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RNA編輯工具的進(jìn)化之路

瀏覽次數(shù):6306 發(fā)布日期:2019-11-15  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

RNA作為以DNA單鏈為模板的遺傳信息載體,其編輯相比DNA編輯而言,由于不會(huì)永久改變基因組,因此在安全性上有著不言而喻的優(yōu)勢(shì)。然而相對(duì)于DNA編輯,靶向RNA的編輯還沒完全被大眾熟悉,其實(shí)從上個(gè)世紀(jì)90年代起,對(duì)RNA編輯的自然過(guò)程已有了較多的認(rèn)識(shí)。近年來(lái)也逐漸開始進(jìn)化成為真正的RNA“編輯器”,并且已進(jìn)入一個(gè)快速前進(jìn)的軌道,上一期已為大家介紹了自然狀態(tài)下RNA在翻譯前的調(diào)節(jié)過(guò)程及操作原理,本期具體看看這些神奇的RNA編輯工具。

 

DNA和RNA的編輯最新發(fā)展是基于對(duì)ADAR蛋白以及CRISPR技術(shù)相關(guān)的酶的研究。對(duì)這些酶的深入認(rèn)識(shí)為有效地操縱特定的分子特征以測(cè)試其功能開辟了新的機(jī)會(huì)。從整體上來(lái)劃分,我們可以把RNA編輯(操作)工具分為兩大類,其實(shí)也就是兩大類酶復(fù)合物。這兩類工具在不同的角度對(duì)RNA進(jìn)行“編輯”,大大拓寬了我們對(duì)RNA進(jìn)行操作的能力。

 

1.一種是RNA效應(yīng)元件,這些效應(yīng)元件主要是可以對(duì)RNA進(jìn)行識(shí)別,靶向與切割,這種“編輯”是一種較為寬泛意義上的編輯;

2.另一種可稱為單堿基RNA編輯器,這類編輯器主要依托于ADAR蛋白或ADAR蛋白的變體,可以在單個(gè)堿基尺度上完成RNA水平上的“A-to-I”或“C-to-U”,并且具有較強(qiáng)的單堿基突變型遺傳疾病的治療潛力。

 

RNA效應(yīng)元件的開發(fā)

 

如小編之前所說(shuō),RNA效應(yīng)元件可以對(duì)RNA進(jìn)行識(shí)別,靶向與切割?吹竭@幾個(gè)詞,大家或許很快就想到了我們以CRISPR/Cas為代表的基因編輯工具。確實(shí),在CRISPR/Cas誕生之后,科學(xué)家們也在一直思考,是否可以將基于Cas蛋白結(jié)合DNA的一些特性與應(yīng)用轉(zhuǎn)移至RNA上。而正是在這樣的想法催生下,基于CRISPR的RNA效應(yīng)物誕生了。接下來(lái)就一起看看其中的代表吧。

 

1. RCas9

命名:RCas9,顧名思義,就是RNA靶向的Cas9(RNA-targeting Cas9)

研究團(tuán)隊(duì):基因編輯技術(shù)研究的領(lǐng)軍人物Jennifer Doudna的團(tuán)隊(duì)于2014年開發(fā)得到 [1]

原理:利用Cas9可識(shí)別與結(jié)合PAM序列的原理,設(shè)計(jì)了一種被稱為PAMmers的PAM遞呈寡核苷酸,可以讓Cas9特異定向識(shí)別并結(jié)合到單鏈RNA(ssRNA)特異位點(diǎn)上并完成切割。如果將RCas9與一種蛋白質(zhì)翻譯起始因子連接到一起并靶向特異的mRNA,那么就還可以起到對(duì)這個(gè)蛋白翻譯水平的調(diào)節(jié)。

應(yīng)用:兩年后,Yeo實(shí)驗(yàn)室與Jennifer合作,采用RCas9對(duì)ACTB、TFRC和CCNA2等內(nèi)源性轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行了編輯,并對(duì)融合了熒光蛋白(如GFP)的Cas9進(jìn)行觀察,開發(fā)出了在活細(xì)胞內(nèi)追蹤RNA運(yùn)輸?shù)墓ぞ,在胞?nèi)RNA研究上更進(jìn)了一步[2]。

圖1. RCas9原理示意圖

圖2. RCas9對(duì)活細(xì)胞中的RNA進(jìn)行示蹤

 

