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昨日明星LncRNA搭上m6A后逆襲為今天新星

瀏覽次數(shù):4005 發(fā)布日期:2019-6-10  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
m6A RNA甲基化是當(dāng)前在LncRNA,環(huán)狀RNA等非編碼RNA之后最為火熱的科研明星,到底有多火?擺出數(shù)據(jù)告訴你!
2019年才過去一半還不到,已發(fā)表文章數(shù)就已占去年的7成。RNA甲基化領(lǐng)域,不僅文章數(shù)量多,高分文章也有許多。據(jù)統(tǒng)計,僅2019年上半年就發(fā)表了多篇Nature,Cell,Cell Stem Cell,Nature Immunolgy這類的頂級期刊,10分以上m6A文章就有18篇之多。
m6A RNA甲基化作為2018年國自然熱點,申請的課題主要圍繞writer,eraser和reader。
做膩了writer,eraser?那讓我們來看看reader,YTHDF家族由于在核外參與蛋白翻譯和降解,是reader里最明星的研究對象,可m6A reader酶千千萬萬,您研究的基因除了YTHDF家族外,可能還與其他reader結(jié)合。
今天,讓我們開開腦洞,談一談另一個reader hnRNPA2B1,看看像這類核內(nèi)核外都有表達(dá)的reader是怎么來做研究的。
文章導(dǎo)讀
結(jié)直腸癌Colorectal cancer(CRC)是一類腸道發(fā)生癌變的疾病。目前,關(guān)于CRC發(fā)生和轉(zhuǎn)移相關(guān)的分子機(jī)制還未有詳細(xì)報道。已有研究指出,LncRNA分子在腫瘤發(fā)生,發(fā)展,甚至是遷移的過程中發(fā)揮重要機(jī)制。因此,本文以LncRNA為切入點,首先通過LncRNA測序找到一個目標(biāo)LncRNA---RP11,在CRC中高表達(dá)的趨勢,且表型與細(xì)胞遷移正相關(guān)。接著,通過RNA Pull Down-質(zhì)譜技術(shù),證實該LncRNA與下游蛋白hnRNPA2B1是直接結(jié)合關(guān)系,該蛋白可是m6A RNA修飾的明星閱讀酶(Reader)呀!那這個LncRNA勢必也參與了m6A RNA 甲基化的過程。接下來,讓我們跟隨作者思路,看看LncRNA結(jié)合m6A的機(jī)制類文章是怎么做的。
 
發(fā)表期刊:Molecular Cancer
影響因子:7.8
實驗方法:LncRNA 測序MeRIP-qPCR,RNA Pull Down,RIP,LncRNA定量PCRmRNA定量PCR
實驗材料:CRC臨床樣本等,結(jié)直腸癌細(xì)胞系等
文章內(nèi)容
1. LncRNA RP11在CRC細(xì)胞和組織中高表達(dá)
CRC組織(癌癥1期和癌癥3期)與癌旁組織分別進(jìn)行LncRNA測序(云序可提供此服務(wù),篩選到在癌癥1期和3期都差異高表達(dá)的LncRNA---RP11。在測序樣本和32個臨床樣本組織中,通過LncRNA 定量PCR證實其在實驗組中高表達(dá)。已有結(jié)腸癌和直腸癌數(shù)據(jù)庫結(jié)果也證實這類表達(dá)趨勢。RP11在多個結(jié)直腸癌細(xì)胞系中廣泛表達(dá),并在CRC患者轉(zhuǎn)移性淋巴結(jié)組織原代培養(yǎng)的SW620細(xì)胞中高表達(dá)。
    
圖1. RP11在CRC組織和細(xì)胞中高表達(dá)
2.RP11在體內(nèi)和體外誘導(dǎo)CRC細(xì)胞散布
為進(jìn)一步闡明RP11在體內(nèi)和體外的功能機(jī)制。作者首先證實RP11過表達(dá)細(xì)胞系能夠顯著促進(jìn)細(xì)胞的遷移能力。由于此過程影響了E-Cad,F(xiàn)N和Vim等標(biāo)志物蛋白的表達(dá)量,因此可能與EMT和癌癥轉(zhuǎn)移相關(guān)。接著,作者在異種移植腫瘤的裸鼠體內(nèi)高表達(dá)RP11基因,發(fā)現(xiàn)該基因能夠促進(jìn)腫瘤的增殖。作者在裸鼠體內(nèi)通過尾部注射方式,導(dǎo)入穩(wěn)定高表達(dá)RP11的癌癥細(xì)胞,飼養(yǎng)8周后,發(fā)現(xiàn)這些細(xì)胞轉(zhuǎn)移至小鼠肝臟組織中。
   
