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熒光定量PCR中反應中的Ct值全面分析

瀏覽次數(shù):1214 發(fā)布日期:2024-3-12  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負
熒光定量PCR(qPCR)是目前病原檢測領域使用最為廣泛的核酸檢測方法(PCR檢測技術(shù)概述)。尤其是非洲豬瘟發(fā)生后,qPCR檢測得到了極大的普及,對于剛剛進入qPCR檢測領域的人,很容易鉆入了“唯Ct值"的牛角尖,下面來詳細介紹qPCR中的Ct值。
 

1、Ct值的基本概念

閾值循環(huán)數(shù) Threshold cycle (Ct) 也寫作Cq值,熒光信號大于熒光閾值時PCR循環(huán)數(shù)。儀器軟件通常將第3-15個循環(huán)的熒光值設為基線(baseline),是由于測量的偶然誤差引起的。閾值(threshold)一般是基線的標準偏差的10倍。在實際操作中也可以手動調(diào)節(jié)。高于閾值的熒光信號被認為是真實的信號,用于定義Ct值。Ct會受到閾值的影響,每次試驗由于樣品和儀器的不同會導致基線不同,進而影響閾值和Ct值。

模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在一定線性關(guān)系,起始模板量濃度越高,Ct值越;起始模板量濃度越低,Ct值越大。PCR循環(huán)在到達Ct值所在的循環(huán)數(shù)時,剛剛進入真正的指數(shù)擴增期(對數(shù)期),此時微小誤差尚未放大,Ct值的重現(xiàn)性較好,即相同含量的初始模板,得到的Ct值是相對穩(wěn)定的。

Ct值不是恒定不變的,可以受到不同樣品、不同儀器的影響,即使相同的樣品在相同的儀器上重復2遍,Ct值也會存在差異。

2、Ct值的范圍

Ct值的范圍為15-35。Ct值小于15,認為擴增在基線期范圍內(nèi),未達到熒光閾值。理想情況下,Ct值與模板起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系,也就是標準曲線。通過標準曲線,擴增效率為100%時,計算出基因單個拷貝數(shù)定量的Ct值在35左右,若大于35,理論上模板起始拷貝數(shù)小于1,可認為無意義。

3、Ct值的影響因素

由擴增循環(huán)數(shù)和產(chǎn)物量之間的關(guān)系:擴增產(chǎn)物量=起始模板量×(1+En)循環(huán)個數(shù),可以看出,在理想條件下,起始模板量和En會對Ct值產(chǎn)生影響。模板質(zhì)量或者擴增效率的差異會造成Ct值偏大或過小。

擴增效率Efficiency (En):通常要求在90%~110%。效率低于100%,是由于PCR反應中存在抑制因素;而高于100%可能一些污染、非特異性擴增或者是引物二聚體造成。

模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在一定線性關(guān)系,起始模板量濃度越高,Ct值越小;起始模板量濃度越低,Ct值越大。PCR循環(huán)在到達Ct值所在的循環(huán)數(shù)時,剛剛進入真正的指數(shù)擴增期(對數(shù)期),此時微小誤差尚未放大,Ct值的重現(xiàn)性較好,即相同含量的初始模板,得到的Ct值是相對穩(wěn)定的。

Ct值不是恒定不變的,可以受到不同樣品、不同儀器的影響,即使相同的樣品在相同的儀器上重復2遍,Ct值也會存在差異。
 
4、與Ct值有關(guān)的參數(shù)


標準曲線Standard curve:模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系。利用已知起始拷貝數(shù)的標準品可作出標準曲線,其中橫坐標代表起始拷貝數(shù)的對數(shù),縱坐標代Ct值。

相關(guān)系數(shù)Correlation coefficient (R^2) :反映了標準曲線的線性,通常要求>0.99。

擴增效率Efficiency (E):通常要求在90%~110%。效率低于100%,是由于PCR反應中存在抑制因素;而高于100%可能一些污染、非特異性擴增或者是引物二聚體造成。