2. C2c2

命名:CRISPR/C2c2,亦稱Cas13a,是目前第二大類CRISPR/Cas系統(tǒng)中,唯一能夠切割RNA的蛋白(諸如Cas9,Cpf1,C2c1等均是RNA介導(dǎo)的DNA內(nèi)切酶);

研究團(tuán)隊(duì):基因編輯領(lǐng)域的另一領(lǐng)軍人物張峰的團(tuán)隊(duì)開發(fā)出的RNA靶向元件[3];

原理:C2c2會(huì)與成熟的crRNA形成復(fù)合物,在不借助tracrRNA的情況下與單鏈RNA結(jié)合,而crRNA則會(huì)與類似PAM序列的PFS片段結(jié)合,并對(duì)單鏈RNA進(jìn)行切割,從而降低相應(yīng)蛋白的表達(dá);

應(yīng)用:作為一種siRNA的替代手段,做到可調(diào)節(jié)的基因“敲低”(knock down)。

圖3. C2c2系統(tǒng)示意圖

 

3. CIRTS

命名:CIRTS(CRISPR-Cas inspired RNA targeting system),一種基于CRISPR/Cas的RNA靶向系統(tǒng);

研究團(tuán)隊(duì):今年6月,由來(lái)自美國(guó)芝加哥大學(xué)的Bryan C. Dickinson研究團(tuán)隊(duì)提出[4];

原理:CIRTS由4個(gè)核心組分構(gòu)成:1)一個(gè)RNA發(fā)夾結(jié)合蛋白(RNA hairpin binding protein),可以在gRNA的引導(dǎo)下與特異性的RNA結(jié)構(gòu)結(jié)合;2)一個(gè)gRNA,它的結(jié)構(gòu)可以與設(shè)計(jì)好的發(fā)夾結(jié)合蛋白相互作用,同時(shí)它的序列與靶RNA互補(bǔ);3)一個(gè)單鏈結(jié)合蛋白(ssRNA binding protein),可以與gRNA序列非特異性的結(jié)合,對(duì)gRNA起到穩(wěn)定和保護(hù)作用;4)一個(gè)效應(yīng)蛋白(effector protein),比如核糖核酸酶或者表觀轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)子,可以對(duì)目標(biāo)RNA起特定作用。

應(yīng)用:CIRTS的復(fù)合物(如:ORF5-TBP6.7-Pin nuclease)對(duì)RNA的切割能力與Cas13幾乎沒有差別,而且可以模塊化。由于它的尺寸。2.7kb),因而可以用AAV有效裝載。組分完全來(lái)源于人類蛋白,因而可以避免機(jī)體產(chǎn)生免疫反應(yīng),為基因治療提供了新的工具。

圖4. CIRTS原理示意圖

 

 

單堿基RNA編輯器

 

 

顧名思義,單堿基RNA編輯器便是在RNA水平進(jìn)行單堿基突變矯正的工具,在DNA尺度上,ABE工具可以完美起到“A-to-G”的變化,但是在DNA尺度上,也有這樣神奇的RNA“ABE”。與我們熟知的ABE與CBE相比,它又有哪些不同呢?

 

1. ADAR融合蛋白進(jìn)行A-to-I編輯

ADAR蛋白(adenosine deaminase acting on RNA)的作用下發(fā)生的A-to-I。雙鏈RNA本就可以作為ADAR編輯的底物,而且在許多RNA靶向效應(yīng)物出現(xiàn)后,科學(xué)家們便也開始嘗試,是否可以將ADAR或ADAR核心脫氨結(jié)構(gòu)域與這些RNA靶向效應(yīng)物結(jié)合,從而實(shí)現(xiàn)在RNA上完成A-to-I(形式上等同于A-to-G)的編輯呢?

 

研究進(jìn)展:德國(guó)圖賓根大學(xué)的Thorsten Stafforst團(tuán)隊(duì)和波多黎各大學(xué)的Rosenthal團(tuán)隊(duì):將ADAR的核心脫氨酶結(jié)構(gòu)域與SNAP-tag[5]或λN肽[6]結(jié)合,利用gRNA將復(fù)合物(如SNAP-ADAR)攜帶至靶向編輯位點(diǎn)(與gRNA形成雙鏈區(qū)域)進(jìn)行編輯,成功實(shí)現(xiàn)了靶位點(diǎn)A-to-I的轉(zhuǎn)換。

