實(shí)驗(yàn)方案:微滴/微球制備儀制備殼聚糖微球
瀏覽次數(shù):1036 發(fā)布日期:2023-12-7
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本實(shí)驗(yàn)方案通過利用微滴/微球制備儀,以Drop-Surf微滴生成油為油相,以5%殼聚糖為水相制備高單分散的微滴,并與接收液油相中的戊二醛發(fā)生Schiff堿反應(yīng)實(shí)現(xiàn)微滴的固化。最終獲得具有極高的單分散性的殼聚糖微球(CV<5%)。
引言:
殼聚糖是一種功能線性聚合物,是由甲殼素部分去乙;[1-3]。因其來源廣泛、無毒、價格低廉、良好的生物相容性和可降解而備受關(guān)注。近年來,殼聚糖作為一種新型功能材料,以纖維、膜、微球和膠囊等形式在蛋白吸附分離、催化劑載體、酶的固定化、重金屬吸附和藥物釋放等方面具有很大的應(yīng)用潛力[2]。此外,殼聚糖在每個C6原子單元上都有一個游離的氨基,這使得殼聚糖可以與醛基發(fā)生Schiff堿反應(yīng),且在這一反應(yīng)過程中生成的C=N鍵發(fā)生n-π*躍遷產(chǎn)生自發(fā)熒光[2]。而這種熒光恰恰可以應(yīng)用于血液循環(huán)追蹤、細(xì)胞外基質(zhì)表征、體內(nèi)細(xì)胞成像等領(lǐng)域。因此,殼聚糖在生物、醫(yī)藥、化學(xué)和環(huán)境等領(lǐng)域都有良好的應(yīng)用前景。
殼聚糖微球粒徑的均一度控制對其在生物、醫(yī)藥和催化等領(lǐng)域的成功應(yīng)用至關(guān)重要。目前制備殼聚糖微球的方法有乳化固化、簡單凝聚、復(fù)合凝聚和膜乳化等[2,4]。雖然這些技術(shù)完全可行,但也存在著很大的缺點(diǎn),如產(chǎn)率不穩(wěn)定、程序復(fù)雜、粒徑分布不均和重復(fù)性差等。因此,開發(fā)一種可重復(fù)、粒徑及均勻度可控的殼聚糖微球制備技術(shù)是其成功應(yīng)用的必要條件。FluidicLab微滴制備平臺運(yùn)用液滴微流控技術(shù),通過微滴/微球制備儀制備高度均一的殼聚糖微滴,再與戊二醛發(fā)生Schiff堿反應(yīng)實(shí)現(xiàn)微滴的固化,最終得到殼聚糖微球。該法操作簡便,樣品利用率高,制備得到的微球單分散性高(CV<5%),具有較好重復(fù)性。
實(shí)驗(yàn)材料:
試劑 |
微滴生成油(Drop-Surf,F(xiàn)luidicLab) |
破乳劑(Drop-Surf,F(xiàn)luidicLab) |
殼聚糖(FluidicLab) |
冰乙酸(Macklin, A801295-500 mL) |
戊二醛(50%, Aladdin, G105905-500 mL) |
耗材 |
15 mL離心管(Falcon 15 mL REF 352097)若干 |
1.5 mL離心管若干 |
內(nèi)/外徑0.25 /1.6 mm PEEK管及所需接頭 |
10 mL和20 mL透明玻璃瓶若干 |
0.22 μm針式過濾器(PTFE材質(zhì))若干 |
10 mL注射器若干 |
芯片夾具 |
PDMS-FF-100 μm 芯片(FluidicLab) |
PDMS標(biāo)準(zhǔn)芯片夾具 |
設(shè)備 |
Fluidiclab微滴/微球制備儀(兩通道) |
輔助設(shè)備 |
電腦(Win10 以上系統(tǒng)) |
高速離心機(jī)(湖南湘儀, H1850) |
普通光學(xué)顯微鏡(用于測微球粒徑) |
實(shí)驗(yàn)步驟:
- 試劑配制:
- 5%(wt%)殼聚糖水溶液:
將0.5 g殼聚糖加入到約9.3 mL的超純水中,并加入200 μL (約0.2 g)冰乙酸輔助溶解,振蕩放置于85 ℃的鼓風(fēng)干燥箱中加熱溶解;待完全溶解后用0.22 μm的針式過濾器過濾備用。
- 1%戊二醛油相溶液:
取490 μL微滴生成油,加入體積為10 μL的50%戊二醛,振蕩均勻備用。
2. 微滴制備:
微滴/微球制備儀的安裝連接
微滴/微球制備儀安裝連接參考《微滴/微球制備儀使用手冊V.1.0》中“2. 微滴/微球制備儀的安裝連接”的部分;其連接如下(步驟③-⑦連接效果如下圖所示):
① 用氣管依次連接“空氣壓縮機(jī)”--“氣源處理裝置”--“微滴/微球制備儀”;
② 將微滴/微球制備儀分別與電源、電腦的連接;
③ 用氣管分別將A0(壓力輸出通道一)和A1(油相15 mL儲液池),B0(壓力輸出通道二)和B1(水相1.5 mL儲液池)連接;
④ 用配有1/4-28螺紋接頭和卡箍的PEEK管(內(nèi)/外徑 0.25 mm/1.6 mm)分別將A1(油相15 mL儲液池)和A2(通道一流量傳感器),B1(水相1.5 mL儲液池)和B2(通道二流量傳感器)連接;
