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帕金森病造模方法盤點(diǎn)和技巧全解析

瀏覽次數(shù):518 發(fā)布日期:2024-7-5  來源:MedChemExpress (MCE)
"科研汪" 們一定都有各自的鼠崽子,Of Course,想當(dāng)年,小 M 做實(shí)驗(yàn)滴時(shí)候,動(dòng)物房隔壁還專門設(shè)有個(gè)冰箱——放置鼠崽子的  尸體  Body! (向科研小鼠致敬)

言歸正傳~帕金森病 (Parkinson’s disease, PD) 是繼阿爾茨海默病之后第二大最常見的退行性疾病,常發(fā)生于中老年群體。PD 是多個(gè)基因和環(huán)境因素相互作用的結(jié)果,發(fā)病機(jī)制復(fù)雜。主要包括:氧化應(yīng)激、線粒體功能障礙、α-突觸核蛋白失衡、神經(jīng)炎癥、腸道微生物紊亂 (圖 1)。

  圖 1. 帕金森病的發(fā)病機(jī)制[1]。

約 10% 的 PD 病例是由基因突變引起的,采用基因突變的動(dòng)物模型有利于了解 PD 的發(fā)病機(jī)制或進(jìn)展,并找到潛在的治療靶點(diǎn)。

不過,基因模型的病理和行為表型通常與人類狀況有差異。例如,幾乎所有這些基因模型中都未發(fā)現(xiàn)多巴胺能神經(jīng)元的顯著損失 (PD 的主要病理特征)[3]


圖 2. 帕金森病的遺傳動(dòng)物模型[2]。

遺傳模型是根據(jù)人類疾病中發(fā)現(xiàn)的基因突變進(jìn)行調(diào)整的,如 SNCA (α-synuclein), LRRK2, DJ-1, Parkin, PINK1 基因突變等。這些基因是多巴胺能神經(jīng)元功能的重要信號(hào)通路的一部分。

神經(jīng)毒素包括 6-OHDA、MPTP 和魚藤酮 (Rotenone)、百草枯 (Paraquat) 等。急性接觸神經(jīng)毒素會(huì)通過破壞線粒體功能和/或增加氧化應(yīng)激而導(dǎo)致運(yùn)動(dòng)障礙和黑質(zhì)紋狀體多巴胺能細(xì)胞快速死亡,而長(zhǎng)期服用神經(jīng)毒素會(huì)誘發(fā)進(jìn)行性模型,其中可能包括誘導(dǎo) α-突觸核蛋白聚集體生成 (圖 3)。


圖 3. 神經(jīng)毒素誘導(dǎo)模型的發(fā)病機(jī)制[3]。

 

  • MPTP:穿過血腦屏障,在神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞中被 MAO-B 代謝為 MPP+,然后代謝為活性毒性化合物。MPP隨后被多巴胺轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白吸收,通過抑制電子傳遞鏈的復(fù)合物 I 來損害線粒體呼吸,從而引起氧化應(yīng)激和程序性細(xì)胞死亡分子途徑的激活。

  • Paraquat 和 6-OHDA 容易通過多巴胺轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白穿過細(xì)胞膜,也可能通過靶向線粒體發(fā)揮毒性,隨后產(chǎn)生 ROS 和醌,導(dǎo)致黑質(zhì)紋狀體多巴胺能神經(jīng)元退化。
  • Rotenone 具有極強(qiáng)的疏水性,容易穿透細(xì)胞膜,誘導(dǎo) α‐突觸核蛋白聚集體的形成和線粒體損傷,隨后產(chǎn)生 ROS 和醌。

下面是小 M 為大家整理的 PD 神經(jīng)毒素模型的方法、特點(diǎn)和應(yīng)用,大家可以點(diǎn)贊收藏喔~

 

表 1. 神經(jīng)毒素模型的方法、特點(diǎn)和應(yīng)用[4][5][6][7][8]。 

 



目前,MPTP 模型已成為最常用的模型。其是唯一已知的能夠在人類和猴子中引起與 PD 臨床表現(xiàn)相似的多巴胺能神經(jīng)毒素。同時(shí),MPTP 使用方便,不需要任何特殊設(shè)備 (例如立體定位框架),也不需要像 6-OHDA 或魚藤酮那樣對(duì)活體動(dòng)物進(jìn)行手術(shù)。此外,MPTP 在全身給藥后會(huì)產(chǎn)生可靠且可重復(fù)的黑質(zhì)紋狀體多巴胺能通路病變,而其他毒素通常不會(huì)出現(xiàn)這種情況[2]

當(dāng)然,在進(jìn)行 MPTP 的造模時(shí),也要注意鼠的選擇,注射方式,給藥方案等,提高造模成功率!


