Western Blot實(shí)驗(yàn)中常見(jiàn)問(wèn)題的原因及解決方案
Western 免疫印跡（Western Blot）是將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到膜上，然后利用抗體進(jìn)行檢測(cè)的實(shí)驗(yàn)。在WB 實(shí)驗(yàn)中常會(huì)出現(xiàn)各種問(wèn)題，而拖慢實(shí)驗(yàn)速度，使實(shí)驗(yàn)達(dá)不到理想的效果。今天百螢跟各位同學(xué)一起分享下 WB 實(shí)驗(yàn)中各種問(wèn)題及問(wèn)題建議。
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| 常見(jiàn)問(wèn)題 | 可能原因 | 建議 |
| 電泳條帶成笑臉狀 | 膠不均勻冷切，中間冷卻不好，電泳系統(tǒng)溫度偏高 | 減少電壓減慢電泳速度，在冷室或者冰浴中進(jìn)行電泳 |
| 電泳條帶成皺眉狀 | 可能是由于裝置不合適，特別可能是凝膠和玻璃擋板底部有氣泡，或者兩邊聚合不完全 | 調(diào)整裝置 |
| 拖尾 | 樣品溶解不好 | 樣品充分溶解混勻后上樣 |
| 紋理(縱向條紋) | 樣品中含有不溶性顆粒 | 樣品充分?jǐn)嚢杌靹?/span> |
| 條帶偏斜 | 電極不平衡或者加樣位置偏斜 | 調(diào)整電極和加樣 |
| 條帶兩邊擴(kuò)散 | 加樣量過(guò)多 | 適當(dāng)減少上樣量 |
| Marker 變黑色 | 抗體和 Marker 蛋白反應(yīng) | 在 Marker 和 sample 之間空出一個(gè)孔不上樣 |
| 背景高 | 膜封閉不夠 | 延長(zhǎng)封閉時(shí)間，選擇適宜的抗體稀釋度 |
| 一抗稀釋度不適宜 | 對(duì)抗體進(jìn)行滴度測(cè)試，選擇適宜的抗體稀釋度 | |
| 一抗孵育的溫度偏高 | 建議 4℃ 結(jié)合過(guò)夜 | |
| 二抗?jié)舛榷冗^(guò)高 | 降低二抗?jié)舛?/span> | |
| 二抗的非特異性背景 | 增加一個(gè)二抗對(duì)照，不加一抗，其他操作過(guò)程不變，即可驗(yàn)證背景是否是由于二抗所致�？蛇x擇其它二抗（特異性更強(qiáng)的，只針對(duì)重鏈） | |
| 二抗孵育時(shí)間過(guò)久 | 減少二抗孵育時(shí)間 | |
| 選擇膜的問(wèn)題 | 硝酸纖維素的背景會(huì)比 PVDF 膜低 | |
| 膜在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中干過(guò) | 實(shí)驗(yàn)過(guò)程中要注意保持膜的濕潤(rùn) | |
| 檢測(cè)時(shí)曝光時(shí)間過(guò)長(zhǎng) | 注意曝光時(shí)間的縮短 | |
| 洗膜不充分 | 增加洗膜的時(shí)間和次數(shù) | |
| 抗體和封閉蛋白有交叉反應(yīng) | 檢測(cè)抗體與封閉蛋白的交叉反應(yīng)性，選擇無(wú)交叉反應(yīng)的封閉劑。洗滌液中加入 Tween-20 可減少交叉反應(yīng) | |
| 雜帶較多 | 目的蛋白有多個(gè)修飾位點(diǎn)（磷酸化位點(diǎn)，糖基化位點(diǎn)，乙�；稽c(diǎn)等），本身可以呈現(xiàn)多條帶 | 查閱文獻(xiàn)或進(jìn)行生物信息學(xué)分析，獲得蛋白序列的修飾位點(diǎn)信息，通過(guò)去修飾確定蛋白試劑大小 |
| 目的蛋白有其他剪切本 | 查閱文獻(xiàn)或生物信息學(xué)分析可能性 | |
| 樣品處理過(guò)程中目的蛋白發(fā)生降解 | 裂解液中加入蛋白酶抑制劑，樣品處理在冰上進(jìn)行 | |
| 上樣量過(guò)高，太敏感 | 適當(dāng)減少上樣量 | |
| 一抗不純 | 純化抗體 | |
| 一抗特異性不高 | 重新選擇或制備高特異性的抗體 | |
| 二抗的非特異性結(jié)合 | 增加一個(gè)二抗對(duì)照，不加一抗，其他操作過(guò)程不變，即可驗(yàn)證背景是否是由于二抗所致。可選擇其它二抗（特異性更強(qiáng)的，只針對(duì)重鏈） | |
| 一抗或二抗?jié)舛绕?/span> | 降低抗體濃度 | |
| 細(xì)胞傳代較多，導(dǎo)致蛋白變異 | 使用原代或傳代少的細(xì)胞作對(duì)照 | |