⑤ 用配有1/4-28螺紋接頭和卡箍的PEEK管(內(nèi)/外徑 0.25 mm/1.6 mm)分別將A2(通道一流量傳感器)和A3(PDMS芯片的油相入口),B2(通道二流量傳感器)和B3(PDMS芯片的水相入口)連接;
⑥ C為標(biāo)準(zhǔn)PDMS芯片和夾具的組合,芯片和夾具的入口通過硅膠塞密封;
⑦ 用PEEK管(內(nèi)/外徑 0.25 mm/1.6 mm)將芯片出口D處生成的乳液導(dǎo)出。
2. FluidicLabSuite軟件的安裝和設(shè)備的添加:
FluidicLabSuite軟件的安裝參考《微滴/微球制備儀使用手冊V.1.0》中“3.1 FluidicLabSuite軟件的安裝”的部分;
3. 殼聚糖微液滴的制備:
具體操作步驟如下(參考視頻“微流控應(yīng)用:微滴生成儀制備殼聚糖微球”):
① 分別在15 mL油相儲液池(通道一)和1.5 mL水相儲液池(通道二)中依次加入5 mL微滴生成油和1 mL 5%的殼聚糖水溶液;
② FluidicLabSuite軟件的設(shè)備添加參考《微滴/微球制備儀使用手冊V.1.0》中“3.2 FluidicLabSuite軟件的設(shè)備添加”的部分(相機(jī)和流量傳感器僅需添加一次);
③ 打開空氣壓縮機(jī)和氣源處理裝置開關(guān);
④ 在乳液出口端放置離心管接收微滴穩(wěn)定前的廢液;
⑤ 在電腦端設(shè)置通道一壓力(油相,如150 mbar)和通道二壓力(水相,如900 mbar,水相黏度大,流阻大,壓力更大)排出管路和芯片中的空氣;
⑥ 待管路和芯片中完全填充液體后(空氣被完全排出);將整個系統(tǒng)由壓力控制切換到流速控制,并設(shè)置通道一(油相)和通道二(水相)流速分別為20和5 μL/min;
⑦ 調(diào)整反饋值(Feedback)快速達(dá)到設(shè)定流速,并實(shí)現(xiàn)流速的穩(wěn)定輸出;
⑧ 用疏水培養(yǎng)皿接收一滴乳液,并在普通光學(xué)顯微鏡下觀察其微滴的均勻性;
⑨ 待微滴生成均勻后,即可開始接收至裝有1%戊二醛油相溶液的1.5 mL離心管中;
⑩ 20 min后停止收集,密封于離心管中,輕微振蕩加快微滴固化,隨后靜置一段時間。
3. 殼聚糖微球的破乳清洗:
具體操作步驟如下(參考視頻“微流控應(yīng)用:微滴生成儀制備殼聚糖微球”):
① 取出1.5 mL離心管底部微滴生成油;
② 按V球:V破=1:2 加入破乳劑,振蕩破乳;
③ 2500 rpm離心處理1 min,并取出底部破乳劑;
④ 重復(fù)上述②和③操作;
⑤ 最終得到固化后的殼聚糖微球。
4. 微滴/微球制備儀清洗:
微滴生成儀每次使用完必須清洗管路、流量傳感器和芯片。
具體操作詳見“微滴/微球制備儀操作指導(dǎo)卡”。
結(jié)果與討論:
剛接收的微滴平均粒徑為107.53 μm,具有極高的單分散性(變異系數(shù):CV=2.14%)。其顯微鏡圖和粒徑分布如下圖所示:
通過與戊二醛發(fā)生Schiff堿反應(yīng)實(shí)現(xiàn)微滴的固化,最終獲得的殼聚糖微球平均粒徑為101.67 μm,具有極高的單分散性(變異系數(shù):CV=2.53%)。其顯微鏡圖和粒徑分布如下圖所示:
參考文獻(xiàn):
[1] Zhao H., et al. A novel microfluidic approach for monodispersed chitosan microspheres with enhanced autofluorescence, Chem. Eng. J., 215–216, 784-790 (2013).
[2] Xu, J.H., et al. A Novel Microfluidic Approach for Monodispersed Chitosan Microspheres with Controllable Structures. Adv. Healthcare Mater., 1, 106-111 (2012).
[3] Zhu Y., et al. Microfluidic synthesis of thiourea modified chitosan microsphere of high specific surface area for heavy metal wastewater treatment, Chin. Chem. Lett.,28, 633-641 (2016).
[4] Xu, J.H., et al. Preparation of monodispersed chitosan microspheres and in situ encapsulation of BSA in a co-axial microfluidic device. Biomed Microdevices, 11, 243–249 (2009).