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文獻解讀:細胞外囊泡——下一代藥物遞送平臺

瀏覽次數(shù):2261 發(fā)布日期:2022-8-4  來源:https://www.nanofcm.cn/

細胞外囊泡為基礎(chǔ)的細胞間通訊在所有生命中都是保守的。有證據(jù)表明細胞外囊泡參與主要的生理病理過程,包括細胞穩(wěn)態(tài)、感染傳播、癌癥發(fā)展和心血管疾病等。越來越多的研究發(fā)現(xiàn),細胞外囊泡相比于傳統(tǒng)人工合成的載體有諸多優(yōu)勢,為現(xiàn)代藥物遞送開辟了新的領(lǐng)域。盡管研究持續(xù)進行,但是細胞外囊泡相關(guān)療法的臨床轉(zhuǎn)化仍然面臨諸多挑戰(zhàn)。
 


近日,來自蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院的Inge Herrmann和德國薩爾大學(xué)的Gregor Fuhrmann,以及來自英國牛津大學(xué)的Matthew Wood(同時也是EVOX¹創(chuàng)始人),在Nature Nanotechnology雜志(影響因子39.213)上發(fā)表了一篇綜述文章,討論了細胞外囊泡的特殊性,以及充分發(fā)揮它們藥物載體的潛能所需的嚴格的設(shè)計和必要的研發(fā)環(huán)節(jié),包括載藥方法,深入表征和大規(guī)模生產(chǎn)。文章同時展望了細胞外囊泡的和其它成熟的脂質(zhì)體方法,為指導(dǎo)囊泡藥物載體的發(fā)展提供方向。
 

圖1. EVs的作用方式和功能

 
文章將細胞外囊泡的前景與成熟的脂質(zhì)體的前景進行了比較,希望能夠?qū)﹂_發(fā)基于囊泡的藥物遞送系統(tǒng)提供指導(dǎo)。本文將對文章中 EVs 生產(chǎn)過程和質(zhì)量控制中遇到的問題進行闡述,同時穿插討論Codiak BioSciences、中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院等用戶在 EVs 相關(guān)藥物的研發(fā)、生產(chǎn)等過程中使用 NanoFCM 去解決問題的思路和方法。NanoFCM 可以對EVs的產(chǎn)量、濃度、大小、載藥量、載藥效率等參數(shù)進行綜合表征,從而有望優(yōu)化 EVs 生產(chǎn)條件,提高生產(chǎn)效率并加速 EVs藥物研發(fā)的進程。
 

一、EVs載藥平臺分類和表征標準
1.基于EVS的載藥平臺
根據(jù)EVs的成分來源,可將EVs遞送平臺分成3種類型:(如圖2)
(1)Natural EVs:包括細胞或基因工程細胞直接提取的EVs
(2)Hybrid EVs:后天修飾了藥物或配體的EVs;
(3)EV-inspiredliposomes:類EVs樣的脂質(zhì)體;

 

圖2. EVs的種類
 

目前脂質(zhì)體遞送在體內(nèi)和體外的有效性和生物相容性已經(jīng)得到了廣泛的評價,但對于更加復(fù)雜的 EVs,仍然缺乏有效的評價方法。對來自不同細胞系的 EVs 及其生物分布模式的比較評價表明,雖然 EVs 主要在肝臟、肺、脾臟和胃腸道中積累,但囊泡的來源和給藥途徑會顯著影響其生物分布。例如,樹突狀細胞來源的 EVs 優(yōu)先被脾臟吸收,而黑素瘤細胞來源的 EVs 在肝臟中積聚明顯。相較于脂質(zhì)體,EVs 具備靶向特定細胞的功能,并且具有更大的載藥能力。目前已經(jīng)有多項間充質(zhì)干細胞(MSCs)來源的 EVs 應(yīng)用進入臨床試驗(如表1),利用 EVs 載藥,未來可期。
 
