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游離細(xì)胞DNA(cfDNA)檢測整體研究方案及其應(yīng)用案例

瀏覽次數(shù):151 發(fā)布日期:2024-12-18  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

01.技術(shù)簡述
細(xì)胞游離DNA(cell-free DNA,cfDNA)是指在生物體的體液中(如血漿、尿液、腦脊液等)自由存在的、非細(xì)胞內(nèi)的DNA片段。這些DNA片段通常來源于細(xì)胞凋亡(程序性死亡)或壞死(細(xì)胞損傷或死亡后釋放),可以被釋放到循環(huán)系統(tǒng)中,并在體液中被檢測到。cfDNA研究和應(yīng)用是精準(zhǔn)醫(yī)療和液體活檢領(lǐng)域的重要方向之一。

 

02.技術(shù)優(yōu)勢


03.樣本選擇及送樣要求
樣本選擇
血漿樣本:血漿能避免所含血細(xì)胞裂解引起的DNA 污染,是cfDNA 檢測的優(yōu)先選擇。

腦脊液樣本:通常作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病研究的樣本選擇。

尿液樣本:常用于泌尿系統(tǒng)癌癥如膀胱癌、腎癌等腫瘤標(biāo)志物研究及移植排異監(jiān)測等cfDNA 研究。

血漿樣本要求

樣本采集:靜脈抽血5-10ml,收集到EDTA 抗凝血管中,上下顛倒抗凝采血管,輕輕混勻,全血2-8℃保存不超過4h;如用Streck 采血管收集全血,則5-8℃保存不超過72h。

分離血漿:采血后建議馬上分離血漿,提取cfDNA,-20℃保存;如不能馬上提取,常規(guī)采血管采血后必須4h 內(nèi)(最好30min-1h 內(nèi))完成血漿分離,-80℃保存。

樣本運(yùn)輸:大體積干冰運(yùn)輸。

04.研究案例
案例1:ctDNA全基因組亞硫酸鹽測序分析,用于癌癥檢測和分子分類
發(fā)表期刊:Clinical and Translational Medicine
影響因子:8.554/1區(qū)
方法:ctDNA-WGBS

此研究納入三組乳腺癌(BC)患者(BC組n=123;健康對照組n=40),利用ctDNA-WGBS技術(shù)檢測從200μL血漿中獲得的微量ctDNA(輸入量約1ng)進(jìn)行測序分析。研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),在多中心患者隊(duì)列中,在早期和晚期BC階段中對于15個(gè)ctDNA甲基化標(biāo)志物的診斷特征表現(xiàn)出高準(zhǔn)確性。同時(shí)可以在不同的癌癥類型(包括肝細(xì)胞癌和肺癌)中可以很好區(qū)分雌激素受體狀態(tài)的ctDNA甲基化特征。
 


圖:ctDNA甲基化可以作為乳腺癌亞型分類和預(yù)測ER狀態(tài)的潛在生物標(biāo)志物[3]


案例2:MeDIP-seq結(jié)合機(jī)器學(xué)習(xí)方法,為多癌種生物標(biāo)志物檢測提供新思路
期刊:Nature Communications
影響因子:IF 14.7 / 1區(qū)
技術(shù)平臺:cfMeDIP-seq等
此研究通過結(jié)合cfMeDIP-seq技術(shù)和機(jī)器學(xué)習(xí),分析了215例樣本的cfDNA甲基化組,包括患有肝癌或腦癌的個(gè)體樣本(實(shí)驗(yàn)組)以及無癌癥個(gè)體樣本(對照組)。利用DMRs、DhMRs或DMRs+DhMRs訓(xùn)練機(jī)器學(xué)習(xí)模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)DMRs+DhMRs聯(lián)合模型在區(qū)分對照組、肝癌和腦癌方面表現(xiàn)出更優(yōu)性能,研究支持同時(shí)利用DMRs和DhMRs進(jìn)行多癌種檢測的潛力。
 


圖:用于分析血漿cfDNA甲基化的單鏈cfDNA甲基化DNA免疫沉淀測序方法[4]


案例3:ACE-seq無需亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化精準(zhǔn)區(qū)分甲基化和羥甲基化標(biāo)記
此研究建立一種利用DNA脫氨酶(APOBEC3A)實(shí)現(xiàn)的非破壞性的、低起始DNA量的鑒定5hmC技術(shù)(ACE-seq)。與傳統(tǒng)亞硫酸鹽測序(BS-Seq)不同,ACE-seq不依賴于亞硫酸鹽處理,而是通過酶促脫氨反應(yīng)來區(qū)分未修飾的胞嘧啶(C)和5-甲基胞嘧啶(5mC),同時(shí)保護(hù)5hmC不被轉(zhuǎn)化為尿嘧啶。這種方法允許對cfDNA中的5hmC進(jìn)行精確的定位和定量分析。
 

