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DNA低甲基化介導(dǎo)子宮肌層干細胞發(fā)育重編程的表觀遺傳機制介紹

瀏覽次數(shù):368 發(fā)布日期:2023-9-7  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負
子宮肌瘤(uterine fibroids,UF)是生殖系統(tǒng)最常見的良性腫瘤,也是子宮切除手術(shù)最常見的指征。盡管患病率很高,但子宮肌瘤的確切發(fā)病機制在很大程度上仍未知。有證據(jù)表明,發(fā)育期間暴露于激素可能與子宮肌層易感UF發(fā)育有關(guān),當(dāng)發(fā)育暴露于內(nèi)分泌干擾化學(xué)物質(zhì)(endocrine-disrupting chemical,EDC)如己烯雌酚(diethylstilbestrol,DES)、鄰苯二甲酸鹽(Phthalates)和大豆植物雌激素染料染料木素(genistein),會增加動物模型中UF的發(fā)生率、多樣性和總體大小。通過充分了解環(huán)境EDC影響人類表觀基因組的機制,可以更容易地提供明確的臨床指導(dǎo),以解決普通人群中常見的低水平暴露對健康的潛在影響。盡管子宮肌層干細胞(myometrial stem cells,MMSC)已被鑒定為UF的來源細胞,但由于發(fā)育暴露于EDC而導(dǎo)致MMSC編程的表觀遺傳機制尚未表征。
 
2023年8月31日,芝加哥大學(xué)婦產(chǎn)科Qiwei Yang為第一作者和通訊作者、Ayman Al-Hendy為共同通訊作者在《Cell Mol Life Sci》雜志發(fā)表題為“Developmental reprogramming of myometrial stem cells by endocrine disruptor linking to risk of uterine fibroids”的研究論文, 研究通過RNA-seq、ChIP-seq、RRBS、功能獲得/喪失分析和熒光素酶活性實驗,在體外和Eker大鼠模型中研究了子宮肌層干細胞(UFs的假定來源)的發(fā)育重編程,揭示了混合譜系白血病蛋白-1(mixed lineage leukemia protein-1,MLL1) / DNA低甲基化介導(dǎo)MMSC發(fā)育重編程的表觀遺傳機制。

 
標(biāo)題:Developmental reprogramming of myometrial stem cells by endocrine disruptor linking to risk of uterine fibroids(內(nèi)分泌干擾素對子宮肌層干細胞的發(fā)育重編程與子宮肌瘤風(fēng)險相關(guān))
時間:2023-08-31
期刊:Cellular and Molecular Life Sciences(細胞與分子生命科學(xué))
影響因子:IF 8 / 1區(qū)
技術(shù)平臺:ChIP-seq、RNA-seq、RRBS、Target-BS、功能獲得/喪失分析和熒光素酶活性實驗等

研究摘要:
組織和器官生長期間很容易受環(huán)境影響,但尚不清楚在此期間暴露是如何導(dǎo)致表觀基因組變化和增加子宮肌瘤(UF)等激素相關(guān)疾病風(fēng)險。
研究通過RNA-seq、ChIP-seq、RRBS、功能獲得/喪失分析和熒光素酶活性實驗,在體外和Eker大鼠模型中研究了子宮肌層干細胞(MMSC)的發(fā)育重編程。
研究結(jié)果表明,在Eker大鼠發(fā)育過程中,當(dāng)暴露于內(nèi)分泌干擾化學(xué)物質(zhì)(endocrine-disrupting chemical,EDC)己烯雌酚時,MMSC的雌激素應(yīng)答轉(zhuǎn)錄組發(fā)生重編程。MMSC中的重編程基因被稱為雌激素應(yīng)答基因(estrogen-responsive genes,ERGs),由混合譜系白血病蛋白-1(MLL1)和DNA低甲基化機制激活。暴露于天然類固醇的Eker大鼠在發(fā)育性暴露于EDC后,MMSC中ERG表達顯著上調(diào),從而增強雌激素活性。
本研究揭示了MLL1/DNA低甲基化介導(dǎo)MMSC重編程的表觀遺傳學(xué)機制。EDC暴露表觀靶向MMSC,并導(dǎo)致ERG亞群表達的持續(xù)變化,在ERG上產(chǎn)生激素印記,導(dǎo)致“超雌激素”表型,并增加UFs的激素依賴性風(fēng)險。

 
圖1:實驗圖
 
Eker大鼠幼崽在出生后10-12天暴露于VEH(每天皮下注射50μl芝麻籽油,vehicle,n=5)和EDC(每天皮下注射10μg己烯雌酚,n=5)。幼崽在5月齡時被處死,代表早期成年期。從大鼠中分離出子宮肌層組織,并使用Stro-1/CD44表面標(biāo)記進行MMSC分離。利用多組學(xué)分析,包括RNA-seq、ChIP-seq和RRBS,分別鑒定轉(zhuǎn)錄組、組蛋白修飾和DNA甲基化的整體變化。同時還進行目標(biāo)基因的亞硫酸鹽NGS測序(Target-BS),以檢測基因CpG島的DNA甲基化。