| 蛋白條帶位置 （大�。┎粚�(duì) |
二聚體或多聚體存在 | 增加蛋白質(zhì)變性過(guò)程及強(qiáng)度 |
| 翻譯后剪切 | 比如很多蛋白是以前體蛋白的形式合成的，在執(zhí)行功能時(shí)需要進(jìn)行剪切成活化的形式 | |
| 相對(duì)電荷 | 氨基酸電荷的組成 | |
| 蛋白修飾 | 比如糖基化、磷酸化等修飾狀態(tài)會(huì)導(dǎo)致蛋白分子量增加 | |
| 膠濃度 | 不同濃度的膠跑出的蛋白條帶的位置可能有所偏差 | |
| 無(wú)蛋白條帶 | 抗體孵育不充分 | 增加抗體濃度，延長(zhǎng)孵育時(shí)間 |
| 酶失活 | 直接將酶和底物進(jìn)行混合，如果不顯色則說(shuō)明酶失活了。選擇在有效期內(nèi)、有活性的酶聯(lián)物 | |
| 標(biāo)本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低 | 設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照，如果陽(yáng)性對(duì)照有結(jié)果，但標(biāo)本沒(méi)有則可能是標(biāo)本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低�？煽紤]增加標(biāo)本上樣量解決靶蛋白含量低的原因 | |
| 試劑之間不匹配 | 一抗與組織種屬，一抗與二抗或/和底物與酶系統(tǒng)之間不匹配。通過(guò)設(shè)置內(nèi)參照可以驗(yàn)證二級(jí)檢測(cè)系統(tǒng)的有效性 | |
| 一抗失效 | 選擇在有效期內(nèi)抗體，幷選擇現(xiàn)配現(xiàn)用的工作液 | |
| HRP 抑制劑 | 所用溶液和容器內(nèi)避免含有疊氮化鈉 | |
| 抗體不能識(shí)別測(cè)試種屬的相關(guān)蛋白 | 購(gòu)買(mǎi)抗體前應(yīng)認(rèn)真閱讀抗體說(shuō)明書(shū)，確定其是否能夠交叉識(shí)別測(cè)試種屬的對(duì)應(yīng)蛋白 | |
| 二抗與一抗不匹配 | 選擇針對(duì)一抗來(lái)源種屬的抗體 | |
| 蛋白條帶信號(hào)弱 | 抗體孵育不充分 | 增加抗體濃度，延長(zhǎng)孵育時(shí)間 |
| 酶活性降低 | 直接將酶和底物進(jìn)行混合，如果不顯色則說(shuō)明酶失活了。選擇在有效期內(nèi)、有活性的酶聯(lián)物 | |
| 洗膜過(guò)度 | 洗膜時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng)，加入的去垢劑不宜過(guò)強(qiáng)或過(guò)多，建議使用 0.1% 的弱去垢劑 Tween-20 | |
| 標(biāo)本中靶蛋白含量太低 | 增加樣本上樣量 | |
| 抗體活性降低 | 選擇有效期內(nèi)的抗體，工作液現(xiàn)配現(xiàn)用，避免長(zhǎng)時(shí)間放置 | |
| 蛋白轉(zhuǎn)移不充分 | 可以用麗春紅染膜幷結(jié)合染膠（考馬斯藍(lán)）后確定條帶是否轉(zhuǎn)移到膜上或轉(zhuǎn)移過(guò)度，適當(dāng)調(diào)整轉(zhuǎn)膜的時(shí)間和電流 | |
| 封閉過(guò)度 | 減少封閉劑的量或縮短時(shí)間，換用不同封閉劑類(lèi)型 | |
| 曝光時(shí)間過(guò)短 | 延長(zhǎng)曝光時(shí)間 | |
| HRP 抑制劑 | 所用溶液和容器內(nèi)避免含有疊氮化鈉 | |
| 背景有黑色斑點(diǎn) | 抗體與封閉試劑反應(yīng) | 使用前過(guò)濾封閉試劑 |
| HRP 偶聯(lián)二抗中有聚集體 | 過(guò)濾二抗試劑，去除聚集體 | |
| 暗背景上白色帶 | HRP 含量過(guò)高 | 降低酶聯(lián)二抗的濃度 |
| 背景有不均勻的白色斑點(diǎn) | 轉(zhuǎn)膜過(guò)程中有氣泡存在 | 仔細(xì)檢測(cè)，避免存在氣泡 |
| 抗體分布不均勻 | 孵育抗體時(shí)使用搖床 |
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標(biāo)簽：
Western Blot實(shí)驗(yàn)
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