根據(jù)抗原-抗體相互作用的原理從群體中選出目的物的技術。如用抗體檢測表達型的基因文庫所合成的蛋白質，從而篩選出目的基因的克隆。

實驗方法
基本方案
實驗材料 cDNA 
試劑、試劑盒 BHI 氯霉素 NaOH SSC 氯仿 異戊醇 TES SDS mRNA 甲硫氨酸 乙醇 乙酸鈉 免疫沉淀緩沖液 
儀器、耗材 轉子 硝酸纖維濾膜 離心管 微量多孔洗滌儀 
實驗步驟 1.  往微量滴定板的每孔中加入250 μl 含適當抗生素的選擇性BHI培養(yǎng)液，并分別接種獨立的cDNA克隆，37℃溫育過夜。

2.  在250 ml 燒瓶中加入50 ml BHI/抗生素培養(yǎng)液，以10個克隆過夜培養(yǎng)液為一組， 從每個微孔中取100 μl 培養(yǎng)液，混合后接種到燒瓶中。

3.  37℃培養(yǎng)至A590=0.7，然后加入氯霉素繼續(xù)于37℃溫育過夜；對每組10個過夜的克隆重復培養(yǎng)。

4.  2 000 g  4℃離心10 min，制備質粒DNA。

5.  將制得的約50 μg 質粒DNA溶于1.5 ml TE緩沖液中，移入15 ml無菌、帶蓋的玻璃培養(yǎng)管中。

6.  沸水浴10 min立即加入1.5 ml 1 mol/l NaOH，室溫放置10 min。

7.  加 9 ml 中和液，混勻后置于冰浴，檢測pH只值應在6.5~7.5之間。

8.  將0.45 μm 孔徑的硝酸纖維素濾膜放在一個連于真空泵的多孔濾器上。

9.  以1 ml/min 的速率加入第4步得到的變性DNA液，待所有液體被吸干后繼續(xù)抽吸3 min。

10.  取出濾膜用50 ml 6×SSC洗滌，然后于80℃真空烤箱中烤膜2 h。

11.  用無菌的單孔打孔器在濾膜上打出直徑為5 mm 的圓形小塊濾膜，分別用圓珠筆作好標記。

12.  將盛于無菌帶蓋的塑料管的含10~50 μg poly（A）+ RNA的0.3 ml 雜交液在70℃預熱10 min。

13.  然后將10片小濾膜放入雜交液中，在50℃溫育2 h。

14.  將小濾膜轉移到50 ml 的試管（每管最多可裝20片膜）中，每次用225 ml TES/0.5%SDS冼液于65℃旋轉振蕩洗滌30 s，共10次，吸去上請。

15.  然后每次用25 ml TES液干65℃洗膜，共2次。

16.  將每片小濾膜分別轉移到無菌、硅化的1.5 ml 微量離心管中，每管加入0.3 ml 水、2 μl 10 mg/ml 的酵母tRNA。

17.  置沸水浴中變性60 s，立即置干冰或冷乙醇中速凍。 接著在室溫下解凍。

18.  用無菌針挑去濾膜，往每個微量離心管中加入150 μl 飽和酚和150 氯仿/異戊醇，混勻，離心后將水相轉移至無菌的微量離心管中。

19.  加入30 μl 3 mol/l 乙酸鈉和2 倍體積的無水乙醇，離心沉淀核酸15 min，用0.5 ml 乙醇洗滌一次后凍干。

20.  將此雜交選擇的RNA重懸于10 μl 水中。

21.  取5 μl 雜交選擇的RNA，加入10 μl 翻譯反應混合物，其中含標記的甲硫氨酸， 30℃溫育60 min。

22.  加入15 μl 免疫沉淀緩沖液和1 μl 未經免疫的血清，室溫下溫育10 min。

23.  加入40 μl 蛋白質A-Sepharose懸液，在室溫靜置30 min、離心2 min 后將上清移至另一個新的微量離心管中。

24.  加入1 μl 針對相關基因產物的多克隆抗體或單克隆抗體，于室溫下溫育10 min。

25.  加入40 μl 蛋白質懸液，于室溫反應30 min，離心棄上滑。

26.  依次用1 ml 免疫沉淀緩沖液、1 ml 高鹽免疫沉淀緩沖液和1 ml 水冼滌蛋白A-Sepharose微珠。

27.  用20 μl 2×SDS樣品緩沖液重懸沉淀，沸水浴10  min。

28.  將吸附在蛋白A-Sepharose微珠上的翻譯產物洗下來，離心后等分成15~20 ml 的小份進行變性SDS-PAGE電泳。

29.  干膠并進行放射自顯影曝光。