圖5. ADAR融合SNAP-tag或λN肽進(jìn)行A-to-I編輯

 

張峰團(tuán)隊(duì):在Cas13系統(tǒng)出現(xiàn)后,張峰也將ADAR脫氨酶結(jié)構(gòu)域與dCas13b融合,開發(fā)出基于Cas13系統(tǒng)的A-to-I編輯工具:REPEIR(RNA Editing for Programmable A to I Replacement)[7]。

圖6. REPEIR原理示意圖

 

2. 利用內(nèi)源性ADAR進(jìn)行A-to-I編輯

雖然這樣的融合蛋白在RNA的A-to-I編輯上展現(xiàn)出了良好效果,但是仍然存在著幾大問(wèn)題:

  1. 蛋白分子量過(guò)大,使得通過(guò)病毒載體進(jìn)行裝載及人體內(nèi)遞送十分困難;

  2. 由于蛋白過(guò)表達(dá)可能引起潛在的脫靶效應(yīng);

  3. 外源蛋白表達(dá)有可能引起機(jī)體產(chǎn)生免疫反應(yīng);

  4. 機(jī)體內(nèi)的抗體有可能會(huì)和蛋白發(fā)生中和反應(yīng)從而導(dǎo)致編輯失敗。

 

在這樣的問(wèn)題之下,科學(xué)家們?cè)赗NA編輯工具開發(fā)上也在嘗試進(jìn)行新的探索。今年的3篇Nature子刊給我們打開了RNA編輯的新思路:那就是利用內(nèi)源性ADAR來(lái)進(jìn)行RNA編輯。

 

研究進(jìn)展:

德國(guó)杜賓根大學(xué)的Stafforst團(tuán)隊(duì):今年1月在Nature Biotechnology發(fā)文,提出了一種名為RSETORE(recruiting endogenous ADAR to specific transcripts for oligonucleotide-mediated RNA editing)的方法。RESTORE使用了一段化學(xué)合成的寡核苷酸(ASO)與靶序列進(jìn)行互補(bǔ)配對(duì),并添加了與靶向GluR2 mRNA相似的R/G motif作為ADAR的招募域(可見上一期公眾號(hào)對(duì)ADAR蛋白原理的介紹),利用人體細(xì)胞中已經(jīng)存在的ADAR蛋白進(jìn)行RNA編輯[8]。與IFN-α結(jié)合,RESTORE的編輯效率甚至可達(dá)80%。在研究中,RESTORE高效修復(fù)了導(dǎo)致α1-抗胰蛋白酶缺乏的PiZZ突變,并有效編輯了信號(hào)因子活性開關(guān)STAT1中的重要位點(diǎn)磷酸酪氨酸701。

 

加州大學(xué)圣地亞哥分校的Mali博士:今年2月,在Nature Methods上再度驗(yàn)證,只使用改造過(guò)的指導(dǎo)RNA,就可以與ADAR結(jié)合并且將它帶到正確RNA序列,并且在小鼠模型中修復(fù)了與肌營(yíng)養(yǎng)不良癥和鳥氨酸轉(zhuǎn)氨甲酰酶缺乏癥相關(guān)的突變[9]。

圖7. RESTORE原理示意圖

 

北京大學(xué)魏文勝課題組:今年7月,也在Nature Biotechnology上發(fā)文,提出了一種名為L(zhǎng)EAPER(Leveraging Endogenous ADAR for Programmable Editing on RNA)的方法,只需轉(zhuǎn)入一條特殊設(shè)計(jì)的RNA (arRNA, ADAR-recruiting RNA),就能夠通過(guò)招募細(xì)胞內(nèi)源的ADAR1 蛋白對(duì)靶向基因轉(zhuǎn)錄本上特定的A產(chǎn)生高效精準(zhǔn)的編輯,并不需要引入任何外源效應(yīng)蛋白。LEAPER在疾病治療領(lǐng)域的作用也得到了充分驗(yàn)證。比如LEAPER可以通過(guò)修復(fù)抑癌基因TP53中的致病突變來(lái)恢復(fù)p53突變體的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)功能。此外,在Hurler綜合征患者來(lái)源的原代細(xì)胞中,LEAPER能夠成功修復(fù)致病突變,并恢復(fù)細(xì)胞中的α-L-艾杜糖醛酸酶的催化活性。相比于需要進(jìn)行化學(xué)修飾的RESTORE,LEAPER可以通過(guò)穩(wěn)定表達(dá)的方式在細(xì)胞內(nèi)發(fā)揮作用,因此適用于裝載至腺相關(guān)病毒 (AAV)、慢病毒等載體中,在遞送至機(jī)體后持續(xù)發(fā)揮功能[10]。

