還原型谷胱甘肽(reduced glutathione, GSH)試劑盒說明書
分光光度法 50 管/48 樣
注意:正式測定之前選擇 2-3 個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測定。
測定意義:
GSH 是細(xì)胞內(nèi)最主要的抗氧化巰基物質(zhì),在抗氧化、蛋白質(zhì)巰基保護(hù)和氨基酸跨膜運(yùn)輸?shù)戎芯哂兄匾饔。還原型與氧化型比值(GSH/GSSG)是細(xì)胞氧化還原狀態(tài)的主要動態(tài)指標(biāo)。因此,測定細(xì)胞內(nèi) GSH 和 GSSG 含量以及 GSH/GSSG 比值,能夠很好地反映細(xì)胞所處的氧化還原狀態(tài)。
測定原理:
DTNB 與 GSH 反應(yīng)生成復(fù)合物,在 412nm 處有特征吸收峰;其吸光度與 GSH 含量成正比。
自備儀器和用品:
可見分光光度計、低溫離心機(jī)、水浴鍋、可調(diào)節(jié)移液器、1mL 玻璃比色皿和蒸餾水。
試劑組成和配制:
試劑一:液體×1 瓶,4℃保存。
試劑二:液體×1 瓶,4℃保存。
試劑三:液體×1 瓶,4℃避光保存。
粗酶液提。
1. 組織:按照組織質(zhì)量(g):試劑一體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1mL 試劑一)進(jìn)行冰浴勻漿。8000g,4℃離心 10min,取上清置冰上待測。
2. 細(xì)菌、真菌:按照細(xì)胞數(shù)量(104 個):試劑一體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細(xì)胞加入 1mL 試劑一),冰浴超聲波破碎細(xì)胞(功率 300w,超聲 3 秒,間隔 7秒,總時間 3min);然后 8000g,4℃,離心 10min,取上清置于冰上待測。
3. 血清等液體:直接測定。
GSH 測定操作:
1. 分光光度計預(yù)熱 30min,調(diào)節(jié)波長到 412 nm,蒸餾水調(diào)零。
2. 試劑二置于 25℃(一般物種)或者 37℃(哺乳動物)水浴中保溫 30min。
3. 空白管:取 1mL 玻璃比色皿,依次加入 100μL 蒸餾水,700μL 試劑二,200μL 試劑三, 混勻靜置 2min 后測定 412 nm 吸光度 A1。
4. 測定管:取 1mL 玻璃比色皿,依次加入 100μL 上清液,700μL 試劑二,200μL 試劑三, 混勻靜置 2min 后測定 412 nm 吸光度 A2。
注意:空白管只需要測定一次。
GSH 含量計算公式:
GSH 標(biāo)準(zhǔn)曲線公式:y=1.5 x(x 為 GSH 濃度,μ mol /mL;y 為吸光值)
GSH 計算:
(1) 按蛋白濃度計算
GSH(μ mol/ mg prot)=(A2-A1) ÷1.5×V 樣÷(V 樣×Cpr )=0.667×(A2-A1) ÷Cpr
(2) 按樣本鮮重計算
GSH(μ mol/g 鮮重)=(A2-A1) ÷1.5×V 樣÷(V 樣÷V 樣總×W)=0.667×(A2-A1) ÷W
(3) 按細(xì)胞數(shù)量計算
GSH(μ mol /104 cell)=(A2-A1) ÷1.5×V 樣÷(V 樣÷V 樣總×細(xì)胞數(shù)量)=0.667×(A2-A1) ÷細(xì)胞數(shù)量(4) 按液體體積計算
GSH(μ mol/ mL)=(A2-A1) ÷1.5×V 樣÷V 樣 =0.667×(A2-A1)
V 樣總:上清液總體積,1 mL;V 樣:加入反應(yīng)體系中上清液體積,100μL=0.1 mL;W: 樣品質(zhì)量,g ;Cpr:上清液蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;
注意事項:
1. 試劑一中含有蛋白質(zhì)沉淀劑,因此上清液不能用于蛋白濃度測定。
2. 最低檢出限為 0.01mmol/L。