表1.進行中的EVs臨床試驗

2.對EVS的表征是其安全性和有效性的先決條件
干細胞來源的 EVs 可以誘導(dǎo)免疫細胞從激活的炎癥狀態(tài)轉(zhuǎn)變到耐受的狀態(tài)。目前有很多提高 EVs 產(chǎn)量的策略,如:用 N-甲基多巴胺和去甲腎上腺素可以顯著提高 MCS 來源的 EVs 產(chǎn)量,而不影響其對免疫細胞的調(diào)節(jié)能力。但其他的物理刺激方法,例如pH、低氧等,則需要進一步評估其對EVs生理特性的影響。例如:美國食品藥品監(jiān)督管理局指出,2019 年在內(nèi)布拉斯卡州的患者身上使用未獲批準的含有 EVs 的產(chǎn)品進行治療時,出現(xiàn)了敗血癥等不良反應(yīng),所以即便 EVs 安全性較高,但仍需要經(jīng)過嚴格的質(zhì)量控制以及嚴謹?shù)呐R床監(jiān)督并進行大量測試。
 
表2. ISEV關(guān)于EVs分離和表征的標準化

二、EVs擴增和生產(chǎn)
雖然 EVs 的生產(chǎn)可以從其他領(lǐng)域的成果中獲益,包括蛋白質(zhì)制造方面的豐富經(jīng)驗和細胞治療方面不斷深化的專業(yè)知識,但以下關(guān)鍵步驟(如圖3)是 EVs 生產(chǎn)所特有的,因此值得特別關(guān)注。

圖3. EVs生產(chǎn)過程中的工藝環(huán)節(jié)和關(guān)鍵步驟
 

1.EVS來源的細胞培養(yǎng)和表征
EVs 生產(chǎn)可以從傳統(tǒng)生物制劑(即抗體和蛋白質(zhì)生產(chǎn))和細胞治療的發(fā)展中獲益。親本細胞的選擇和培養(yǎng)條件是上游工藝的關(guān)鍵步驟。目前,對于 EVs 生產(chǎn)的較佳技術(shù)還沒有達成共識,仍需要根據(jù) EVs 的活性、組織歸巢特性、潛在的免疫原性以及致瘤性來選擇親本細胞。此外,遺傳穩(wěn)定性、宿主細胞雜質(zhì)(如病原體,特別是病毒)和 EV 產(chǎn)量也是在親本細胞的選擇過程中需要考量的因素。一旦選好親本細胞,就可以通過培養(yǎng),產(chǎn)生大量具有合適表型的EVs。
關(guān)于親本細胞的培養(yǎng),建議使用的方法包括多層培養(yǎng)瓶,生物反應(yīng)器和中空纖維筒等。對于小規(guī)模的人工生產(chǎn),可以在搖瓶、轉(zhuǎn)瓶、滾動瓶,細胞培養(yǎng)袋或生物反應(yīng)器中進行細胞擴增。對于大規(guī)模的細胞培養(yǎng),細胞可以生長在不銹鋼生物反應(yīng)器(高可達20,000L 規(guī)模)、搖桿平臺細胞培養(yǎng)袋(高可達 500 L 規(guī)模),甚至生物反應(yīng)器(高達 2,000 L規(guī)模)。從過程安全的角度來考慮,封閉系統(tǒng)是優(yōu)先選擇;然而,這些系統(tǒng)比開放系統(tǒng)更難監(jiān)控。培養(yǎng)過程中需要密切監(jiān)測遺傳漂變和污染,遵循用于生產(chǎn)生物制品和細胞治療的方案。同時,越來越多的證據(jù)表明,牛奶可能是一個高效、大量獲取 EVs 的來源,雖然使用牛奶 EVs 作為藥物載體的可行性研究正在進行,但從復(fù)雜牛奶中大規(guī)模分離純囊泡的方法仍然需要優(yōu)化。