圖8. LEAPER原理示意圖

 

3. C-to-U的RNA編輯

雖然ADAR可以良好地完成A-to-I的RNA編輯,但是針對(duì)于C-to-U的RNA編輯,先前的科學(xué)家們還沒有找到較好的手段。

研究進(jìn)展:今年7月,張峰實(shí)驗(yàn)室通過(guò)分子進(jìn)化的方法,使ADAR2酶具有了可以將胞嘧啶(C)轉(zhuǎn)化為尿嘧啶(U)的全新能力,與此同時(shí),它原先將A轉(zhuǎn)化為I的功能依舊得到了保留。通過(guò)進(jìn)一步優(yōu)化,該工具的脫靶效應(yīng)也被良好地進(jìn)行控制。這個(gè)全新的C-to-U工具被命名為RESCUE(RNA Editing for Specific C to U Exchange),打開了一個(gè)新的RNA編輯世界的大門[11]。為了驗(yàn)證該工具在疾病治療上的潛力,研究者們對(duì)編碼與阿爾茨海默病有關(guān)的風(fēng)險(xiǎn)因子APOE4的RNA進(jìn)行了編輯。RESCUE系統(tǒng)成功地將APOE4 RNA中的2個(gè)堿基從C變成了U,從而轉(zhuǎn)換為了安全無(wú)害的APOE2。

圖9. RESCUE原理示意圖

 

看到這里,大家是否對(duì)RNA編輯產(chǎn)生一個(gè)新的認(rèn)識(shí)呢?這樣的工具不僅為RNA的研究開拓的新方向,而且為疾病的基因治療提供新的工具。當(dāng)然,除了遺傳性疾病之外,在很多腫瘤的發(fā)生發(fā)展過(guò)程之中,也伴隨著RNA編輯的發(fā)生。那么下一期的公眾號(hào),就讓我們一起了解一下RNA編輯與腫瘤吧!

 

參考文獻(xiàn):

[1]O'Connell MR, Oakes BL, Sternberg SH, et al. Programmable RNA recognition and cleavage by CRISPR/Cas9. Nature, 2014, 516 (7530): 263-266.

[2]Nelles DA, Fang MY, O'Connell MR, et al. Programmable RNA Tracking in Live Cells with CRISPR/Cas9. Cell, 2016, 165 (2): 488-496.

[3]Abudayyeh OO, Gootenberg JS, Konermann S, et al. C2c2 is a single-component programmable RNA-guided RNA-targeting CRISPR effector. Science, 2016, 353 (6299): aaf5573.

[4]Rauch S, He E, Srienc M, et al. Programmable RNA-Guided RNA Effector Proteins Built from Human Parts. Cell, 2019, 178 (1): 122-134.

[5]Stafforst T, Schneider MF. An RNA-deaminase conjugate selectively repairs point mutations. Angew Chem Int Ed Engl, 2012, 51 (44): 11166-11169.

[6]Montiel-Gonzalez MF, Vallecillo-Viejo I, Yudowski GA, et al. Correction of mutations within the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator by site-directed RNA editing. Proc Natl Acad Sci U S A, 2013, 110 (45): 18285-18290.

[7]Cox DBT, Gootenberg JS, Abudayyeh OO, et al. RNA editing with CRISPR-Cas13. Science,  2017, 358 (6366): 1019-1027.

[8]Merkle T, Merz S, Reautschnig P, et al. Precise RNA editing by recruiting endogenous ADARs with antisense oligonucleotides. Nat Biotechnol, 2019, 37 (2): 133-138.

[9]Katrekar D, Chen G, Meluzzi D, et al. In vivo RNA editing of point mutations via RNA-guided adenosine deaminases. Nat Methods, 2019, 16 (3): 239-242.

[10]Qu L, Yi Z, Zhu S, et al. Programmable RNA editing by recruiting endogenous ADAR using engineered RNAs. Nat Biotechnol, 2019, 37 (9): 1059-1069.

[11]Abudayyeh OO, Gootenberg JS, Franklin B, et al. A cytosine deaminase for programmable single-base RNA editing. Science, 2019, 365 (6451): 382-386.

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