研究結(jié)果
(1)Eker大鼠EDC暴露與VEH暴露MMSC中差異轉(zhuǎn)錄模式的鑒定

圖2:發(fā)育性EDC誘導(dǎo)大鼠MMSC基因重編程
  1. EDC己烯雌酚組和VEH組的各5只動物混樣,采用FACS策略進行MMSC分離。餅圖顯示通過RNA-seq檢測的EDC -MMSC和VEH-MMSC之間的RNA表達變化基因百分比;FDR<0.05時臨界值為兩倍。
  2. EDC-MMSC與VEH-MMSC中排名前20位的up-DEG列表。
  3. EDC-MMSC與VEH-MMSC中排名前20位的down-DEG列表。
  4. 過表達分析表明,包括雌激素反應(yīng)通路(紅色)在內(nèi)的多種UF相關(guān)通路受早期EDC暴露影響。
  5. 通過Ingenuity Pathway Analysis(IPA)分析發(fā)育性EDC己烯雌酚暴露對相關(guān)疾病的影響,用紅色突出顯示

(2)發(fā)育性EDC暴露重編程MMSC中的雌激素應(yīng)答基因
圖3:轉(zhuǎn)錄譜分析顯示雌激素應(yīng)答基因的重編程
  1. RNA-seq分析,與VEH-MMSCs相比,EDC-MMSC中RNA表達變化的ERG百分比餅圖。
  2. 在EDC-MMSC與VEH-MMSC中RNA-seq分析顯示差異表達的前20個up-ERG列表。
  3. 在EDC-MMSC與VEH-MMSC中RNA-seq分析顯示差異表達的前20個down-ERG列表。
  4. 與VEH-MMSC相比,EDC-MMSC中的ER-a表達上調(diào)。從EDC-MMSC和VEH-MMSC制備裂解液,并使用ER-a抗體進行Western blot分析。
  5. 比較EDC-MMSC和VEH-MMSC在有或無雌激素(10nM)時的螢光素酶活性。
  6. DES(己烯雌酚,diethylstilbestrol)-MMSC和VEH-MMSC中有或無雌激素時ERG表達變化。學(xué)生t檢驗,*p < 0.05,**p < 0.01,***p < 0.001
 
(3)EDC暴露激活MLL1表觀遺傳通路并通過H3K4me3破壞MMSC的表觀基因組

圖4:EDC發(fā)育性暴露激活MLL1
  1. 用抗MLL1、H3K4me3和Cd9抗體進行Western blotting以分析MLL1C(MLL1活化形式)、H3K4me3和Cd9水平?侶3和β-肌動蛋白用作負載對照。生物學(xué)重復(fù)(n=3)進行定量。
  2. EDC-MMSC與VEH-MMSC中H3K4me3染色和定量分析的共聚焦成像圖(Confocal imaging)。使用三個單獨的細胞蓋片進行定量。學(xué)生t檢驗,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001
圖5:EDC暴露破壞MMSC的表觀基因組
  1. ERG peaks數(shù)量餅圖。
  2. EDC暴露將H3K4me3與ERG RNA表達整合。
  3. EDC調(diào)控H3K4me3 peaks的ERG。
  4. Integrative Genomics Viewer直方圖顯示Esr-1、Cxcl12、Cd9、Mpped2和Tgm2中的H3K4me3占比(左側(cè)panel)。對于每個基因,上方和下方的瀏覽器圖像顯示VEH-MMSC(藍色軌跡)和EDC-MMSC(紅色軌跡)中H3K4me3 peaks分布的選定區(qū)域的擴展視圖。中間panel:通過ChIP-qPCR對H3K4me3靶基因進行定向ChIP測序驗證。右側(cè)panel;通過q-PCR進行RNA測序驗證。學(xué)生t檢驗,*p<0.05,**p<0.01,***p < 0.001
 
圖6:Tasp1敲除逆轉(zhuǎn)了EDC暴露誘導(dǎo)的重編程ERG
  1. 在EDC-MMSC中使用shRNA慢病毒(pLKD-TASP1)質(zhì)粒敲低TASP1表達后,進行Western blot分析以確定TASP1在MLL1介導(dǎo)的表觀遺傳學(xué)通路中的作用。分別使用抗TASP1、H3K4me3和CD9抗體進行Western blot分析TASP1、H3K4me3、和CD9蛋白的表達水平(左圖)。生物學(xué)重復(fù)(n=3)用于定量。使用Image J(右圖)進行定量分析。
  2. EDC暴露誘導(dǎo)的6個重編程ERG(Esr-1、Pgr、Cxcl12、Ar、Cd9和Tgm2)表達上調(diào)被EDC-MMSC中Tasp1敲除所逆轉(zhuǎn)。通過qPCR檢測EDC-MMSC炒慢病毒(scrambled lentivirus)感染或三種不同個體Tasp1敲低慢病毒的ERG RNA表達。*p<0.05,**p<0.01,***p < 0.001;學(xué)生t檢驗