圖:幾類基因組元件的 5hmC(藍(lán)色)和 5mC(紅色)的修飾水平[2]


案例4:cfhMeDIP-seq對5-羥甲基胞嘧啶(5hmC)特征進(jìn)行檢測以預(yù)測早期胰腺癌
此研究利用cfDNA hMeDIP-seq對胰腺導(dǎo)管腺癌(PDAC)隊(duì)列(n=64)與非癌癥隊(duì)列(n=243)的5hmC變化進(jìn)行比較分析。在數(shù)千個(gè)基因中鑒定差異性羥甲基化,結(jié)果表明胰腺發(fā)育或功能相關(guān)基因和癌癥發(fā)病機(jī)制相關(guān)基因差異最為顯著。在PDAC隊(duì)列的cfDNA羥甲基化組中,與KRAS激活和TP53失活在PDAC腫瘤中常見基因調(diào)控失調(diào)相關(guān)的基因表現(xiàn)出差異性富集,表明5hmC變化在早期疾病階段能實(shí)現(xiàn)PDAC分類。
 


圖:與非癌癥患者cfDNA相比,PDAC cfDNA中的5hmC占位差異分析[5]


案例5:cfChIP-seq利用cfDNA片段分析組蛋白修飾,揭示H3K27ac水平與cfDNA片段大小有關(guān)
此研究利用cfChIP-seq檢測技術(shù)從18個(gè)健康對照樣本中獲得H3K27ac信號,并結(jié)合配對樣本分析循環(huán)核小體的cfDNA片段大小模式和H3K27ac信號之間的相關(guān)性。隨后構(gòu)建線性回歸模型,可根據(jù)cfDNA片段大小模式推斷血漿中H3K27ac水平(H3K27ac相關(guān)信號)。分析發(fā)現(xiàn)H3K27ac相關(guān)信號與cfChIP-seq測定的H3K27ac相關(guān)信號一致。
 


圖:cfChIP-seq揭示H3K27ac水平與cfDNA片段大小之間的關(guān)系[7]


案例6:cfDNA低覆蓋度WGS揭示腫瘤患者的全基因組突變特征
此研究對215名患者和227名健康人群的血漿進(jìn)行全基因組測序(WGS),鑒定出病理性和生理性突變特征。
 

圖:多種癌癥類型的血漿基因突變特征檢測[6]


05.參考文獻(xiàn)
① Shen SY, Burgener JM, Bratman SV, De Carvalho DD. Preparation of cfMeDIP-seq libraries for methylome profiling of plasma cell-free DNA. Nat Protoc. 2019 Oct;14(10):2749-2780. pii: 10.1038/s41596-019-0202-2. doi: 10.1038/s41596-019-0202-2. PubMed PMID: 31471598.

② Schutsky EK, et al.Nondestructive, base-resolution sequencing of 5-hydroxymethylcytosine using a DNA deaminase. Nat Biotechnol. 2018 Oct 8. pii: nbt.4204. doi: 10.1038/nbt.4204. PubMed PMID: 30295673.

③ Gao Y, et al. Whole-genome bisulfite sequencing analysis of circulating tumour DNA for the detection and molecular classification of cancer. Clin Transl Med. 2022 Aug;12(8):e1014. doi: 10.1002/ctm2.1014. PubMed PMID: 35998020.

④ Hua X, et al. Tumor detection by analysis of both symmetric- and hemi-methylation of plasma cell-free DNA. Nat Commun. 2024 Jul 20;15(1):6113. pii: 10.1038/s41467-024-50471-1. doi: 10.1038/s41467-024-50471-1. PubMed PMID: 39030196.

⑤ Guler GD,et al. Detection of early stage pancreatic cancer using 5-hydroxymethylcytosine signatures in circulating cell free DNA. Nat Commun. 2020 Oct 19;11(1):5270. pii: 10.1038/s41467-020-18965-w. doi: 10.1038/s41467-020-18965-w. PubMed PMID: 33077732.

⑥ Wan JCM, et al. Genome-wide mutational signatures in low-coverage whole genome sequencing of cell-free DNA. Nat Commun. 2022 Aug 23;13(1):4953. pii: 10.1038/s41467-022-32598-1. doi: 10.1038/s41467-022-32598-1. PubMed PMID: 35999207.

⑦ Bai J, et al. Histone modifications of circulating nucleosomes are associated with changes in cell-free DNA fragmentation patterns. Proc Natl Acad Sci U S A. 2024 Oct 15;121(42):e2404058121. doi: 10.1073/pnas.2404058121. PubMed PMID: 39382996.

來源:深圳市易基因科技有限公司
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