2014年10月30日發(fā)表于Lab on a Chip雜志。
單細(xì)胞分離和轉(zhuǎn)移的最新用法——單個細(xì)胞級別的分離和轉(zhuǎn)移
在當(dāng)代生物學(xué)與醫(yī)學(xué)的研究中,對單個細(xì)胞的分離一直有著很高的需求。然而傳統(tǒng)手段往往需要將大量細(xì)胞懸浮后進行分選接種。這類方法不僅費時費力,而且細(xì)胞活力也會受到影響。本篇報道中Guillaume使用FluidFM BOT建立了一種非常簡易、快速的新手段。
單細(xì)胞分離有哪些優(yōu)勢?
由于蛋白和基因的隨機表達(dá)性,即使同一基因源的細(xì)胞也可能會有所不同。因此單細(xì)胞分離對于克服細(xì)胞異質(zhì)性有著十分重要的意義。能夠讓研究者從一群混合細(xì)胞群中挑選特定感興趣的細(xì)胞,之后既可以用于單細(xì)胞分析,也可以用于單克隆擴增。這種檢測手段能夠檢測到常規(guī)細(xì)胞檢測手段所不能發(fā)現(xiàn)的細(xì)胞群中的多樣性。
另外對于細(xì)胞轉(zhuǎn)染、感染、注射的實驗來說,選取單個細(xì)胞對于建立特定基因或表達(dá)特定蛋白的克隆來說更是十分必要的。因為只有單一基因的細(xì)胞群才能最大限度的保持種群穩(wěn)定。
單細(xì)胞分離的手段
在目前的研究中,分離單細(xì)胞的手段主要是通過將細(xì)胞懸浮后做高通量篩選。其中主要使用的是流式細(xì)胞熒光分選技術(shù)(FACS)或者免疫磁性細(xì)胞分選法(MACS)。這兩種方法在臨床上目前均廣泛應(yīng)于細(xì)胞篩選。然而這兩種方法均需要使用相當(dāng)大量數(shù)量的細(xì)胞,一般在105-106數(shù)量級上。然而很多研究中,培養(yǎng)出的細(xì)胞不太容易達(dá)到這個數(shù)量級。而在少量細(xì)胞分選中,這兩種方法均面臨著極大地挑戰(zhàn)。
微流控芯片技術(shù)的出現(xiàn)讓少量細(xì)胞分選有了新的選擇,該方法主要通過熒光、磁力、流體動力流、聲光電泳、介電泳粘附等性質(zhì)進行分離。這種方法往往需要較低的細(xì)胞濃度來實現(xiàn)單細(xì)胞分離,因此在分離過程中需要嚴(yán)格控制進入微流控芯片中的細(xì)胞量。
上述的分離方法有著廣泛的應(yīng)用,但是其應(yīng)用卻也受到其本身性質(zhì)的應(yīng)用。因為無論是哪種方法都僅限于操縱懸浮溶液中的細(xì)胞。而對于本身還處在貼壁狀態(tài)的細(xì)胞卻需要將其完全解離后才能處理。對于目前的研究,絕大部分的哺乳類細(xì)胞任然需要貼壁培養(yǎng)。但是卻鮮有成熟的方法能夠用于這種分離方式。
FluidFM分離方法
流體力學(xué)顯微鏡(FluidFM)是將微量注射與原子力顯微鏡技術(shù)相結(jié)合的最新型顯微鏡。它能夠在細(xì)胞表面實現(xiàn)精準(zhǔn)的移動和fL級的流體移動控制。因此在技術(shù)層面上擁有非常優(yōu)越的單細(xì)胞操縱能力。
因此Guillaume等首先對FluidFM對單細(xì)胞噴灑胰酶的消化能力進行了考察。他們將胰酶噴灑在細(xì)胞上方,再觀測細(xì)胞消化程度隨時間的變化。通過他們的研究,他們研究了壓力與淋撒體積之間的關(guān)系、胰酶作用時間與消化范圍之間的關(guān)系、胰酶淋撒壓力與消化面積之間的關(guān)系如圖1所示。
圖1,胰酶釋放控制對細(xì)胞消化的影響。A)胰酶釋放兩樣與壓力脈沖參數(shù)之間的關(guān)系;B)胰酶作用時間與消化細(xì)胞面積之間的關(guān)系(200mbar,10s);C)細(xì)胞消化面積與時間之間的關(guān)系(200mbar,10s);D)最終消化面積與施加壓力的對應(yīng)關(guān)系。
