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                                離子交換層析常見問題及解決方法

                                瀏覽次數(shù):2876 發(fā)布日期:2021-6-2  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

                                1、如何根據(jù)工藝需求選擇基質(zhì)合適的離子填料

                                • 在捕獲階段,為初步分離富集目的產(chǎn)物,可選擇具有高結(jié)合載量,適應(yīng)高流速的大粒徑基質(zhì),如TOSOH的EC(200μm)和C(100μm)型離子填料。

                                • 在中間純化階段,為除去大部分雜蛋白,可選擇具有高結(jié)合載量和高分辨率的中等粒徑基質(zhì),如TOSOH的M(75或65μm)和S(35μm)型離子填料。

                                • 在精細(xì)純化階段,為獲得精純的樣品,可選擇具有極高分辨的TSKgel系列柱進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

                                2、根據(jù)蛋白pI選擇離子交換填料類型

                                對于已知等電點(diǎn)蛋白:

                                如果蛋白在等電點(diǎn)之下最穩(wěn)定,緩沖液pH≤目的蛋白pI,選擇陽離子交換劑。

                                如果蛋白在等電點(diǎn)之上最穩(wěn)定,緩沖液pH≥目的蛋白pI,選擇陰離子交換劑。

                                • 緩沖液pH≥目的蛋白pI 0.5-3個(gè)單位選擇弱陰離子交換填料;

                                • 緩沖液pH≥目的蛋白pI 3個(gè)單位以上選擇強(qiáng)陰離子交換填料;

                                • 緩沖液pH≤目的蛋白pI 0.5-3個(gè)單位選擇弱陽離子交換填料; 

                                • 緩沖液pH≤目的蛋白pI 3個(gè)單位以上選擇強(qiáng)陽離子交換填料;

                                • 緩沖液中含有較高離子強(qiáng)度時(shí)選擇復(fù)合型離子交換填料,如TOSOH的Toyopearl NH2-750F和 Toyopearl Sulfate-650F填料。

                                對于未知等電點(diǎn)蛋白:

                                首先應(yīng)選擇陰離子交換劑,起始平衡液pH8.0;

                                然后填料再嘗試陽離子交換劑,起始平衡液pH6.0。

                                 

                                3、加載樣品時(shí)流穿峰里有未結(jié)合目標(biāo)蛋白

                                • 加載樣品量過多,超出柱子的動(dòng)態(tài)結(jié)合載量,可降低上樣量;

                                • 上樣流速過快,可降低上樣流速,增加孵育時(shí)間;

                                • 柱料被污染,結(jié)合能力下降,應(yīng)對層析柱進(jìn)行清洗及再生;

                                • 緩沖液選擇不合適,優(yōu)化緩沖液pH和離子強(qiáng)度。

                                 

                                4、樣品未按預(yù)期洗脫下來或產(chǎn)量較低

                                • 洗脫強(qiáng)度不夠,增大洗脫液離子強(qiáng)度;

                                • 目標(biāo)蛋白與柱料結(jié)合過于緊密,應(yīng)調(diào)整初始平衡液的pH;

                                • 目標(biāo)蛋白在洗脫過程中發(fā)生聚集,沉淀柱上,應(yīng)優(yōu)化洗脫條件,保證蛋白穩(wěn)定性;

                                • 目標(biāo)蛋白與柱料發(fā)生非特異性吸附,可適當(dāng)降低鹽離子強(qiáng)度,減少疏水相互作用;

                                • 目標(biāo)蛋白可能被蛋白酶降解,添加適量的蛋白酶抑制劑。

                                 

                                 5、樣品峰拖尾

                                • 錯(cuò)誤的初始緩沖液,調(diào)整pH和緩沖液離子強(qiáng)度;

                                • 樣品粘性過大,用初始緩沖液對樣品進(jìn)行稀釋;

                                • 層析柱裝填過于松散或柱床上端被壓縮,出現(xiàn)液面,需重新裝柱。

                                 

                                 6、目標(biāo)蛋白不能與其他雜質(zhì)峰分開

                                • 錯(cuò)誤的初始緩沖液,調(diào)整pH和緩沖液離子強(qiáng)度,并保證上樣前柱子平衡完全;

                                • 洗脫條件不佳,優(yōu)化洗脫條件,降低流速,調(diào)整pH,使用更平緩的梯度;

                                • 層析柱分離效果不好,柱效差,檢查柱效,確定是否需重新裝柱或更換預(yù)裝柱;

                                • 目標(biāo)蛋白在洗脫時(shí)被部分降解,添加適量的蛋白酶抑制劑;

                                • 樣品粘性過大,用初始緩沖液對樣品進(jìn)行稀釋,保證樣品濃度在50mg/ml之下;

                                • 分離柱頂端或底部死體積過大,使樣品混合,將頂部適配器靠近柱床表面,減少柱后管路體積。



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