trypan blue staining images using thresholding and morphological operation techniques[J]. International Journal of Electrical and Computer Engineering, 2019, 9(4): 2460.
[3] Jessica Cox, et al. Co-occurrence of Cell Lines, Basal Media and Supplementation in the Biomedical Research Literature. Journal of Data and Information Science. 2020, Vol. 5. Issue (3) : 161-177.
[4] Lee JT, et al. Cell culture medium as an alternative to conventional simulated body fluid. Acta Biomater. 2011 Jun;7(6):2615-22.
[5] Yee Y, et al. Mechanism of penicillin-streptomycin synergy for clinical isolates of viridans streptococci[J]. The Journal of infectious diseases, 1986, 154(3): 531-534.
[6] Baust, et al. Development and Assessment of a Novel Device for the Controlled, Dry Thawing of Cryopreserved Cell Products. BioProcessing Journal. 2016;15. 30-41.