2. 加入少量無(wú)菌D-Hanks’液，用眼科剪剪成0.1-1.0 mm3 大小的碎片，用滴管輕輕吸出上層細(xì)小脂肪碎塊和油滴，再用無(wú)菌D-Hanks’液反復(fù)清洗 8~10 次，加入10 倍體積無(wú)菌消化酶液[胰蛋白酶-膠原酶消化液：0.05  g 胰蛋白酶，0.025 g Ⅴ型膠原酶(663 U/mg)，0.05 g 葡萄糖，溶于100mL 無(wú)Ca2+、Mg2+的0.01 mol/L PBS(pH 值為 7.4)溶液，用0.22 µm 微孔濾膜濾菌]，38℃±1℃消化，消化過(guò)程中不斷震蕩，10 分鐘后棄去上清液。

3. 用無(wú)菌D-Hanks’液將組織塊清洗 2~3 次，加入新鮮酶液繼續(xù)消化，重復(fù)上述步驟，此時(shí)組織塊邊緣模糊。

4. 將組織塊浸入消化酶液中，38℃±1℃消化10 分鐘，將消化酶液與組織塊分開，組織塊重新加入新鮮消化酶液進(jìn)行消化；而原消化酶液1500  rpm離心 10 分鐘，取沉淀即為消化下的細(xì)胞，重新用無(wú)菌D-Hanks’懸浮，離心，重復(fù) 1~2 次，再用培養(yǎng)基洗 2~3 次，用培養(yǎng)基懸浮即得細(xì)胞懸液。

5. 將消化過(guò)的組織塊重復(fù)消化5~6 次至組織塊消化完全，重復(fù)以上操作。

6. 合并幾次所得細(xì)胞懸液，計(jì)數(shù)，調(diào)整細(xì)胞濃度為 2×105個(gè)細(xì)胞/mL，將細(xì)胞懸液接種于24 孔塑料培養(yǎng)板中，每孔1 mL，置于37℃，5%CO2，飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

7. 由于成纖維細(xì)胞貼壁要比胰島細(xì)胞迅速，接種15 h 后，輕輕振蕩培養(yǎng)板，將上面未貼壁的細(xì)胞接入新的培養(yǎng)板中，可除去部分成纖維細(xì)胞。