圖2. 體外:RP11促進(jìn)癌細(xì)胞遷移
體內(nèi):RP11促進(jìn)癌組織增殖和遷移
3.轉(zhuǎn)錄因子Zeb1介導(dǎo)RP11調(diào)控CRC細(xì)胞散布
已有研究表明,LncRNA能夠通過順勢調(diào)控機(jī)制影響其周圍的轉(zhuǎn)錄本表達(dá)。因此,本研究在LncRNA RP11周圍找到了6個轉(zhuǎn)錄本,分別為NUDT12, C5orf30, PPIP5K2, GIN1, RP11-6 N13.1和CTD-2374C24。通過mRNA定量PCR證實以上轉(zhuǎn)錄本不管是在RP11高表達(dá)組以及RP11表達(dá)量最高的SW620細(xì)胞系中,都未差異表達(dá)。所以,RP11的功能機(jī)制不是通過順勢調(diào)控的模式影響的。
既然不是順勢調(diào)控引起的,那還會是什么呢?
是否是下游結(jié)合蛋白呢?
為了證實以上猜想,作者在過表達(dá)細(xì)胞中通過mRNA定量PCR技術(shù),檢測了多個與EMT相關(guān)因子的表達(dá)量,檢測結(jié)果顯示Zeb1與RP11的表達(dá)模式正相關(guān)。并且在Zeb1過表達(dá)細(xì)胞系中,證實能夠影響FN和Vim標(biāo)志物的表達(dá)量。因此,RP11的下游可能是Zeb1。
為了驗證前面的猜想,作者通過Zeb1 RIP-LncRNA PCR(云序可提供此服務(wù))RP11 Pull Down-質(zhì)譜技術(shù)(云序可提供此服務(wù)),證實Zeb1與RP11在mRNA和蛋白層面都不是直接結(jié)合的關(guān)系。
        
圖3. Zeb1可能是RP11間接的下游
4.RP11-hnRNPA2B1-mRNA復(fù)合體參與RP11調(diào)控Siah1和Fbxo45
同樣的,作者推測下游蛋白可能是Siah1和Fbxo45。在mRNA層面,通過RP11 RIP-mRNA PCR,證實兩者調(diào)控了RP11和Zeb1的表達(dá)。在蛋白層面,通過RP11 Pull Down-質(zhì)譜技術(shù)證實三者并非直接結(jié)合。
那到底是什么蛋白連接著三者呢?
為證實RP11是如何調(diào)控下游mRNA Siah1和Fbxo45,作者在前期RP11 Pull down-質(zhì)譜結(jié)果中,找到與RP11直接結(jié)合的hnRNPA2B1蛋白。hnRNPA2B1 RIP-mRNA PCR實驗證實RP11,Siah1和Fbxo45在mRNA層面是直接結(jié)合的關(guān)系。已有研究表明hnRNP2B1是一種RNA結(jié)合蛋白,在細(xì)胞核及細(xì)胞質(zhì)中廣泛分布。通過結(jié)構(gòu)分析LncRNA結(jié)構(gòu),證實其能夠與Siah1的CDS區(qū)和Fbxo45的3’UTR區(qū)結(jié)合。總的來說,RP11通過形成RP11-hnRNPA2B1-mRNA復(fù)合體調(diào)控下游mRNA Siah1和Fbxo45的表達(dá)。
         