MPTP 的毒性作用會(huì)導(dǎo)致黑質(zhì)紋狀體損傷,紋狀體多巴胺耗竭,黑質(zhì)致密部 (SNpc) 和紋狀體末端酪氨酸羥化酶 (Tyrosine hydroxylase, TH) 陽性神經(jīng)元減少 (圖 4)。
如何判斷造模成功?[9][10]
  •  黑質(zhì)紋狀體損傷: 造模成功后黑質(zhì)和紋狀體區(qū)域 TH 減少 (IHC, IF, WB 等方法都可以);

  • 大腦神經(jīng)遞質(zhì) DA, DOPAC, 5-HT, HVA 等減少 (可通過 HPLC 檢測(cè));

  • 黑質(zhì)紋狀體小膠質(zhì)細(xì)胞 (IBA1+ cells) 和星形膠質(zhì)細(xì)胞 (GFAP+ cells) 激活, 黑質(zhì)區(qū) α-syn 聚集體數(shù)量增加。

圖 4. MPTP 造模后腦內(nèi)多巴胺含量變化及 TH 陽性神經(jīng)元免疫組化染色[2]。

A-C. 多巴胺 (DA) 及其主要代謝物 DOPAC 和 HVA 的含量變化。在第一次和最后一次 MPTP 注射(18 mg/kg, i.p. 分 4 次注射,間隔 2 小時(shí))后 0.5-1.0 小時(shí)用藥物治療小鼠。藥物繼續(xù)使用 4 天。在最后一次 MPTP 給藥后 7 天殺死小鼠。收集大腦,HPLC 測(cè)定多巴胺和代謝物水平。D-F. 黑質(zhì)致密部 (SNpc) 和紋狀體 TH 陽性神經(jīng)元的免疫組化染色和定量。注射 MPTP 后第 7 天取腦染色,在注射鹽水的對(duì)照組中,SNpc 和紋狀體末端存在密集的 TH 陽性細(xì)胞體和纖維網(wǎng)絡(luò)。注射 MPTP 后,SNpc 和紋狀體中的 TH 含量急劇降低。

 

 

PD 小鼠模型的神經(jīng)損傷評(píng)價(jià)是多層面、多指標(biāo)并存的。運(yùn)動(dòng)技能、學(xué)習(xí)和記憶障礙等指標(biāo)可以共同評(píng)估動(dòng)物的運(yùn)動(dòng)能力、姿勢(shì)和協(xié)調(diào)性。

▐  Open Field Test 曠場(chǎng)試驗(yàn)

500×500×300 mm 曠場(chǎng),曠場(chǎng)底面被平均分為 16 個(gè) 4×4 個(gè)小方格。正上方架攝像頭,視野覆蓋整個(gè)曠場(chǎng)。將動(dòng)物放置在正中央格,同時(shí)進(jìn)行攝像和計(jì)時(shí),時(shí)間為 5 min。

通過計(jì)算機(jī)示蹤分析系統(tǒng)分析實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的水平活動(dòng) (中央格停留時(shí)間、穿過中央格的次數(shù)、梳毛次數(shù)) 和直立次數(shù),能夠反映動(dòng)物的焦慮情況。

圖 5. 小鼠曠場(chǎng)試驗(yàn)示意圖[11]

 

▐  Rotarod test 轉(zhuǎn)棒試驗(yàn)

將小鼠置于直徑為 3 cm 的旋轉(zhuǎn)桿上,轉(zhuǎn)速調(diào)整為 30 r/min。記錄小鼠從置于轉(zhuǎn)棒到掉落轉(zhuǎn)棒所經(jīng)歷的時(shí)間,測(cè)定時(shí)間為 1 min,每次中間休息 1 min,連續(xù) 5 次,并記錄 1 min 內(nèi)小鼠掉落次數(shù),能夠反映動(dòng)物的運(yùn)動(dòng)協(xié)調(diào)能力。
▐  Morris 水迷宮
水迷宮實(shí)驗(yàn)是評(píng)估嚙齒類動(dòng)物空間學(xué)習(xí)和記憶能力的經(jīng)典程序,由一個(gè)圓形水池、水下平臺(tái)以及一套圖像自動(dòng)采集和處理系統(tǒng)組成。
通過觀測(cè)和記錄動(dòng)物學(xué)會(huì)在水箱內(nèi)游泳并找到水下平臺(tái)的耗時(shí)、游泳軌跡和搜索策略,分析和推斷動(dòng)物的學(xué)習(xí)、記憶和空間認(rèn)知等方面的能力。


