實驗原理

生物大分子如蛋白質、核酸、多糖等常以顆粒分散在溶液中．它們的凈電荷取決于介質的H 濃度或與其他大分子的相互作用。在電場中，帶電顆粒向陰極或陽極遷移．遷移的方向取決于它們帶電的符號．這種遷移現(xiàn)象即謂電泳。遷移的方式目前可以根據分子尺寸大小、分子所帶的電荷或分子的生物學與化學特性分為三類。如果把生物大分子的膠體溶液放在一個沒有干擾的電場中，使顆粒具有一定遷移速率的驅動力來自于顆粒的有效電荷Q和電位梯度E。它們與介質的摩擦阻力f抗衡：在自由溶液中，這種抗衡服從斯托克斯定律。f=6πrvη 這里v是在介質粘度為η半徑為r的顆粒的移動速度。但在凝膠中，這種抗衡并不完全符合斯托克斯定律。f還取決于介質小的其他因子，如凝膠厚度、顆粒尺寸、甚至介質的內滲率等。簡言之電泳就是帶電顆粒在電場中定向移動。
銀染顯色的原理是用甲醛將沉積在DNA帶上的銀離子（硝酸銀）還原成金屬銀而顯帶。

實驗試劑

1. 聚（C=30% T=5%）： 28.5g 、 N，N’-二甲基雙 1.5g、DDH₂O 100ml；

2. 7％聚：30％聚 23.3ml、10ml 10×TBE溶液、66.7ml DDH₂O；

3. 10×TBE溶液：Tris 113g 、硼酸 55g、 1000ml DDH₂O；

4. 1×TBE溶液：10×TBE溶液100ml，900ml DDH₂O；

5. 10%乙醇；

6. 0.1%硝酸；

7. 0.2%AgNO₃：

8. AgNO₃ 0.15g、DH₂O 225ml；

9. 30%NaCO₃-甲醛：NaCO₃ 30g、甲醛 0.85ml；

10. 0.1% AgNO₃：AgNO₃ 1g、1000ml DH₂O；

11. 上樣緩沖液：0.25％二甲苯氰藍、0.25％溴酚藍；

12. TEMED；

13. 10％過硫酸胺：過硫酸胺1g、10ml DDH₂O。

實驗設備

1. 垂直電泳儀

2. 垂直電泳槽

3. 玻璃

4. 橡膠�？�

5. 點樣梳

6. 搖床

7. 微量進樣器

8. 染色托盤

實驗材料

PCR擴增產物

實驗步驟

1. 電泳槽玻璃板的處理：用洗滌劑清洗玻璃板，自來水反復沖凈洗滌劑，雙蒸水沖洗3次，烘干，將兩塊玻璃裝入恰當?shù)孪鹉z�？騼�，并組裝好電泳槽（帶長玻璃的貯液槽為正極，帶短玻璃的貯液槽為陰極）。
2. 制膠：加 35μl TEMED和300μl2.5％過硫酸胺至7％聚溶液中混勻。以60O角，緩慢注入兩玻璃板間的空隙中，直至灌滿模具頂部。立即插入相應的點樣梳，（小心勿使梳齒下帶進氣泡，并且不要將梳齒全部插入膠內，留約2mm梳齒于玻璃板上端，以免拔梳時把膠孔拔斷）。由于凝膠在聚合過程中有回縮，所以應小心添加些膠液于梳子處，水平放置，室溫聚合1小時。向電泳槽內灌入 1×TBE電泳緩沖液。小心取出點樣梳，用槽內的緩沖液反復沖洗點樣孔，以去除可能存在的未聚合的聚丙烯酸胺和氣泡。
3. 加樣：取2-4μl擴增產物和2μl上樣緩沖液混勻,用微量進樣器小心加入樣品槽中。若DNA含量偏低,則可適當增加上樣量,但總體積不可超過樣品槽容量。
4. 電泳：電泳槽接上電極開啟電源，根據擴增片段的大小及電泳槽和凝膠的大小，決定電泳的電壓及電泳時間。通常室溫下以l～5V／cm電泳。當溴酚藍條帶移動到距凝膠前沿約2cm時,停止電泳。
5. 銀染法顯色：
   1) 方法一：

      a. 將PAG板浸入10%乙醇溶液固定10min，用純水洗一次；
      b. 0.1%硝酸3min，蒸餾水洗兩次。
      c. 0.2% AgNO₃溶液中10min，用去離子水洗三次；
      d. 用30% NaCO₃-甲醛溶液顯色至滿意為止，用適量10%冰乙酸終止顯色。
   2) 方法二：

      a. 取下凝膠，蒸餾水清洗凝膠30秒；

      b. 0.1% 硝酸銀染色10分鐘；

      c. 棄去染色液，蒸餾水洗膠兩次；

      d. 顯色液（顯色液配方：10g NaOH 0.2g Na₂CO₃ 2ml甲醛溶液，定溶到 500ml）顯色至滿意為止。
6. 分型：參照基因階梯的電泳譜帶進行分型。

注意事項

1. 每加完一個樣品要清洗微量進樣器,以防止互相污染,注意上樣時要小心操作,避免損壞凝膠或將樣品槽底部凝膠刺穿。
2. 以二甲苯氰藍和溴酚藍的位置大致判斷泳動距離，7％聚非變性膠中溴酚藍相當于170bp的泳動距離，二甲苯氰藍相當于40bp的泳動距離。
3. 銀染時顯色液配制好在4-10 ℃預冷可以減輕膠板的底色，銀染后膠板在水中漂洗時間控制在10s以內。