類器官技術(shù)建立在干細(xì)胞技術(shù)以及經(jīng)典發(fā)育生物學(xué)和細(xì)胞混合實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)之上;類器官的出現(xiàn)無(wú)疑是對(duì)干細(xì)胞研究不懈探索的驚喜回饋。
腸上皮是成年哺乳動(dòng)物中自我更新最快的組織,自 2007 年,Hans Clevers 實(shí)驗(yàn)室就通過(guò)譜系追蹤 (lineage tracing) 發(fā)現(xiàn)腸道 Wnt 靶基因中隱窩基底循環(huán)柱狀細(xì)胞表達(dá)的 Lgr5 (leucine-rich-repeat-containing G-protein-coupled receptor 5, Gpr49) 可作為腸和結(jié)腸的干細(xì)胞的成體干細(xì)胞標(biāo)志物,這也就是大名鼎鼎的 Lgr5+ 細(xì)胞。
2009 年,Hans Clevers 和 Toshiro Sato 用來(lái)源于小鼠腸道的成體干細(xì)胞培育出首個(gè)微型腸道 (Mini-guts) 類器官,開(kāi)啟了類器官技術(shù)的發(fā)展的“新紀(jì)元”。
圖 1. 類器官培養(yǎng)發(fā)展時(shí)間軸[2]
腸類器官的發(fā)育類器官可來(lái)源于器官限制成體干細(xì)胞 (ASCs) 和多能干細(xì)胞 (PSCs) 兩種干細(xì)胞。這兩種干細(xì)胞來(lái)源產(chǎn)生的類器官包含體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的所有腸上皮細(xì)胞類型,比例和排列相似。
圖 3. 體外培養(yǎng) PSC 來(lái)源的腸類器官[3]
■ 基礎(chǔ)套餐來(lái)一套:
腸道類器官培養(yǎng)基的關(guān)鍵成分包括 Wnt-3a (W)、表皮生長(zhǎng)因子 (EGF) (E)、Noggin (N) 和 R-spondin-1 (R),統(tǒng)稱為 WENR 培養(yǎng)基。在培養(yǎng)基中有序地添加這些生長(zhǎng)因子可調(diào)控干細(xì)胞生態(tài)位信號(hào)通路 (包括 Wnt、骨形態(tài)發(fā)生蛋白 (BMP) 和 Notch 信號(hào)通路),誘導(dǎo)腸道干細(xì)胞 (ISCs) 自我更新、增殖和分化。
■ “自助”更有它的妙:
也有一些研究表明,向 ENR 培養(yǎng)基 (包含 EGF + Noggin + R-spondin-1) 中加入其它成分,以誘導(dǎo)干細(xì)胞走向特定的分化命運(yùn)。
例如,引入兩種小分子的組合,如 CHIR99021 + Valproic acid 或者是 LDN-193189 + CHIR99021,可協(xié)同促進(jìn) Lgr5+ ISCs 在自我更新和未分化狀態(tài)下的維持,得到富含 ISCs 的培養(yǎng)。
通過(guò)補(bǔ)充 DAPT + CHIR99021、Valproic acid + IWP-2 或 DAPT + IWP-2 的 ENR 培養(yǎng)基培養(yǎng)可獲得分化表型,這些分子相互配合誘導(dǎo) ISCs 直接分化為 Paneth 細(xì)胞 (杯狀細(xì)胞) 及腸細(xì)胞和分泌細(xì)胞譜系 (腸內(nèi)分泌細(xì)胞)。也有人認(rèn)為,DAPT 或 BMP 分子的加入足以促進(jìn) ISC 分化并產(chǎn)生多譜系腸類器官。
雖然關(guān)于類器官培養(yǎng)基的組成有詳細(xì)的綜述,但不同方案的成分有時(shí)會(huì)存在差異,在培養(yǎng)技術(shù)中需要大量的試驗(yàn)和摸索,以確定劑量和時(shí)機(jī),達(dá)到預(yù)期結(jié)果。
2020 年 3 月,類器官“鼻祖” Hans Clevers 的團(tuán)隊(duì)再在 Science 上發(fā)表大作:SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes,揭示了新型冠狀病毒對(duì)人類腸道的有效感染。他們靈活運(yùn)用腸道類器官的培養(yǎng)條件,將病毒對(duì)人類腸道的感染可視化。
hSIO (human small intestinal organoids; 人類小腸類器官) 由原代腸道上皮干細(xì)胞建立,通過(guò)符合倫理規(guī)范途徑獲得人類腸道組織樣本。他們?cè)O(shè)定了四種不同培養(yǎng)(EXP、DIF、DIF-BMP、EEC)條件:
EXP:在 Wnt EXP (Expansion medium) 中生長(zhǎng)的 hSIO 絕大多數(shù)由干細(xì)胞和腸細(xì)胞祖細(xì)胞組成,與 Wnt 條件培養(yǎng)基不同,培養(yǎng)基中添加 Wnt 替代物 (U-Protein Express)。
DIF:在 ENR 中實(shí)現(xiàn)了一般分化,稱為 DIF (differentiation medium),在 DIF 培養(yǎng)基中生長(zhǎng)的類器官含有腸細(xì)胞、杯狀細(xì)胞和少量腸內(nèi)分泌細(xì)胞 (EEC)。
DIF+BMP:通過(guò)從 ENR 中除去 Noggin 并添加 BMP-2/BMP-4 激活 BMP,導(dǎo)致進(jìn)一步成熟。
EEC: 在 DIF + BMP 的條件下,用強(qiáng)力霉素 (Doxycycline) 在 ENR 培養(yǎng)基中穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的載體中誘導(dǎo) NeuroG3 的表達(dá),以誘導(dǎo) EEC 數(shù)量增加。
如圖 3 所示,四種培養(yǎng)條件下生長(zhǎng)的 hSIO 暴露于 SARS-CoV 和 SARS-CoV-2 2 種病毒。在所有培養(yǎng)條件下,兩種病毒的傳染性病毒顆粒和病毒 RNA 的滴度均顯著增加。
圖 4:SARS-CoV 和 SARS-CoV-2 在 hSIO 中復(fù)制[12]
SARS-CoV(藍(lán))SARS-CoV-2(紅)感染后 24、48 和 60 小時(shí),測(cè)定裂解的類器官活病毒滴度。
