定量PCR技術(shù)常見問題論壇交流
瀏覽次數(shù):13405 發(fā)布日期:2017-8-2
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1. 如果擴(kuò)增曲線ct值比較靠后的話,32左右,一般有什么方法解決沒有
ct值比較靠后,對實(shí)驗(yàn)有一定的影響,因?yàn)榻?jīng)過那么多次的循環(huán),酶的活性有可能有所下降,這時(shí)候擴(kuò)增效率會有所改變(而定量PCR的理論基礎(chǔ)就是每次循環(huán)的擴(kuò)增效率我們認(rèn)為是確定的一個值)。因此最好能夠把ct值往前移。
解決辦法可以將模板加以濃縮或者抽干之后用少量水去溶解。
2. 為什么合成的引物做不加摸板的對照也能擴(kuò)增出目的條帶,而內(nèi)參用同樣體系就沒有呢?
引物被污染。
3. 實(shí)時(shí)定量PCR,熒光定量PCR,實(shí)時(shí)熒光定量PCR,real-time PCR,這些是不是同一個概念
是一個概念。
4. 我的標(biāo)準(zhǔn)曲線的slope總是大于4,而且每個梯度的平行ct值差別比較大,原因?
這個斜率是=1/LOG 10(擴(kuò)增效率),理論上擴(kuò)增效率=2,斜率是3.322。如果斜率大于4,說明擴(kuò)增效率比較小?梢钥疾橐幌路磻(yīng)體系是否合理?酶活是否正常?
平行管的CT值差別大可以考查一下自己實(shí)驗(yàn)操作是否規(guī)范,另外一種原因就是儀器本身的誤差也可能會導(dǎo)致CT值差別比較大。
當(dāng)斜率為4的時(shí)候,擴(kuò)增效率是77.8%,斜率大于4的話,效率繼續(xù)下降。
擴(kuò)增效率的問題實(shí)際就是引物的擴(kuò)增效率,可能酶活的關(guān)系沒有那么重要,前提是試劑盒的質(zhì)量有保證;氐綌U(kuò)增效率,只有在引物和模板處于最適比例時(shí)才能得到比較滿意的擴(kuò)增效率,因此通過調(diào)節(jié)PCR反應(yīng)體系中的引物終濃度來解決,可以做一些引物梯度來比較。
5. ROX染料是什么作用?
ROX的作用ABI宣稱是用來校準(zhǔn)加樣誤差的。
但是據(jù)說ROX的作用實(shí)際上是用來校準(zhǔn)光程差的。即每個孔的熒光信號經(jīng)過濾光片在經(jīng)過聚焦到CCD的時(shí)候,走過的光程是不一樣的,這樣在CCD上成像的亮度就不一樣了。所以需要把這個差異用ROX來計(jì)算孔間差異有多大,然后差異系數(shù)去處理,實(shí)際的熒光信號。具體過程我不是非常清楚,請高手指正。
6. 熒光定量PCR的基線,是怎么確定的呢?
基線就是背景值,因此就是曲線在沒有“起跳”之前的一段。在軟件上有一個地方可以輸入baseline從第幾到第幾cycle作為基線。設(shè)置原則是使沒有起跳之前最多的cycle的信號接近0。
7. 我剛準(zhǔn)備做定量,請教一下,不知道伯樂的機(jī)子怎么樣?請推薦幾個合適的SYBR。牵遥牛牛蔚暮凶,1000以內(nèi)的(沒錢不好辦。,我大約做20個樣,F(xiàn)在對SYBR。牵遥牛牛握J(rèn)可嗎?
伯樂的機(jī)子不錯。takara的試劑盒,大概在1500元,400個反應(yīng)。大部分人做還是用sybr green I的。這是最常用的染料。