2. EVS藥物裝載方式
目前裝載藥物在 EVs 內(nèi)部方法主要有如下兩種:(本文因篇幅所限,沒辦法對EVs藥物裝載方式展開詳細說明,后續(xù)官方微信公眾號會有專題報道,敬請期待!)
(1)內(nèi)源表達:通過細胞內(nèi)源表達,使蛋白或RNA等藥物被分選進入 EVs。這種方式可以降低載藥的難度,簡單有效地實現(xiàn)藥物裝載。例如:Codiak 公司利用 NanoFCM 篩選出表達比例超過 95% 的PTGFRN 和 BASP1 這兩個支架蛋白(如圖4),這兩個蛋白幾乎在所有外泌體中都有表達,實現(xiàn)了藥物的高效遞送。目前用 PTGFRN裝載的 exoIL-12 是進入臨床試驗的工程化外泌體候選藥物(2020年9月該藥物進入I期臨床試驗,在文章投稿之后,所以沒有統(tǒng)計在列表中)。而BASP1表達在外泌體內(nèi)部,可以實現(xiàn)小分子藥物的遞送。另外,重要的是可以利用細胞自身的表達系統(tǒng),源源不斷地表達 IL-12,并且裝載到外泌體中,利用 PTGFRN 抗體親和純化復(fù)雜成分的細胞上清外泌體,避免超速離心等純化方法對外泌體的損傷,極大提高外泌體的生產(chǎn)效率、純度和穩(wěn)定性。

 

圖4. Codiak公司外泌體候選藥物ExoIL-12

(2)外部裝載:在 EVs 純化后,通過機械或化學(xué)技術(shù)暫時打開 EVs 的膜,使化合物擴散到囊泡中。最常見的方法包括超聲、電穿孔、皂素處理和孵育等。這種載藥方法比內(nèi)源表達的方法復(fù)雜,且有載藥效率不可控,需要去除未裝載的藥物等缺點。其中孵育是一種非常簡單的方法,許多早期的載藥方案都采用這種方法,皂苷是溫和的表面活性劑,可引起膜的瞬時不穩(wěn)定,從而使藥物進入 EVs 中,但是后續(xù)需要去除多余的皂苷。脂質(zhì)體融合也是一種載藥的理想方法。(如圖5)含有融合性脂質(zhì)的脂質(zhì)體與 EVs 孵育,使二者發(fā)生融合,可以同時發(fā)揮兩種載藥平臺的優(yōu)勢,起到1+1>2 的效果。例如:2020 Advanced Science上發(fā)表的文章,在外泌體上表達 CD47 分子,使其具有免疫逃逸的功能。同時利用熱敏脂質(zhì)體裝載抗癌藥物,將兩者進行融合,用 NanoFCM 測定融合效率高達 95.7%。這種復(fù)合納米顆粒既能避免被機體免疫清除,同時又裝載了治療藥物,極大地提高了治療效果。
 

圖5. 外泌體-脂質(zhì)體融合流程
 

圖6. 不同載藥方法成本和效率對比
 

三、EVs純化方法和質(zhì)量監(jiān)控
對于EV分離,可以通過確定的生物分離程序,包括離心、深度過濾(機械篩分和吸附)和切向流(交叉流)過濾來完成細胞中產(chǎn)品的初步分離。EVs 分離的方法包括:微分超速離心(dUC)、沉淀、尺寸排阻色譜、親和層析、切向流過濾等,但是目前并沒有公認的適合于大規(guī)模生產(chǎn)的 EVs 分離技術(shù)。主要原因是某些程序可能會對 EVs 的完整性和質(zhì)量產(chǎn)生負面影響。同時,產(chǎn)量和產(chǎn)品純度會因為方法和報告的不同而不同,所以總體 EVs 純度一般都比較低。此外,對于異質(zhì)性 EVs 群體,分離方法可能導(dǎo)致生物活性高于或低于總?cè)后w的特定亞群被選擇性分離。
綜上,目前亟需對不同分離方法在 EVs 回收效率、純度、蛋白標志物、裝載藥物量等方面進行評價,制定統(tǒng)一的流程和標準。在2020年背靠背發(fā)表的兩篇 JEV 文章中( Liang Dong et al., 2020, Ye Tian et al., 2020),作者分別對不同來源的 EVs 的純化方法進行了綜合比較,意在評估不同純化方法的優(yōu)缺點,從而促進 EVs 分離純化的標準和質(zhì)量監(jiān)控。其中 Liang Dong 等用 NanoFCM 對不同 EVs 分離方法進行對比,分析 EVs 大小、濃度、回收效率、純度、表面標志物等物理、生化性質(zhì)。不同的純化方法具有各自的優(yōu)勢和不足,研究人員應(yīng)根據(jù)樣品類型、下游分析和工作場景(如臨床或?qū)嶒炇?,在 EVs 回收率和純度之間尋找平衡,根據(jù)樣本的類型和體積,文中作者給出了相應(yīng)的方案供研究者參考(如圖7-圖8)。文章全文使用 NanoFCM 對不同樣品外泌體用不同純化方法純化進行了研究,NanoFCM 可在單顆粒水平對 EVs 的顆粒濃度、大小、純度、蛋白等進行表征,研究純化方法對EVs的影響,優(yōu)化 EVs 的純化過程,有望為建立標準有效的 EVs 分離和質(zhì)控方法提供表征手段。

