1.引言
提取高濃度、大片段、多樣性程度高、具有代表性的土壤微生物總DNA對土壤微生物多樣性研究至關(guān)重要。然而,土壤是一個非常復(fù)雜的異質(zhì)體系,其中含有的腐植酸及腐植酸類似物、酚類化合物、重金屬離子等,在DNA提取過程中如不能有效去除,將直接影響后續(xù)的PCR擴增、核酸雜交、內(nèi)切酶消化等分子操作。
用傳統(tǒng)微生物學(xué)方法對復(fù)雜微生物生態(tài)系統(tǒng)進(jìn)行研究必須首先進(jìn)行微生物的分離培養(yǎng)。由于土壤微生物生態(tài)系統(tǒng)極為復(fù)雜及培養(yǎng)條件的限制,可在實驗室培養(yǎng)的微生物還不到土壤微生物總數(shù)的1%,相當(dāng)多的微生物因無法人工培養(yǎng)而未被認(rèn)識[1]。
土壤微生物DNA的提取純化是一個耗時、繁瑣的過程,許多學(xué)者一直在探索更加快速、高效、低成本的土壤DNA提取方法。20世紀(jì)80年代中期以來,微生物學(xué)家開始采用免培養(yǎng)分子微生物生態(tài)學(xué)法直接對土壤微生物進(jìn)行研究[2],其方法必須提取土壤微生物群落的DNA。Volossiouk[3]等使用液氮研磨及SDS(十二烷基磺酸鈉)破解微生物細(xì)胞提取土壤DNA,Tsai[4]等則采用溶菌酶和SDS法提取土壤DNA,而這些方法所提取的DNA雜質(zhì)較多,嚴(yán)重影響后續(xù)研究結(jié)果[5-6]。后來,Bourrain等[7]從活性污泥中以及LaMontagne等[8]從堆肥中提取了微生物群落的DNA。但是,目前仍然沒有一種快速、高效、低成本且高質(zhì)量的土壤DNA提取方法。本文購買了市面上常用的土壤DNA試劑盒,就提取效果進(jìn)行了對比。
2.材料與方法
2.1材料
用于DNA提取的土壤樣品采自無錫市惠山區(qū)惠山中央公園草坪的貧瘠土(1~10 cm表土;樣品編號1)、池塘邊的活性污泥(樣品編號2),以及小樹林的腐殖土(1~10 cm表土;樣品編號3)。
2.2方法
2.2.1 分組
設(shè)置三個實驗組:
(A)O公司 (Lot. M****-02);
(B)M公司 (Lot.***545);
(C)Bioteke (貨號:AU46212)。
2.2.2 DNA提取
嚴(yán)格按照試劑盒步驟提取土壤DNA,比較不同試劑盒處理的DNA提取效率,并通過凝膠電泳和PCR擴增分別確定不同試劑盒提取后DNA的提取量及擴增16S rRNA基因的可行性。
2.2.3 PCR擴增
用細(xì)菌通用引物對27F:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3' 和1492R:5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3' PCR擴增不同處理后提取的土壤和活性污泥微生物群落中的16S rRNA基因。PCR循環(huán)為:94℃,3 min,1次循環(huán);94℃,30 s,30次循環(huán);55℃,30 s,30次循環(huán);72℃,1 min,30次循環(huán);72℃,5 min,1次循環(huán)。
3.結(jié)果與分析
3.1提取的DNA濃度及完整性的對比結(jié)果
表1土壤基因組DNA超微量分光光度計檢測結(jié)果
組別 |
樣本 |
A260/A230 |
A260/A280 |
樣品濃度 |
單位 |
樣品類型 |
A組 |
土樣1
|
1.14 |
1.81 |
31.22 |
ng/ul |
dDNA |
1.11 |
1.79 |
21.85 |
ng/ul |
dDNA |
1.17 |
1.8 |
24.31 |
ng/ul |
dDNA |
土樣2
|
1.46 |
1.84 |
31.62 |
ng/ul |
dDNA |
1.46 |
1.84 |
25.09 |
ng/ul |
dDNA |
1.53 |
1.86 |
33.71 |
ng/ul |
dDNA |
土樣3 |
1.73 |
1.84 |
69.37 |
ng/ul |
dDNA |
1.65 |
1.83 |
50.54 |
ng/ul |
dDNA |
1.47 |
1.81 |
37.03 |
ng/ul |
dDNA |
B組 |
土樣1 |
0.07 |
1.7 |
59.41 |
ng/ul |
dDNA |
0.06 |
1.87 |
48.72 |
ng/ul |
dDNA |
0.06 |
1.83 |
53.26 |
ng/ul |
dDNA |
土樣2 |
0.07 |
1.94 |
