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不同品牌試劑盒提取土壤DNA的結(jié)果對比

瀏覽次數(shù):3973 發(fā)布日期:2018-8-31  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
1.引言
 
提取高濃度、大片段、多樣性程度高、具有代表性的土壤微生物總DNA對土壤微生物多樣性研究至關(guān)重要。然而,土壤是一個非常復(fù)雜的異質(zhì)體系,其中含有的腐植酸及腐植酸類似物、酚類化合物、重金屬離子等,在DNA提取過程中如不能有效去除,將直接影響后續(xù)的PCR擴增、核酸雜交、內(nèi)切酶消化等分子操作。

用傳統(tǒng)微生物學(xué)方法對復(fù)雜微生物生態(tài)系統(tǒng)進(jìn)行研究必須首先進(jìn)行微生物的分離培養(yǎng)。由于土壤微生物生態(tài)系統(tǒng)極為復(fù)雜及培養(yǎng)條件的限制,可在實驗室培養(yǎng)的微生物還不到土壤微生物總數(shù)的1%,相當(dāng)多的微生物因無法人工培養(yǎng)而未被認(rèn)識[1]

土壤微生物DNA的提取純化是一個耗時、繁瑣的過程,許多學(xué)者一直在探索更加快速、高效、低成本的土壤DNA提取方法。20世紀(jì)80年代中期以來,微生物學(xué)家開始采用免培養(yǎng)分子微生物生態(tài)學(xué)法直接對土壤微生物進(jìn)行研究[2],其方法必須提取土壤微生物群落的DNA。Volossiouk[3]等使用液氮研磨及SDS(十二烷基磺酸鈉)破解微生物細(xì)胞提取土壤DNA,Tsai[4]等則采用溶菌酶和SDS法提取土壤DNA,而這些方法所提取的DNA雜質(zhì)較多,嚴(yán)重影響后續(xù)研究結(jié)果[5-6]。后來,Bourrain等[7]從活性污泥中以及LaMontagne等[8]從堆肥中提取了微生物群落的DNA。但是,目前仍然沒有一種快速、高效、低成本且高質(zhì)量的土壤DNA提取方法。本文購買了市面上常用的土壤DNA試劑盒,就提取效果進(jìn)行了對比。
 
2.材料與方法
 
2.1材料

用于DNA提取的土壤樣品采自無錫市惠山區(qū)惠山中央公園草坪的貧瘠土(1~10 cm表土;樣品編號1)、池塘邊的活性污泥(樣品編號2),以及小樹林的腐殖土(1~10 cm表土;樣品編號3)。
 

 
2.2方法

2.2.1 分組

設(shè)置三個實驗組:
A)O公司 (Lot. M****-02);
B)M公司 (Lot.***545);
C)Bioteke (貨號:AU46212)。
 
2.2.2 DNA提取

嚴(yán)格按照試劑盒步驟提取土壤DNA,比較不同試劑盒處理的DNA提取效率,并通過凝膠電泳和PCR擴增分別確定不同試劑盒提取后DNA的提取量及擴增16S rRNA基因的可行性。
 
2.2.3 PCR擴增

用細(xì)菌通用引物對27F:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3' 和1492R:5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3' PCR擴增不同處理后提取的土壤和活性污泥微生物群落中的16S rRNA基因。PCR循環(huán)為:94℃,3 min,1次循環(huán);94℃,30 s,30次循環(huán);55℃,30 s,30次循環(huán);72℃,1 min,30次循環(huán);72℃,5 min,1次循環(huán)。
 
3.結(jié)果與分析

3.1提取的DNA濃度及完整性的對比結(jié)果
 
1土壤基因組DNA超微量分光光度計檢測結(jié)果

組別
樣本
A260/A230
A260/A280
樣品濃度
單位
樣品類型
 
 
 
