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Pippin全自動(dòng)DNA片段回收儀在RAD-seq和MeD-seq文庫(kù)制備中的應(yīng)用

瀏覽次數(shù):601 發(fā)布日期:2023-9-13  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
前兩期我們介紹了Sage系列產(chǎn)品在Small RNA、ChiP-seq、cffDNA和ctDNA測(cè)序中的應(yīng)用,本期我們將介紹Sage系列產(chǎn)品在RAD seq和甲基化測(cè)序中的應(yīng)用。

RAD-seq 相關(guān)應(yīng)用

RAD-seq技術(shù),是廣泛用于遺傳多樣性測(cè)序技術(shù)的一種。利用限制性內(nèi)切酶消化以降低基因組的復(fù)雜度,對(duì)特定酶切片段進(jìn)行NGS高通量測(cè)序,實(shí)現(xiàn)基因分型的技術(shù)。

RAD-seq不僅實(shí)驗(yàn)操作簡(jiǎn)單,性價(jià)比高,更為重要的是他并不依賴參考基因組的信息,一次測(cè)序即可獲得數(shù)以萬(wàn)計(jì)的多態(tài)性遺傳標(biāo)記,已廣泛應(yīng)用于生態(tài)學(xué)、遺傳學(xué)、基因組學(xué)等研究領(lǐng)域。

在ddRAD-seq實(shí)驗(yàn)流程中,Pippin 系列全自動(dòng)DNA片段回收儀,可以降低片段選擇過(guò)程對(duì)相同位點(diǎn)在文庫(kù)間代表性的影響,另外通過(guò)實(shí)驗(yàn)初期的監(jiān)測(cè),可以評(píng)估樣品的酶切片段均勻度,排除轉(zhuǎn)座子等高頻出現(xiàn)的片段。

圖1 某研究中研究人員開(kāi)發(fā)的兩次回收構(gòu)建RAD seq文庫(kù)的方法

相關(guān)文獻(xiàn):
1 Jiang, Ning, et al. "A highly robust and optimized sequence-based approach for genetic polymorphism discovery and genotyping in large plant populations." Theoretical and Applied Genetics 129.9 (2016): 1739-1757.
2 Auteri, Giorgia G., and L. Lacey Knowles. "Decimated little brown bats show potential for adaptive change." Scientific Reports 10.1 (2020): 3023.
3 Rubi, Tricia L., L. Lacey Knowles, and Ben Dantzer. "Museum epigenomics: Characterizing cytosine methylation in historic museum specimens." Molecular ecology resources 20.5 (2020): 1161-1170.
4 Kim, Han-Na, et al. "The Origin and Invasion Pathway of Brown Rats Rattus norvegicus on Dok-Do Island Revealed by Genome-Wide Markers from 3-RADseq Approach." Animals 13.7 (2023): 1243.
5 Gargiulo, Roberta, Tiiu Kull, and Michael F. Fay. "Effective double‐digest RAD sequencing and genotyping despite large genome size." Molecular Ecology Resources 21.4 (2021): 1037-1055.
6 Goodall, Jake, et al. "RAD sequencing of common whelk, Buccinum undatum, reveals fine‐scale population structuring in Europe and cryptic speciation within the North Atlantic." Ecology and Evolution 11.6 (2021): 2616-2629.
 
甲基化測(cè)序(MeD-seq)應(yīng)用

甲基化測(cè)序是一類專門(mén)分析DNA分子中胞嘧啶(C)甲基化水平的測(cè)序分析技術(shù)。其主要原理是通過(guò)將DNA中非甲基化的胞嘧啶轉(zhuǎn)化為尿嘧啶(U),繼而進(jìn)行測(cè)序的技術(shù)手段。由于正常情況下胞嘧啶的配對(duì)堿基是鳥(niǎo)嘌呤(G),而尿嘧啶的配對(duì)堿基是腺嘌呤(A)。這樣就可以在生成配對(duì)序列時(shí)產(chǎn)生不同的序列,進(jìn)一步通過(guò)測(cè)序分析和參考鏈比較,以了解哪些部位發(fā)生了甲基化。

目前,減少代表性亞硫酸氫鹽測(cè)序(Reduced Representation Bisulfite Sequencing ,RRBS)覆蓋了大部分的基因啟動(dòng)子和CpG島,但是對(duì)CpG周圍和其他有生物學(xué)意義的基因間區(qū)域的覆蓋卻不足。因此有越來(lái)越多的研究人員開(kāi)發(fā)了增強(qiáng)減少代表性亞硫酸氫鹽測(cè)序技術(shù)(Enhanced Reduced Representation Bisulfite Sequencing ,ERRBS)。ERRBS技術(shù)可以在在產(chǎn)生的數(shù)據(jù)中有覆蓋更多的CpG,并增加了所有待測(cè)基因組區(qū)域的覆蓋率,因此改善了RRBS在甲基化測(cè)序中的缺陷。其中在Garrett-Bakelman等人設(shè)計(jì)的ERRBS方法,通過(guò)利用Pippin Prep回收135-410bp的DNA片段,可以高效回收25ng以上的DNA并用于構(gòu)建DNA文庫(kù),經(jīng)過(guò)驗(yàn)證是一種可行的甲基化測(cè)序技術(shù)。

圖2 Garrett-Bakelman的方法文獻(xiàn)中針對(duì)甲基化的文庫(kù)構(gòu)建參數(shù)

相關(guān)文獻(xiàn):
1 Garrett-Bakelman, Francine E., et al. "Enhanced reduced representation bisulfite sequencing for assessment of DNA methylation at base pair resolution." JoVE (Journal of Visualized Experiments) 96 (2015): e52246.
2 Smit, Kyra N., et al. "Genome-wide aberrant methylation in primary metastatic UM and their matched metastases." Scientific Reports 12.1 (2022): 42.
3 Shankar, Anusha S., et al. "Kidney organoids are capable of forming tumors, but not teratomas." Stem Cells 40.6 (2022): 577-591.
4 Siamoglou, Stavroula, et al. "Genome-wide analysis toward the epigenetic aetiology of myelodysplastic syndrome disease progression and pharmacoepigenomic basis of hypomethylating agents drug treatment response." Human Genomics 17.1 (2023): 1-12.
5 Siamoglou, Stavroula, et al. "Genome-wide analysis toward the epigenetic aetiology of myelodysplastic syndrome disease progression and pharmacoepigenomic basis of hypomethylating agents drug treatment response." Human Genomics 17.1 (2023): 1-12.
6 Wang, Maojun, et al. "Multi-omics maps of cotton fibre reveal epigenetic basis for staged single-cell differentiation." Nucleic Acids Research 44.9 (2016): 4067-4079.
7 Wilbanks, Elizabeth G., et al. "Metagenomic methylation patterns resolve complex microbial genomes." bioRxiv (2021): 2021-01.


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