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檢測(cè)細(xì)胞凋亡的方法分類及介紹

瀏覽次數(shù):1140 發(fā)布日期:2022-4-7  來(lái)源:MedChemExpress
 
細(xì)胞凋亡 (Apoptosis)
 

細(xì)胞的“花樣”死亡方式一文中,小 M 已經(jīng)介紹過(guò)細(xì)胞的死亡方式有十幾種,凋亡只是其中一種:細(xì)胞凋亡 (Apoptosis),又稱程序性細(xì)胞死亡,是指為維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,由基因控制的細(xì)胞自主有序的死亡。

 

與被動(dòng)的細(xì)胞壞死不同,細(xì)胞凋亡是主動(dòng)發(fā)生的,是為更好地適應(yīng)生存環(huán)境而主動(dòng)爭(zhēng)取的一種死亡過(guò)程,期間涉及一系列基因的激活、表達(dá)以及調(diào)控等。

圖 1. 細(xì)胞凋亡的信號(hào)通路[1]

 

細(xì)胞凋亡的主要形態(tài)學(xué)特征包括:染色質(zhì)固縮、DNA 片段化、細(xì)胞膜起泡、細(xì)胞皺縮、凋亡小體的形成等。

圖 2. 細(xì)胞凋亡過(guò)程

 
 
細(xì)胞凋亡的檢測(cè)
 
 
細(xì)胞凋亡,我們?cè)撊绾螜z測(cè)呢?
目前至少有數(shù)十種檢測(cè)細(xì)胞凋亡的方法,可以大致劃分為基于細(xì)胞形態(tài)、生物學(xué)功能和生化標(biāo)記三大類。

 

基于細(xì)胞形態(tài)學(xué)的方法

 
1.1 電子顯微鏡檢測(cè)
電鏡形態(tài)學(xué)觀察是迄今為止判斷凋亡最經(jīng)典、最可靠的方法,被認(rèn)為是確定細(xì)胞凋亡的金標(biāo)準(zhǔn)。細(xì)胞凋亡的主要形態(tài)學(xué)特征包括:染色質(zhì)固縮、DNA 片段化、細(xì)胞膜起泡、細(xì)胞皺縮、凋亡小體的形成等。
 

圖 3. BBR 和 DDP 誘導(dǎo)下 OVCAR3 細(xì)胞的凋亡形態(tài)[2]
 
1.2 細(xì)胞核染色檢測(cè)
細(xì)胞凋亡時(shí),細(xì)胞膜通透性增強(qiáng),染色質(zhì)發(fā)生固縮,故經(jīng) DAPI、Hoechst 系列等熒光染料染色后可快速檢測(cè)細(xì)胞凋亡。除了實(shí)驗(yàn)操作簡(jiǎn)單、成本低廉之外,細(xì)胞核染色還可以定量。
 

圖 4. PC-3 細(xì)胞凋亡過(guò)程中核染色質(zhì)的形態(tài)學(xué)變化[3]

注:Hoechst 33342 染色觀察到核碎裂和核凝結(jié)。用 0、0.3、0.6、0.9 和 1.2 mg/mL 的莖提取物處理 PC-3 細(xì)胞 24h 后,細(xì)胞出現(xiàn)典型的凋亡細(xì)胞核形態(tài)變化。照片在 20× 熒光顯微鏡下拍攝。箭頭表示凋亡細(xì)胞。

 

基于生物學(xué)功能的方法

 

2.1 線粒體膜電位的檢測(cè)
凋亡早期細(xì)胞,線粒體膜通透性增加,線粒體膜電位 (ΔΨm) 下降甚至消失。線粒體膜電位的下降被認(rèn)為是細(xì)胞凋亡過(guò)程中最早發(fā)生的生物學(xué)變化。一旦線粒體膜電位被破壞,細(xì)胞凋亡將不可逆轉(zhuǎn)。
 
目前常用一些親脂性陽(yáng)離子染料如 JC-1 (HY-K0601) 檢測(cè)線粒體膜電位的變化。線粒體膜電位較高時(shí),JC-1 在基質(zhì)中匯聚形成聚合物,可以產(chǎn)生紅色熒光 (Ex/Em=585/590 nm);線粒體膜電位較低時(shí),JC-1 不能聚集在線粒體基質(zhì)中,以單體形式存在產(chǎn)生綠色熒光 (Ex/Em=510/527 nm)。
 

