一、Bradford法
蛋白質(zhì)與考馬斯亮蘭染料結(jié)合生成藍色物質(zhì),藍色物質(zhì)的量與蛋白質(zhì)濃度的高低成正比。生成的藍色物質(zhì)在595nm處有最大光吸收,通過測定595nm的光吸收,來測定蛋白質(zhì)濃度。實驗中一般利用牛血清白蛋白(BSA)來作標(biāo)準(zhǔn)曲線,此法的靈敏度為25~200ug/ml。甘油、吐溫(tween)80、去污劑、2-巰基乙醇、乙酸、硫酸銨、三羥甲基氨基甲烷(Tris)和一些堿性緩沖液會干擾該檢測反應(yīng),可以通過設(shè)立適當(dāng)?shù)膶φ諄硐@種干擾。
試劑準(zhǔn)備:
1.Bradford儲存液:95%乙醇,100mL;88%磷酸,200mL;考馬斯亮蘭G-250染料,350mg;室溫下可長期穩(wěn)定保存。
2.Bradford工作液:雙蒸水,425mL;95%乙醇,15mL;88%磷酸,30mL;Bradford儲存液,30mL;Whatman I號濾紙過濾,室溫保存于棕色瓶中,可用數(shù)周,但用前需重新過濾。
3.標(biāo)準(zhǔn)蛋白:1mg/mL牛血清白蛋白。
操作方法:
1.以PBS為空白對照,將標(biāo)準(zhǔn)蛋白BSA梯度稀釋為20ug/mL、17.5 ug/mL、15 ug/mL、12.5 ug/mL、10 ug/mL、7.5 ug/mL、5 ug/mL、2.5 ug/mL,待測樣品做適當(dāng)稀釋,每管100uL。每次實驗應(yīng)做一新的標(biāo)準(zhǔn)曲線;沒個樣品2~3個重復(fù)管。
2.加入1mL Bradford 工作液,振蕩混勻,室溫反應(yīng)2分鐘。由于染料和蛋白的反應(yīng)時連續(xù)的,所以染料應(yīng)依次加入到個蛋白樣品中,所有樣品也應(yīng)按照加入染料的順序測定A595值。
3.測定A595值,測量應(yīng)在1小時內(nèi)完成。
4.以標(biāo)準(zhǔn)蛋白的濃度為橫坐標(biāo),A595值為縱坐標(biāo)畫出標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線,通過待測樣品的A595值,確定其濃度。
二、Lowry法
Lowry法又稱Folin-酚法,蛋白在堿性溶液中與相應(yīng)試劑形成銅-蛋白復(fù)合物,這一復(fù)合物還原Folin-酚試劑(磷鉬酸-磷鎢酸試劑),產(chǎn)生深藍色的鉬藍和鎢藍復(fù)合物,這種深藍色復(fù)合物在745~750nm處有最大光吸收,吸光度與蛋白濃度成正比。
試劑準(zhǔn)備:
1.緩沖液A(溶液可長期保存于室溫):CuSO4·5H2O,0.5g;Na3C6H5O7·2H2O,1g;加雙蒸水至100mL。
2.緩沖液B(溶液可長期保存于室溫):Na2CO3,20g;NaOH,4g;加雙蒸水至1L。
3.緩沖液C:緩沖液A,1ml;緩沖液B,50mL。
4.緩沖液D:Folin-酚試劑,10mL;雙蒸水,10mL。
操作方法:
1.以蒸餾水為空白對照,將標(biāo)準(zhǔn)蛋白BSA梯度稀釋為500ug/mL、250 ug/mL、125 ug/mL、62.5 ug/mL、31.25 ug/mL,待測樣品做適當(dāng)稀釋,每管40uL。標(biāo)準(zhǔn)蛋白的選擇對實驗結(jié)果影響較大,一般應(yīng)該選擇和目的蛋白類似的樣品作為標(biāo)準(zhǔn)蛋白比較好,比如測定抗體濃度時,選擇同種動物IgG作為陽性對照的結(jié)果比BSA結(jié)果準(zhǔn)確。
2.加緩沖液C 200uL,混勻,室溫反應(yīng)5~10分鐘。
3.加緩沖液D 20uL,混勻,室溫反應(yīng)20~30分鐘。
4.測定A750值。做標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)待測樣品的A750值,計算待測蛋白的濃度。
三、紫外吸收法
蛋白質(zhì)分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘殘基的苯環(huán)含有共軛雙鍵,使蛋白質(zhì)具有吸收紫外線的性質(zhì),在280nm處有最大光吸收,其吸光度與蛋白質(zhì)含量成正比。各種蛋白質(zhì)的這三種氨基酸的含量差別不大,因此測定蛋白質(zhì)溶液在280nm處的吸光度值可以反映蛋白的濃度。紫外吸收法簡便、快速,但準(zhǔn)確度較差。對于含核酸的蛋白質(zhì)溶液,還應(yīng)測定其A260。
操作方法:
1.準(zhǔn)備空白對照和待測蛋白溶液。
2.調(diào)節(jié)儀器波長為280nm。
3.用空白對照調(diào)節(jié)吸光度A280為零。通常用1cm光徑的標(biāo)準(zhǔn)石英比色皿。
4.讀取待測蛋白溶液的A280。
5.調(diào)節(jié)儀器波長為260nm,用空白對照調(diào)節(jié)吸光度A260為零,讀取待測蛋白溶液的A260。
6.計算蛋白濃度:蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)=1.45×A280-0.74×A260。