(4)EDC暴露重編程甲基化并導(dǎo)致ERG表達變化。

圖7:發(fā)育性EDC暴露誘導(dǎo)甲基化組變化并通過DNA啟動子甲基化導(dǎo)致ERG重編程
  1. Western blot分析檢測VEH-MMSC和EDC-MMSC中DNMT3A的蛋白水平。
  2. VEH-MMSC和EDC-MMSC中DNA甲基化基因熱圖。
  3. 通過靶向亞硫酸鹽NGS檢測Esr1的甲基化分布,覆蓋其CpG島上的14個CpG位點。
  4. 具有H3K4me3和DNA甲基化狀態(tài)的EDC調(diào)控基因百分比。
  5. 具有H3K4me3和DNA甲基化狀態(tài)的基因數(shù)量。
  6. 綜合基因組查看器(IGV)圖和整合多組學(xué)分析。EDC-MMSC中H3K4me3富集、DNA甲基化和RNA表達peaks用紅色表示,而VEH-MMSC中的H3K4me3富集、DNA甲基化和RNA表達peaks用藍色表示。學(xué)生t檢驗,***p<0.001
圖8:DES-MMSC中ERG的特異性重編程影響差異子宮肌層細胞(differential myometrial cells,DMC)
  1. DES-MMSC和DES-DMC之間的ERG(包括Bcl11b、Cd9、Cxcl12和Tgm2)差異表達條形圖。
  2. H3K4me3狀態(tài)與MMSC和DMC之間重編程ERG的比較表達相關(guān)性,以VEH-MMSC為參考。p值顯示Stro-1/CD44雙陽性和雙陰性細胞之間基因表達的顯著差異。淺藍色背景的基因表明基因表達的兩個比較(Stro-1/CD44雙陽性細胞 vs 雙陰性細胞,或Stro-1+/CD44+-DES vs VEH)呈負相關(guān)。白色背景基因表明兩個比較呈正相關(guān)。
  3. 實驗設(shè)計示意圖。從EDC-MMSC和VEH-MMSC中制備無血清條件培養(yǎng)基(CM)。來自成年大鼠子宮肌層的DMC,分別在EDC-MMSC和VEH-MMSC的CM中培養(yǎng)2天。
  4. MTT檢測EDC-MMSC和VEH-MMSC的CM對DMC增殖的作用。
  5. qPCR檢測EDC-MMSC和VEH-MMSC的CM對DMC中β-catenin和β-catenin調(diào)控基因(Angpt2、Med12l和Pitx2)表達的影響。*p<0.05,**p<0.01,***p < 0.0001

研究結(jié)論
本研究通過RNA-seq、ChIP-seq、RRBS、功能獲得/喪失分析和熒光素酶活性實驗等多組學(xué)分析,表明了外源性雌激素(EDC)直接靶向并影響MMSC的表觀遺傳學(xué),而MMSC是UF的細胞來源。通過表觀基因組分析揭示了調(diào)控MMSC轉(zhuǎn)錄譜機制的新見解。早期暴露于EDC(如DES)會導(dǎo)致MMSC中組蛋白和DNA甲基轉(zhuǎn)移酶介導(dǎo)的多種基因表達模式發(fā)生顯著變化,包括各種雌激素應(yīng)答基因(ERG)。這些基因表達的變化改變了MMSC表征,導(dǎo)致“超雌激素(hyper-estrogenic)”表型,其特征是DNA修復(fù)能力降低和激素依賴性子宮疾。ㄈ鏤Fs)的風(fēng)險增加。

 
圖9:MMSC表觀基因組發(fā)育重編程模型
 
環(huán)境風(fēng)險因素(包括EDC暴露)通過組蛋白修飾和DNA甲基化破壞表觀基因組,從而導(dǎo)致MMSC向UF起始細胞轉(zhuǎn)化,并最終導(dǎo)致UF形成

參考文獻:
Yang Q, Ali M, Treviño LS, Mas A, Al-Hendy A. Developmental reprogramming of myometrial stem cells by endocrine disruptor linking to risk of uterine fibroids. Cell Mol Life Sci. 2023 Aug 31;80(9):274.
來源:深圳市易基因科技有限公司
聯(lián)系電話:0755-28317900
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標(biāo)簽: DNA甲基化
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