圖 6. Morris 水迷宮示意圖[12]

 

▐  Pole test 爬桿測(cè)試

將一根 1 cm 粗、50 cm 長(zhǎng)的木棒固定在實(shí)驗(yàn)臺(tái)之上,用紗布繞棒包裹以防止小鼠攀爬滑動(dòng)。將木棒豎直放置,將小鼠放置于木棒下方,計(jì)算小鼠到木棒上方并折返回到桿的底部的時(shí)間。每只小鼠完成 3 次,兩次實(shí)驗(yàn)之間的間隔在 10 min 以上,取三次的平均時(shí)間作為最后結(jié)果。

 

▐  酪氨酸羥化酶 (TH)

酪氨酸羥化酶 (Tyrosine Hydroxylase, TH) 負(fù)責(zé)催化 L-酪氨酸羥化并以四氫生物蝶呤 (BH4) 為輔酶生成左旋多巴。作為介導(dǎo)多巴胺生物合成的關(guān)鍵限速步驟,PD 動(dòng)物模型黑質(zhì)中 TH 陽性多巴胺能神經(jīng)元會(huì)顯著減少。


圖 7. 小鼠紋狀體 (Striatum) 和黑質(zhì) (SNpc) 中 TH 的免疫組化染色[13]。 

▐  α-突觸核蛋白 (α-synuclein)

帕金森病典型的病理學(xué)特征為 α-synuclein 在中腦黑質(zhì)-紋狀體區(qū)的異常聚集,造成多巴胺能神經(jīng)元死亡。

圖 8. 大鼠模型中紋狀體內(nèi)注射 α-syn-PFF 引起的突觸前和突觸后功能障礙[14]。

左圖:在皮質(zhì)區(qū),注射 α-syn-PFFs 的大鼠檢測(cè)到了一致比例的 p-α-syn+神經(jīng)元。自發(fā)突觸電流分析表明,背側(cè)紋狀體靶神經(jīng)元中自發(fā)興奮性突觸后電流的頻率增加,從而導(dǎo)致高谷氨酸能活動(dòng)狀態(tài)。

右圖:α-syn-PFF 大鼠的 SNpc 呈現(xiàn)多巴胺能神經(jīng)元數(shù)量減少,表現(xiàn)為 TH+免疫熒光減少,與自發(fā)放電活動(dòng)異常增加有關(guān)。中間圖:在背外側(cè)紋狀體中,注射 α-syn-PFFs 導(dǎo)致 SPN 中皮質(zhì)紋狀體長(zhǎng)期可塑性發(fā)生重大改變。還觀察到 TH+纖維顯著減少和 SNpc 終端內(nèi)源性多巴胺釋放減少.

 

MCE 可提供高純度,生物活性經(jīng)過驗(yàn)證的 MPTP,產(chǎn)品已經(jīng)過專業(yè)的生物驗(yàn)證,更是得到全球客戶的認(rèn)可。

實(shí)驗(yàn)方案:

20 mg/kg 或 23.4 mg/kg,腹腔注射,每隔 2 h 注射一次,一天內(nèi)打 4 次。12 周雄性 C57BL/6N 小鼠。給藥完 7 天后取材 (有文獻(xiàn)表明急性給藥后第7天黑質(zhì)紋狀體損傷達(dá)到穩(wěn)定)[5]

  • 紋狀體 TH 平均清除率:60% (20 mg/kg),79% (23.4 mg/kg);

  • 黑質(zhì)致密部 (SNpc) TH 平均清除率:43% (20 mg/kg),47% (23.4 mg/kg)

     

 

圖 9. MCE MPTP 誘導(dǎo)小鼠帕金森病急性模型 TH 免疫組化染色。

A. 紋狀體,B. 黑質(zhì)


萌家小貼士:

1. 模小鼠不一定會(huì)出現(xiàn)帕金森病行為缺陷,小鼠個(gè)體差異性也較大,造模成功率一般難達(dá) 100%,因此在 MPTP 小鼠研究中要監(jiān)測(cè)的主要表型是與神經(jīng)膠質(zhì)增生相關(guān)的黑質(zhì)紋狀體損傷,其程度取決于劑量和給藥方案[1][4][5]。

2. 造模后可能會(huì)死亡:一個(gè)常見問題是動(dòng)物在開始給藥后的前 24 小時(shí)內(nèi)急性死亡,雌性小鼠的死亡率較高。值得注意的是,急性死亡與大腦多巴胺能系統(tǒng)的損傷無關(guān),有可能是由于外周心血管副作用。藥物劑量高/小鼠體重小于 22 g/不同批次藥物混用/小鼠沒有提前適應(yīng)/動(dòng)物房太冷均有可能會(huì)導(dǎo)致小鼠死亡,每組動(dòng)物數(shù)目建議增大。