63.65 |
ng/ul |
dDNA |
0.08 |
1.85 |
63.96 |
ng/ul |
dDNA |
0.07 |
1.93 |
60.32 |
ng/ul |
dDNA |
土樣3 |
0.09 |
1.87 |
71.07 |
ng/ul |
dDNA |
0.09 |
1.89 |
76.34 |
ng/ul |
dDNA |
0.08 |
1.9 |
72.47 |
ng/ul |
dDNA |
C組 |
土樣1 |
2.07 |
1.84 |
24.98 |
ng/ul |
dDNA |
2.07 |
1.78 |
23.39 |
ng/ul |
dDNA |
2.36 |
1.83 |
28.05 |
ng/ul |
dDNA |
土樣2 |
2.31 |
1.87 |
36 |
ng/ul |
dDNA |
2.4 |
1.88 |
37.4 |
ng/ul |
dDNA |
2.28 |
1.87 |
25.56 |
ng/ul |
dDNA |
土樣3 |
2.02 |
1.81 |
39.57 |
ng/ul |
dDNA |
2.03 |
1.83 |
40.33 |
ng/ul |
dDNA |
1.98 |
1.82 |
36.22 |
ng/ul |
dDNA |
圖1土壤基因組DNA電泳圖
圖2 土壤樣品16S rRNA基因PCR擴增產(chǎn)品電泳圖
3.2提取的DNA濃度及完整性的對比結(jié)果分析
1.A組提取的DNA鹽度尚可,但是含有的PCR干擾因子較多,PCR擴增不出條帶;
2. B組三種土壤有提取的核酸只有兩種滿足PCR條件;
3.C組土壤提取試劑盒提取的土壤DNA,鹽殘留少,純度高,提取的DNA中PCR抑制因子低,提取出的DNA可正常擴增,條帶單一且清晰。
4. 參考文獻(xiàn)
[1]Torsvik V L. Microbial diversity and function in soil: from genes to ecosystems[J]. Current Opinion in Microbiology, 2002, 5(3):240-245.
[2]Head I M, Saunders J R, Pickup R W. Microbial Evolution, Diversity, and Ecology: A Decade of Ribosomal RNA Analysis of Uncultivated Microorganisms[J]. Microbial Ecology, 1998, 35(1):1-21.
[3]Volossiouk T, Robb E J, Nazar R N. Direct DNA extraction for PCR-mediated assays of soil organisms.[J]. Appl Environ Microbiol, 1995, 61(11):3972-3976.
4]Tsai Y L, Olson B H. Rapid method for direct extraction of DNA from soil and sediments.[J]. Applied & Environmental Microbiology, 1991, 57(4):1070-4.
[5] Bürgmann H, Pesaro M, Widmer F, et al. A strategy for optimizing quality and quantity of DNA extracted from soil[J]. J Microbiol Methods, 2001, 45(1):7-20.
[6]王嘯波, 唐玉秋, 王金華,等. 環(huán)境樣品中DNA的分離純化和文庫構(gòu)建[J]. 微生物學(xué)報, 2001, 41(2):133-140.
[7]Bourrain M, Achouak W, Urbain V, et al. DNA Extraction from Activated Sludges[J]. Current Microbiology, 1999, 38(6):315-319.
[8]Lamontagne M G, Jr M F, Holden P A, et al. Evaluation of extraction and purification methods for obtaining PCR-amplifiable DNA from compost for microbial community analysis.[J]. Journal of Microbiological Methods, 2002, 49(3):255-264.