 

圖7. EVs表面標志物蛋白分析
 

圖8. 不同來源EVs純化方法選擇


四、總結(jié)和展望
從監(jiān)管的角度來看,EVs 屬于生物制劑的制藥類別(根據(jù)不同地區(qū)的說法,分別被稱為生物藥物、生物制劑或生物制藥),包含一種或多種由生物細胞制成或從生物細胞中提取的活性物質(zhì)。一般而言,生物制劑中的活性物質(zhì)要比非生物制劑中的活性物質(zhì)復(fù)雜。目前這種復(fù)雜的物質(zhì)和結(jié)構(gòu)只能由活的生物體產(chǎn)生。然而,這種生產(chǎn)方法本質(zhì)上面臨著一定程度的內(nèi)在生物變異,這可能導(dǎo)致不同批次間產(chǎn)品的異質(zhì)性。

從工藝設(shè)計的角度來看,這種異質(zhì)性既受到用于表達生物制劑的細胞內(nèi)生物工藝(上游加工)的影響,也受到用于生產(chǎn)生物制劑的制造工藝(下游加工)的影響。值得注意的是,培養(yǎng)條件:如細胞傳代、細胞密度和EVs 收獲頻率,極大地影響產(chǎn)品質(zhì)量,包括產(chǎn)量、EVs 組成和 EVs 的生物活性等。生產(chǎn)條件的微小變化可能會對EVs產(chǎn)品質(zhì)量和活性產(chǎn)生相當大的影響,所以這些細微條件的改進均需要一種在單顆粒水平,快速、高通量檢測的方法來進行質(zhì)量監(jiān)控。
納米流式檢測儀(NanoFCM)可在單顆粒水平,對 40-1000 nm的EVs進行單顆粒分析,測定 EVs 的顆粒濃度、粒徑分布、載藥量、蛋白、核酸等物理生化性質(zhì),對 EVs 的生產(chǎn)過程進行質(zhì)量控制,優(yōu)化生產(chǎn)條件、提高載藥效率。同時可對 EVs 在生產(chǎn)后的穩(wěn)定性進行評價,評估不同存儲條件對 EVs 的影響,NanoFCM 的應(yīng)用貫穿整個藥物研發(fā)、生產(chǎn)、質(zhì)控、穩(wěn)定性評估等整個過程,極大加快 EVs 藥物研發(fā)的進程!
¹EVOX發(fā)展了名為DeliverEXTM的外泌體遞送平臺,此平臺可以設(shè)計和修飾外泌體,并將蛋白、RNA及其他類型的藥物加載到外泌體中,使其具有靶向目標組織的功能,將藥物遞送到靶器官中。借助于DeliverEXTM平臺,EVOX在2020年分別與制藥巨頭武田和禮來達成了巨額的合作協(xié)議(分別為8.82億美元和12億美元),將其外泌體技術(shù)應(yīng)用于遞送蛋白質(zhì)或RNA,從而實現(xiàn)罕見病和神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療,維持制藥巨頭在各自領(lǐng)域的優(yōu)勢。

參考文獻:
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5. Dong, Liang, et al. “Comprehensive evaluation of methods for small extracellular vesicles separation from human plasma, urine and cell culture medium.” Journal of Extracellular Vesicles2 (2020): e12044.
來源:廈門福流生物科技有限公司
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