 
A組
 
土樣1
 
1.14
1.81
31.22
ng/ul
dDNA
1.11
1.79
21.85
ng/ul
dDNA
1.17
1.8
24.31
ng/ul
dDNA
 
土樣2
 
1.46
1.84
31.62
ng/ul
dDNA
1.46
1.84
25.09
ng/ul
dDNA
1.53
1.86
33.71
ng/ul
dDNA
 
土樣3
1.73
1.84
69.37
ng/ul
dDNA
1.65
1.83
50.54
ng/ul
dDNA
1.47
1.81
37.03
ng/ul
dDNA
 
 
 
 
B組
 
土樣1
0.07
1.7
59.41
ng/ul
dDNA
0.06
1.87
48.72
ng/ul
dDNA
0.06
1.83
53.26
ng/ul
dDNA
 
土樣2
0.07
1.94
63.65
ng/ul
dDNA
0.08
1.85
63.96
ng/ul
dDNA
0.07
1.93
60.32
ng/ul
dDNA
 
土樣3
0.09
1.87
71.07
ng/ul
dDNA
0.09
1.89
76.34
ng/ul
dDNA
0.08
1.9
72.47
ng/ul
dDNA
 
 
 
 
C組
 
土樣1
2.07
1.84
24.98
ng/ul
dDNA
2.07
1.78
23.39
ng/ul
dDNA
2.36
1.83
28.05
ng/ul
dDNA
 
土樣2
2.31
1.87
36
ng/ul
dDNA
2.4
1.88
37.4
ng/ul
dDNA
2.28
1.87
25.56
ng/ul
dDNA
 
土樣3
2.02
1.81
39.57
ng/ul
dDNA
2.03
1.83
40.33
ng/ul
dDNA
1.98
1.82
36.22
ng/ul
dDNA

圖1土壤基因組DNA電泳圖
 

圖2 土壤樣品16S rRNA基因PCR擴增產(chǎn)品電泳圖
 
 
3.2提取的DNA濃度及完整性的對比結(jié)果分析

1.A組提取的DNA鹽度尚可,但是含有的PCR干擾因子較多,PCR擴增不出條帶;
2. B組三種土壤有提取的核酸只有兩種滿足PCR條件;
3.C組土壤提取試劑盒提取的土壤DNA,鹽殘留少,純度高,提取的DNA中PCR抑制因子低,提取出的DNA可正常擴增,條帶單一且清晰。
 
4. 參考文獻(xiàn)
 
[1]Torsvik V L. Microbial diversity and function in soil: from genes to ecosystems[J]. Current Opinion in Microbiology, 2002, 5(3):240-245.
[2]Head I M, Saunders J R, Pickup R W. Microbial Evolution, Diversity, and Ecology: A Decade of Ribosomal RNA Analysis of Uncultivated Microorganisms[J]. Microbial Ecology, 1998, 35(1):1-21.
[3]Volossiouk T, Robb E J, Nazar R N. Direct DNA extraction for PCR-mediated assays of soil organisms.[J]. Appl Environ Microbiol, 1995, 61(11):3972-3976.
4]Tsai Y L, Olson B H. Rapid method for direct extraction of DNA from soil and sediments.[J]. Applied & Environmental Microbiology, 1991, 57(4):1070-4.
[5] Bürgmann H, Pesaro M, Widmer F, et al. A strategy for optimizing quality and quantity of DNA extracted from soil[J]. J Microbiol Methods, 2001, 45(1):7-20.
[6]王嘯波, 唐玉秋, 王金華,等. 環(huán)境樣品中DNA的分離純化和文庫構(gòu)建[J]. 微生物學(xué)報, 2001, 41(2):133-140.
[7]Bourrain M, Achouak W, Urbain V, et al. DNA Extraction from Activated Sludges[J]. Current Microbiology, 1999, 38(6):315-319.
[8]Lamontagne M G, Jr M F, Holden P A, et al. Evaluation of extraction and purification methods for obtaining PCR-amplifiable DNA from compost for microbial community analysis.[J]. Journal of Microbiological Methods, 2002, 49(3):255-264.
來源:無錫百泰克生物技術(shù)有限公司
聯(lián)系電話:18001279873
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標(biāo)簽: 土壤DNA
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