生成高質(zhì)量的cDNA文庫,對來自單細胞的T細胞受體mRNA 進行高效測序
瀏覽次數(shù):714 發(fā)布日期:2023-10-10
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摘要:
單細胞組學(xué)提供有關(guān)單個細胞的未稀釋信息,例如轉(zhuǎn)錄水平和高度可變蛋白質(zhì)的序列。 RNase H 依賴性 PCR 啟用的 T 細胞受體測序 (rhTCRseq) 允許對 TCR 域異質(zhì)性進行高效和高度特異性的分析,以表征免疫反應(yīng)。試驗小型化有助于將分析縮小到單細胞水平,而不會降低靈敏度或數(shù)據(jù)質(zhì)量。小型化的關(guān)鍵要求是小體積液體處理,而這是人工無法有效完成的,需要自動化。本應(yīng)用說明介紹了使用 MANTIS® 液體分配器構(gòu)建質(zhì)量與從大量 RNA 中構(gòu)建相媲美的 rhTCRseq cDNA 文庫。
介紹:
我們用核糖核酸酶 H 依賴性 PCR 啟用的 T 細胞受體測序 (rhTCRseq) 來進行單細胞 TCR 庫分析。與從總 RNA 文庫制備中重建 TCR 相比,該方法更加精簡,提高了獲取配對 TCR 亞基(α 和 β)異質(zhì)性信息的成功率,并確保了整個互補決定區(qū) 3 (CDR3) 的恢復(fù)。
rhTCRseq 使用高度特異性的 PCR 來實現(xiàn)從 TCR mRNA 中靶向擴增 α- 和 β- CDR3 片段。依靠 RNase H 在 PCR 過程中配對時原位生成功能性引物大大提高了該方法的特異性,同時減少了引物二聚體形成和脫靶擴增。工作流程(圖 1)開始于我們將單個細胞分類到微孔板中,然后是裂解、cDNA 文庫生成、TCR 特異性擴增、對混合樣本進行第二次 PCR 以創(chuàng)建測序文庫和測序。
圖 1: rhTCRseq 工作流程。
此前,Trombetta 等人開發(fā)了一種用于 96 孔格式的單細胞 RNA 測序的協(xié)議。通過將 384 孔板中的實驗小型化來開發(fā) rhTCRseq 實驗方案,將所需樣品體積減少了十倍。
試驗小型化有幾個好處,包括提高靈敏度、減少樣品量、提高數(shù)據(jù)質(zhì)量和提高通量,同時降低成本和減少廢物產(chǎn)生。然而,試驗小型化的一個挑戰(zhàn)是準(zhǔn)確和精確地分配小體積試劑。為了解決這個問題,Dana-Farber 癌癥研究所的研究人員使用 MANTIS 液體分配器在 384 孔板中將單細胞 rhTCRseq 試驗小型化。
MANTIS 是一種自動化、非接觸式、高精度的液體分配器,具有極低的死體積(圖 2)。 其獨特的基于隔膜的微流體泵被我們稱為“芯片”,它可以分配最低 100 nL 的體積,CV 值低于 3%。用戶可以通過將充滿試劑的移液器吸頭直接插入芯片來提供試劑,從而將死體積減少到幾微升。 MANTIS 兼容最多 1536 孔的任何板密度,并且能夠?qū)⑷魏误w積分配到任何孔中。它的芯片可以處理從 1 cP(類似水)到 25 cP(相當(dāng)于室溫下 70% 的甘油溶液)的粘度。 所有這些特性使 MANTIS 非常適合單細胞組學(xué)。本應(yīng)用說明展示了構(gòu)建高質(zhì)量 cDNA 文庫以對單細胞 T 細胞受體 mRNA 進行高效測序的工作流程。
材料和方法:
- 將單個細胞分選到 Twin.tec 384 孔 PCR 板(Eppendorf)中。
- 使用 MANTIS 分液器 (FORMULATRIX),將裂解混合物 (1 μL) 分配到板的每個孔中。
- 將微孔板轉(zhuǎn)移到熱循環(huán)儀中,并以以下方案運行:50 °C 30 分鐘,72 °C 5 分鐘和 4 °C(保持)。
- 使用 MANTIS 將 RT 混合物 (1 μL) 分配到板的每個孔中。
- 熱循環(huán)執(zhí)行如下:42 °C 90 分鐘,70 °C 10 分鐘,和 4 °C(保持)。
- 使用 MANTIS,將 PCR 混合物 (8 μL) 分配到板的每個孔中。
- 將板轉(zhuǎn)移至熱循環(huán)儀,并執(zhí)行以下 PCR 方案:
- 使用 1 mL 移液器吸頭作為儲液器,然后使用 MANTIS 將 11 μL ProNex 珠子 (Promega)分配至板的每個孔中。
- 將微孔板在室溫下培養(yǎng) 10 分鐘。
- 將微孔板置于 MagnaBot 384 磁力分離臺 (Promega) 上直至溶液澄清。使用 8 通道移液器移去上清液。
- 使用 MANTIS,在每個孔中分配 30 μL 洗滌緩沖液。
- 洗滌并風(fēng)干微珠后,使用 MANTIS 將 17 μL 洗脫緩沖液添加到每個孔中。
- 將板在室溫下培養(yǎng) 5 分鐘。
- 將微孔板置于 MagnaBot 384 上直至溶液澄清,并將 15 μL 上清液從每個孔轉(zhuǎn)移到新板中。
- 使用 2100 生物分析儀 (Agilent) 確定純化的 cDNA 文庫的質(zhì)量和數(shù)量。
結(jié)果:
單細胞 cDNA 文庫每次運行的平均濃度介于 0.5 和 6.1 ng/μl 之間。單細胞 cDNA 文庫的平均片段大小約為 2000 bp,很少或沒有小于 400 bp 的物種(圖 3,紅色軌跡)。 Trombetta 等人針對 96 孔板中的 Smart-Seq2 單細胞 cDNA 文庫報告了類似的結(jié)果。 這表明在 384 孔板中使用小型化方案不會影響 cDNA 文庫中的片段分布。
來自 384 個單細胞池的最終 rhTCRseq 文庫的生物分析儀軌跡顯示 260–400 bp 的片段(圖 3,藍色軌跡)。 在使用散裝 RNA 制備的 rhTCRseq 文庫中觀察到類似的片段大。▓D 3,綠色跡線)。這些結(jié)果進一步證實,基于單細胞的小型化方案產(chǎn)生的結(jié)果可與大量 RNA 方法相媲美。
圖3:生物分析儀軌跡圖
總結(jié):
rhTCRseq 的單細胞 RNA-seq 文庫制備規(guī)模已成功縮小 10 倍。 由此產(chǎn)生的全尺寸 cDNA 文庫片段大小分布與先前報告的數(shù)據(jù)一致。 最終的 rhTCRseq 文庫片段分布在由大量 RNA 生成的文庫和 384 個單細胞之間是相似的。我們得出結(jié)論,RNAseq 反應(yīng)的小型化不會影響文庫的質(zhì)量或靈敏度。雖然小型化對液體處理提出了嚴(yán)格的要求,但這項工作表明 Mantis 非常適合中等通量 RNAseq 和類似組學(xué)應(yīng)用的小型化。