圖 5. JC-1 法檢測(cè) KRA-533 刺激下不同細(xì)胞的線粒體膜電位變化[4]

 

2.2 細(xì)胞膜表面磷脂酰絲氨酸 (PS) 的檢測(cè)
在正常細(xì)胞中,磷脂酰絲氨酸 (PS) 位于細(xì)胞膜內(nèi)側(cè);細(xì)胞凋亡早期,PS 會(huì)外翻到細(xì)胞膜外側(cè)。Annexin V (膜聯(lián)蛋白 V) 是一種 Ca2+ 依賴性磷脂結(jié)合蛋白,可與 PS 特異性結(jié)合,因此 Annexin V 常作為檢測(cè)細(xì)胞早期凋亡的靈敏指標(biāo)之一。Annexin V 經(jīng) FITC 標(biāo)記后可發(fā)綠色熒光。碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) 染色液是一種不能穿透細(xì)胞膜的紅色熒光染料,可對(duì)凋亡晚期細(xì)胞及壞死細(xì)胞染色。
 
經(jīng) Annexin V-FITC 和 PI 聯(lián)合染色后,正常細(xì)胞基本無(wú)熒光 (Annexin V-/PI-),早期凋亡細(xì)胞呈綠色熒光 (Annexin V+/PI-),晚期凋亡細(xì)胞及壞死細(xì)胞則呈綠色和紅色熒光 (Annexin V+/PI+)。
 

圖 6. 不同濃度臭椿酮誘導(dǎo) A375 細(xì)胞的凋亡情況[5]
 
此外,除了用 FITC 標(biāo)記 Annexin V 之外,也可以用 EGFP、PE、mCherry 等作為熒光探針哦。

 

基于生化標(biāo)記的方法

 

3.1 凋亡分子標(biāo)記檢測(cè)

Caspase (cysteinyl-aspartic acid proteases) 蛋白家族在介導(dǎo)細(xì)胞凋亡過(guò)程中具有重要的作用。絕大多數(shù)情況下,所有的凋亡信號(hào)都會(huì)匯集到凋亡的最終執(zhí)行者 Caspase-3 上。在正常細(xì)胞中,Caspase-3 以酶原形式存在,在凋亡早期 Caspase-3 被激活,并執(zhí)行最后的凋亡程序。因此可以通過(guò)檢測(cè) Caspase 3 剪切體的含量或 Caspase 3 的活性來(lái)反應(yīng)細(xì)胞凋亡過(guò)程。此外,也可以通過(guò)檢測(cè) Caspase-3 的底物——PARP 蛋白的含量來(lái)檢測(cè)細(xì)胞凋亡。

 

圖 7. ZnO-NPs 誘導(dǎo)牙齦癌細(xì)胞的凋亡情況[6]

 

3.2 DNA 片段化檢測(cè)

在細(xì)胞凋亡的后期,Caspase 會(huì)激活 Caspase-Activated DNase (CAD),切割核小體之間的 DNA,形成以 180-200 bp 為單位的 DNA 片段,經(jīng)瓊脂糖電泳后形成 DNA ladder。

 

圖 8. DNA 片段化檢測(cè) MCP30 誘導(dǎo)下 Ishikawa H 細(xì)胞的凋亡情況[7]

注:泳道 1-4 分別表示 0 pM、8.33 pM、333.33 pM 和 666.67 pM MCP30 誘導(dǎo) 72h 的 Ishikawa H 細(xì)胞

 

3.3 DNA 片段原位檢測(cè) (TUNEL 法)

細(xì)胞凋亡時(shí),相關(guān) DNA 內(nèi)切酶被激活,進(jìn)而切斷核小體間的基因組 DNA,產(chǎn)生 180-200 bp 的 DNA ladder,暴露的 3’-OH 在末端脫氧核苷酸轉(zhuǎn)移酶 (Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT) 的催化下加上特異熒光探針標(biāo)記的 dUTP,借助熒光顯微鏡或流式細(xì)胞儀即可檢測(cè)細(xì)胞凋亡的發(fā)生。

 

圖 9. TUNEL 法檢測(cè)苦參堿刺激下 HepG2 細(xì)胞凋亡情況[8]
 

看了這么多,相信大家對(duì)細(xì)胞凋亡的檢測(cè)方法都有了大概的了解。MCE 現(xiàn)已推出細(xì)胞凋亡檢測(cè)相關(guān)試劑盒,心動(dòng)不如行動(dòng),來(lái) MCE 官網(wǎng)查詢具體的產(chǎn)品信息吧!