為了確定病毒目標(biāo)細(xì)胞類型,對(duì) hSIO 進(jìn)行了共聚焦分析,不同的培養(yǎng)條件下共聚焦分析顯示,SARS-CoV-2 的目標(biāo)細(xì)胞為增殖的腸上皮細(xì)胞祖細(xì)胞 (EXP 條件下) 或有絲分裂后的腸細(xì)胞 (DIF 條件下),而腸內(nèi)分泌細(xì)胞幾乎沒(méi)有感染。
圖 5. SARS-CoV-2 感染 hSIO 的共聚焦分析[12]
類器官腸上皮細(xì)胞刷狀緣肌動(dòng)蛋白通過(guò) Phalloidin 標(biāo)記 (綠色),DAPI 標(biāo)記細(xì)胞核 (藍(lán)色),病毒 dsRNA 染色顯示感染細(xì)胞。A. 增殖的細(xì)胞在擴(kuò)張的類器官中體現(xiàn),Ki67 標(biāo)記增殖細(xì)胞 (紅色);B. 腸上皮細(xì)胞在分化的類器官中體現(xiàn),APOA1 標(biāo)記有絲分裂后的腸細(xì)胞 (紅色)
看到這里,不得不稱贊一句 Hans Clevers 類器官培養(yǎng)玩兒得真溜!絕絕子!
相關(guān)產(chǎn)品 |
Wnt 參與調(diào)節(jié)細(xì)胞發(fā)育、增殖、分化、粘附、極性、細(xì)胞-細(xì)胞通信、生存和自我更新功能。Wnt3a 是類器官構(gòu)建最常用的培養(yǎng)因子之一。 |
上皮組織生長(zhǎng)因子 EGF 與其受體結(jié)合,誘導(dǎo)增生性變化。EGF 是胃腸道、肝臟、甲狀腺、腦等類器官培養(yǎng)所需因子。 |
R-spondin-1 在干細(xì)胞的自我更新和 Wnt 信號(hào)的激活中發(fā)揮作用。它能誘導(dǎo)腸隱窩上皮細(xì)胞增殖,促進(jìn)腸上皮愈合,支持腸上皮干細(xì)胞更新,是小鼠/人類器官祖干細(xì)胞維持和增殖的關(guān)鍵因子。 |
Noggin 是骨形態(tài)發(fā)生蛋白的內(nèi)源性抑制劑,調(diào)節(jié)細(xì)胞分化、增殖和凋亡。它是最基礎(chǔ)的類器官培養(yǎng)因子之一。 |
BMP 在胚胎發(fā)生、發(fā)育和維持組織穩(wěn)態(tài)中起著至關(guān)重要的作用。 |
選擇性的 GSK3 抑制劑,可用于類器官的生成。CHIR99021+Valproic acid 或者是 CHIR99021+LDN-193189,可協(xié)同促進(jìn) Lgr5+ ISCs 在自我更新和未分化狀態(tài)下的維持,得到富含 ISCs 的培養(yǎng)。 |
Valproic acid HDAC 的抑制劑;在類器官培養(yǎng)中,Valproic acid 和 CHIR99021 的組合可協(xié)同促進(jìn) Lgr5+ ISCs 在自我更新和未分化狀態(tài)下的維持,得到富含 ISCs 的培養(yǎng)。 |
一種選擇性的 BMP I 型受體抑制劑,抑制 ALK2 和 ALK3 的 IC50 分別為 5 nM 和 30 nM。 |
Wnt 加工和分泌的抑制劑,其 IC50 為 27 nM。 |
可抑制 Notch 1 信號(hào)傳導(dǎo)并誘導(dǎo)細(xì)胞分化。 |
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參考文獻(xiàn)
3. Sara Rahmani, Tohid F. Didar, et al. Intestinal organoids: A new paradigm for engineering intestinal epithelium in vitro. Biomaterials. 2019 Feb;194:195-214.
4. Aliya Fatehullah, Nick Barker, et al. Organoids as an in vitro model of human development and disease.
5. Mo Li, Juan C Izpisua Belmonte. Organoids — Preclinical Models of Human Disease. N Engl J Med. 2019 Feb 7;380(6):569-579.
6. Joseph Azar, Mohamed Al-Sayegh, Wassim Abou-Kheir, et al. The Use of Stem Cell-Derived Organoids in Disease Modeling: An Update. Int J Mol Sci. 2021 Jul 17;22(14):7667.
7. HansClevers. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 2016 Jun 16;165(7):1586-1597.
8. Kathryn L Fair, Jennifer Colquhoun, Nicholas R F Hannan. Intestinal organoids for modelling intestinal development and disease. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2018 Jul 5;373(1750):20170217.
9. Toshiro Sato, Hans Clevers, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 2009 May 14;459(7244):262-5.
10. Madeline A Lancaster, Juergen A Knoblich. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 2014 Jul 18;345(6194):1247125.
11. Mo Li, Juan C Izpisua Belmonte. Organoids - Preclinical Models of Human Disease. N Engl J Med. 2019 Feb 7;380(6):569-579.
12. Mart M Lamers, Hans Clevers, et al. SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes. Science . 2020 Jul 3;369(6499):50-54.