圖4. RP11形成RP11-hnRNPA2B1-Siah1-Fbxo45復(fù)合體參與細(xì)胞遷移
5. m6A修飾參與CRC細(xì)胞中RP11表達(dá)上調(diào)機(jī)制
首先,作者懷疑RP11的高表達(dá)與DNA甲基化相關(guān),通過DNA甲基化抑制酶處理細(xì)胞后,發(fā)現(xiàn)RP11表達(dá)量不變,證實在CRC細(xì)胞中RP11表達(dá)量與DNA甲基化無關(guān)。同時,實驗也證實其與組蛋白乙酰化無關(guān)。
那到底是什么修飾調(diào)控了RP11的表達(dá)呢?
已有研究表明m6A修飾調(diào)控LncRNA的表達(dá)及功能過程。作者通過MeRIP-qPCR技術(shù)(云序可提供此服務(wù)),在三種細(xì)胞系中都證實了RP11上發(fā)生了m6A RNA甲基化修飾。并且分別過表達(dá)甲基化轉(zhuǎn)移酶METTL3和去甲基化轉(zhuǎn)移酶ALKBH5都能夠影響RP11的表達(dá)。接下來,作者旨在CRC細(xì)胞中深入研究m6A 修飾是如何調(diào)控RP11表達(dá)的?首先,筆者借助Act-D物質(zhì)抑制轉(zhuǎn)錄過程,發(fā)現(xiàn)在Mettl3過表達(dá)組中RP11的表達(dá)量沒有受到影響,原因可能是Mettl3促進(jìn)RP11在染色質(zhì)中積累,從而對RP11的表達(dá)起到了穩(wěn)定作用。m6A reader蛋白hnRNPA2B1參與了此過程。

圖5. RP11存在m6A修飾并受Mettl3和AlKBH5調(diào)控
6. m6A/RP11/Zeb1間的關(guān)系和CRC細(xì)胞體內(nèi)的進(jìn)展
通對分析大量不同分期臨床樣本表達(dá)情況表明m6A修飾先調(diào)控RP11,RP11在影響Siah1-Fbxo45/Zeb1。借助KM曲線,作者發(fā)現(xiàn)高表達(dá)RP11直腸癌患者的生存情況并不樂觀。同時,也分析了下游基因與病人其他臨床指標(biāo)間的關(guān)系。總體而言,證實了m6A/RP11/Zeb1促進(jìn)了CRC的發(fā)生發(fā)展過程。
總結(jié)
在本研究中,作者首先通過LncRNA高通量測序手段,在CRC疾病組中篩到高表達(dá)的LncRNA----RP11,并證實其能夠促進(jìn)腫瘤遷移。
隨后,作者旨在研究RP11下游結(jié)合蛋白是什么,是如何調(diào)控促進(jìn)遷移表型的。
一方面:借助LncRNA Pull Down,快速鎖定與RP11結(jié)合的蛋白就是m6A reader hnRNPA2B。通過RIP-PCR,快速找到與該蛋白結(jié)合的RNA是RP11。另一方面,借助MeRIP-qPCR,證實在3種疾病相關(guān)細(xì)胞系中RP11上都存在著m6A 修飾的情況。同時,Mettl3作為其上游促進(jìn)RP11穩(wěn)定性,從而促進(jìn)CRC的發(fā)生發(fā)展。
云序推薦技術(shù)路線
紅色字體部分的實驗,云序提供一站式服務(wù)
云序生物國內(nèi)獨家提供RNA甲基化測序一站式服務(wù)
云序生物提供比色法檢測整體m6A甲基化修飾水平、RNA甲基化測序、MeRIP-qPCR驗證、RIP和RNA Pull Down機(jī)制研究服務(wù)。RNA甲基化測序技術(shù)是真正實現(xiàn)m6A,m5C和m1A修飾,檢測分子除mRNA外,還能檢測環(huán)狀RNA,LncRNA及其他非編碼RNA。2016年至今,樣本數(shù)量累積超過5000+,MeRIP富集成功率高達(dá)98%以上。
現(xiàn)在,為解決客戶樣本量少的問題,特推出超微量MeRIP測序技術(shù),500ng總RNA既可進(jìn)行測序?qū)嶒。特殊樣本也可進(jìn)行RNA甲基化測序,如血清,血漿,外泌體和石蠟樣本。
全文鏈接:
https://molecular-cancer.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12943-019-1014-2
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