斜率Slope :當擴增效率為100%時斜率為-3.32,當90%-110%時的斜率為-3.58 ~ -3.10。
 
5、Ct值與模板拷貝數(shù)的關(guān)系

理想情況下,qPCR的模板經(jīng)過一定的循環(huán)數(shù)進行指數(shù)擴增,擴增循環(huán)數(shù)和產(chǎn)物量之間的關(guān)系是:擴增產(chǎn)物量Cn=起始模板量C1×(1+擴增效率E)^循環(huán)數(shù)n。但是由于E通常無法達到100%,并且在擴增的后期,擴增效率會逐漸降低,只有在理想的情況下才滿足Cn=C1×2^n,即Ct值差1,初始濃度差2倍。

由于Ct值與起始模板的對數(shù)存在線性關(guān)系,可利用標準曲線對未知樣品進行定量測定。這是目前的qPCR定量的方法,即用已知濃度的標準品與未知濃度樣品同時擴增,將未知濃度樣品的Ct值代入該標準曲線獲得未知樣品濃度。分析定量時,一般取Ct:15-35。太大或者太小都會導致定量結(jié)果的不準確。標準曲線需滿足:E:90%~110%,R^2≥0.99,斜率-3.58 ~ -3.10。同時定量標準品的量值需要準確可靠。

用qPCR進行定量,理論上可行,實際上很難獲得準確的定量結(jié)果。
 
6、qPCR中Ct值的幾點思考

①、Ct值能否直接換算成模板拷貝數(shù)?

通過制作標準曲線(E:90%~110%,R^2≥0.99,斜率-3.58 ~ -3.10)的方法可以獲得未知樣品的初始模板拷貝數(shù),前提是需要樣品與標準品同時擴增,定量標準品需要使用標準物質(zhì)等定量準確的物質(zhì)(OD260/280換算的的拷貝數(shù)誤差很大),即使如此定值結(jié)果仍存在一定的誤差。

②、熒光定量PCR是否為定量方法?

雖然名字里有“定量”,但是qPCR的間接定量方式又復雜,又受很多因素影響,并不絕對準確,在計量領域是不被認可的。目前的核酸檢測方法中只有數(shù)字PCR是真正的定量檢測方法,其余的都是定性檢測方法。

③、Ct值能否作為評價qPCR試劑盒的指標?

qPCR試劑的評價需要從分析敏感性(最低檢測限),分析特異性(交叉反應),重復性(精密度),診斷敏感性,診斷特異性等多個指標去衡量。僅憑Ct值的高低去判斷一個qPCR試劑盒的優(yōu)劣并不夠科學,不同試劑盒的Ct值不具有可比性。有些試劑盒采取先進行幾個循環(huán)的預擴增,再進行正式循環(huán)的做法就是為了使Ct值看起來更低。

④、能否通過增加擴增循環(huán)數(shù)來增加試劑盒的敏感性?

不能!

理論上,假設初始模板量為1個拷貝,酶的擴增效率100%,到達最大閾值約需要35個循環(huán),因此業(yè)內(nèi)通常認為qPCR的有效線性范圍為Ct:15-35。通常酶的擴增效率無法達到100%,達到1個拷貝模板的循環(huán)數(shù)可能會達到38或更高。當酶的效率更低或者存在抑制劑時,檢測到1拷貝模板的循環(huán)數(shù)的Ct值可能會更高。

初始模板核酸濃度≤1 copies/μL時,這時的影響因素不光是你能否檢測到,還取決于你每次能取到模板的概率。因為在低濃度下,每次取到模板的概率是服從泊松分布的。
 
7、溫馨提示:


①、每個qPCR試劑盒在上市前通常會按照行業(yè)統(tǒng)一的標準進行各種指標的系統(tǒng)評估,試劑盒生產(chǎn)企業(yè)通常會提供這些參數(shù)供客戶進行選擇和驗證。檢測實驗室均具備對試劑盒進行性能驗證的能力。

②、一個qPCR試劑盒的核心是引物探針設計、酶、反應體系和最優(yōu)的反應條件,qPCR產(chǎn)品的銷售推廣工作,對營銷服務人員要求技術(shù)較高,方可規(guī)避誤導推廣。

③、對于檢測來說,qPCR試劑盒只是其中的一個環(huán)節(jié)。如果想得到可靠的檢測結(jié)果,還需要對采樣、運輸、保存、處理、提取和擴增的每個環(huán)節(jié),進行質(zhì)量控制(檢測全流程質(zhì)量控制)。實驗室檢測人員也不能持有,解決了qPCR試劑盒的問題就解決了檢測中所有問題的非理性觀點。
來源:上海博湖生物科技有限公司銷售部
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