3. 注射后,肉眼可以注意觀察小鼠是否有活動(dòng)性減弱、走路踉蹌,抽搐、炸毛,排尿變多等表現(xiàn),這種行為可能可以持續(xù) 24-48 h,此后小鼠表現(xiàn)基本正常。



今天給大家盤點(diǎn)了帕金森的不同模型的發(fā)生機(jī)制、不同的造模方式以及行為學(xué)/病理學(xué)評(píng)價(jià)等,主要給大家介紹了如何用 MPTP 造模,大家可以根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)需求選擇合適的造模方式。如需幫助,可聯(lián)系萌家線下銷售經(jīng)理或者技術(shù)獲取技術(shù)支持,助您的實(shí)驗(yàn)一臂之力~



MPTP hydrochloride

透過血腦屏障的多巴胺神經(jīng)毒素,可用于誘導(dǎo)帕金森綜合癥模型 
6-OHDA
一種廣泛應(yīng)用的神經(jīng)毒素,可選擇性破壞多巴胺能神經(jīng)元 
Rotenone
線粒體電子傳遞鏈復(fù)合物 I 抑制劑 
Tyrosine Hydroxylase Antibody
酪氨酸羥化酶抗體
alpha Synuclein Antibody (YA2073)
α-突觸核蛋白抗體
 



[1] Jankovic J, et al. Parkinson's disease: etiopathogenesis and treatment. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2020 Aug;91(8):795-808.

[2] Jackson-Lewis V, et al. Protocol for the MPTP mouse model of Parkinson's disease. Nat Protoc. 2007;2(1):141-51.

[3] Javier Blesa, et al. Animal Models of Parkinson’s Disease. Challenges in Parkinson's Disease. 2016.

[4] Konnova EA, et al. Animal Models of Parkinson’s Disease. In: Stoker TB, Greenland JC, editors. Parkinson’s Disease: Pathogenesis and Clinical Aspects [Internet]. Brisbane (AU): Codon Publications; 2018 Dec 21. Chapter 5.

[5] Rabaneda-Lombarte N, et al. The CD200R1 microglial inhibitory receptor as a therapeutic target in the MPTP model of Parkinson's disease. J Neuroinflammation. 2021 Apr 6;18(1):88.

[6] Lee, et al. MPTP-driven NLRP3 inflammasome activation in microglia plays a central role in dopaminergic neurodegeneration. Cell Death Differ. 2019 Jan;26(2):213-22.

[7] Chen HX, et al. Exosomes derived from mesenchymal stem cells repair a Parkinson's disease model by inducing autophagy. Cell Death Dis. 2020 Apr 27;11(4):288.

[8] Ma XZ, et al. Gut microbiota-induced CXCL1 elevation triggers early neuroinflammation in the substantia nigra of Parkinsonian mice. Acta Pharmacol Sin. 2024 Jan;45(1):52-65.

[9] Rabaneda-Lombarte N, et al. The CD200R1 microglial inhibitory receptor as a therapeutic target in the MPTP model of Parkinson's disease. J Neuroinflammation. 2021 Apr 6;18(1):88.

[10] Sun MF, et al. Neuroprotective effects of fecal microbiota transplantation on MPTP-induced Parkinson's disease mice: Gut microbiota, glial reaction and TLR4/TNF-α signaling pathway. Brain Behav Immun. 2018 May;70:48-60. 

[11] Kuniishi H, et al. Early deprivation increases high-leaning behavior, a novelanxiety-like behavior, in the open field test in rats. Neurosci Res. 2017 Oct;123:27-35.

[12] Pritchett D, et al. Searching for cognitive enhancement in the Morris water maze: better and worse performance in D-amino acid oxidase knockout (Dao(-/-)) mice. Eur J Neurosci. 2016 Apr;43(7):979-89.

[13] Lu Y, et al. Metabolic Disturbances in the Striatum and Substantia Nigra in the Onset and Progression of MPTP-Induced Parkinsonism Model. Front Neurosci. 2018 Feb 20;12:90.

[14] Calabresi P, et al. Alpha-synuclein in Parkinson's disease and other synucleinopathies: from overt neurodegeneration back to early synaptic dysfunction. Cell Death Dis. 2023 Mar 1;14(3):176. 

來源:上海皓元生物醫(yī)藥科技有限公司
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