 

相關(guān)產(chǎn)品

細(xì)胞凋亡與壞死檢測(cè)試劑盒

采用 Hoechst 33342 和碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) 雙染的方法快速檢測(cè)細(xì)胞凋亡與細(xì)胞壞死。

細(xì)胞周期與細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒

采用碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) 染色的方法檢測(cè)細(xì)胞周期和細(xì)胞凋亡。

細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒 (Hoechst 法)

采用 Hoechst 33258 染色的方法快速檢測(cè)細(xì)胞凋亡。

Annexin V-FITC/PI 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒

經(jīng) Annexin V-FITC 和 PI 聯(lián)合染色后,正常細(xì)胞基本無(wú)熒光 (Annexin V-/PI-),早期凋亡細(xì)胞呈綠色熒光 (Annexin V+/PI-),晚期凋亡細(xì)胞及壞死細(xì)胞則呈綠色和紅色熒光 (Annexin V+/PI+)。

Annexin V-EGFP/PI 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒

Annexin V-EGFP 和 PI 聯(lián)合染色后,正常細(xì)胞基本無(wú)熒光 (Annexin V-/PI-),早期凋亡細(xì)胞呈綠色熒光 (Annexin V+/PI-),晚期凋亡細(xì)胞及壞死細(xì)胞則呈綠色和紅色熒光 (Annexin V+/PI+)。與 FITC 相比,EGFP 的綠色熒光更強(qiáng),不易淬滅,穩(wěn)定性更高。

 

線粒體膜電位檢測(cè)試劑盒 (JC-1)

一種以 JC-1 為熒光探針,快速靈敏地檢測(cè)組織、細(xì)胞或純化的線粒體跨膜電勢(shì)差的試劑盒,可以用于早期的細(xì)胞凋亡檢測(cè)。


MCE 的所有產(chǎn)品僅用作科學(xué)研究或藥證申報(bào),我們不為任何個(gè)人用途提供產(chǎn)品和服務(wù)。

 

 

參考文獻(xiàn)

1. Wu J, Ye J, Kong W, et al. Programmed cell death pathways in hearing loss: A review of apoptosis, autophagy and programmed necrosis. Cell Prolif. 2020, 53(11): e12915.

2. Liu L, Fan J, Ai G, et al. Berberine in combination with cisplatin induces necroptosis and apoptosis in ovarian cancer cells. Biol Res. 2019, 52(1): 37.
3. Chainumnim S, Saenkham A, Dolsophon K, et al. Stem Extract from Momordica cochinchinensis Induces Apoptosis in Chemoresistant Human Prostate Cancer Cells (PC-3). Molecules. 2022, 27(4): 1313.
4. Xu K, Park D, Magis AT, et al. Small Molecule KRAS Agonist for Mutant KRAS Cancer Therapy. Mol Cancer. 2019, 18(1): 85.
5. Liu W, Liu X, Pan Z, et al. Ailanthone Induces Cell Cycle Arrest and Apoptosis in Melanoma B16 and A375 Cells. Biomolecules. 2019, 9(7): 275.
6. L SW, Lee CH, Lin MS, et al. ZnO Nanoparticles Induced Caspase-Dependent Apoptosis in Gingival Squamous Cell Carcinoma through Mitochondrial Dysfunction and p70S6K Signaling Pathway. Int J Mol Sci. 2020, 21(5): 1612.
7. Gu HZ, Lin RR, Wang HC, et al. Effect of Momordica charantia protein on proliferation, apoptosis and the AKT signal transduction pathway in the human endometrial carcinoma Ishikawa H cell line in vitro. Oncol Lett. 2017, 13(5): 3032-3038.

8. Wei R, Cao J, Yao S. Matrine promotes liver cancer cell apoptosis by inhibiting mitophagy and PINK1/Parkin pathways. Cell Stress Chaperones. 2018, 23(6): 1295-1309.

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