之后他們嘗試對單個Hela細(xì)胞進行了消化,通過對壓力和作用時間的控制,可做到僅將目標(biāo)細(xì)胞分離但不對周圍任何細(xì)胞產(chǎn)生影響,如圖2所示。
圖2 單個細(xì)胞可控消化 A)將HeLa種在載玻片并對其中一個細(xì)胞進行了mRFP-actin轉(zhuǎn)染,在RFP下顯示紅色熒光。B)在細(xì)胞表面噴灑胰酶消化;C)觀測到細(xì)胞成功消化。
隨后他們對含有mRFP-actin的Hela從大量Hela細(xì)胞中進行了分離,并取得了成功,如圖3A。為了一進步驗證這種方法的可靠性,他們再次對這個細(xì)胞新型一次消化并轉(zhuǎn)移,細(xì)胞仍然存活,如圖3B所示。之后他們用這種方法對普通HeLa細(xì)胞進行了分離,并且觀察了它們的存活狀態(tài)如圖3C-E所示,測定存活率可高達(dá)97%。
圖3 單細(xì)胞分離 A)對含有mRFP-actin的細(xì)胞從HeLa細(xì)胞群分離;B)對單個mRFP-actin HeLa細(xì)胞進行分離;C-E)對分離后的HeLa細(xì)胞進行了FDA/PI染色。并種在三種不同的微孔板中。(紅色為死亡細(xì)胞,綠色為存活細(xì)胞)。
使用FluidFM分選細(xì)胞
而對于懸浮細(xì)胞的分選工作,F(xiàn)luidFM也能夠輕松應(yīng)對。首先Guillaume對單個細(xì)胞進行了轉(zhuǎn)移實驗。經(jīng)過實驗發(fā)現(xiàn)以ΔP = -100 mbar條件對細(xì)胞進行吸取,即可將細(xì)胞吸入移液槍中。隨后將探針轉(zhuǎn)移至新的微孔中再以ΔP = +1000 mbar作用1-2s即可將細(xì)胞吐出。在之后的培養(yǎng)中也可觀測到細(xì)胞貼壁生長,說明這種分選對細(xì)胞沒有損傷,如圖4A所示。
而后他們對細(xì)胞進行了連續(xù)分選,將形態(tài)相似的細(xì)胞放入同一小室,如圖4B所示。以及根據(jù)熒光標(biāo)記不同分別放入不同小室,如圖4C所示。使用這種方法分選一樣簡單可靠。
圖4細(xì)胞分選 A)對活細(xì)胞進行分選并記錄圖像。在分選后1小時,細(xì)胞開始貼壁生長;B)連續(xù)對細(xì)胞進行分選,并放置到同一個小孔中。C)根據(jù)染色標(biāo)記將不同染色的細(xì)胞分類放置在不同小室中。
總結(jié)
FluidFM是一種強大的分離單細(xì)胞的強大手段,通過使用光學(xué)手段甄選出感興趣的細(xì)胞后,就能夠使用FluidFM技術(shù)對其分離,并且不會對細(xì)胞造成損傷,能夠保證所分離的細(xì)胞最大限度的存活。這種方法的應(yīng)用將會給生物和醫(yī)學(xué)研究提供極大地幫助,尤其對于單克隆細(xì)胞群的建立或單細(xì)胞的下游分析。
多功能單細(xì)胞顯微操作系統(tǒng)——瑞士 Cytosurge FluidFM BOT
產(chǎn)品簡介:
多功能單細(xì)胞顯微操作系統(tǒng)--FluidFM BOT,是將原子力系統(tǒng)、微流控系統(tǒng)、細(xì)胞培養(yǎng)系統(tǒng)為一體的單細(xì)胞操作系統(tǒng)。主要功能包括單細(xì)胞注射、單細(xì)胞提取以及單細(xì)胞分離。
FluidFM BOT極大的方便了單細(xì)胞水平的研究,尤其適合應(yīng)用于精準(zhǔn)醫(yī)療、單細(xì)胞生物學(xué)、單細(xì)胞質(zhì)譜、單細(xì)胞基因編輯、藥物研發(fā)等領(lǐng)域。
注射、提取、分選一體化的單細(xì)胞操縱解決方案
參考文獻:
1. D. Wang and S. Bodovitz, Trends Biotechnol, 2010, 28, 281-290.
2. T. Graf and M. Stadtfeld, Cell Stem Cell, 2008, 3, 480-483.
3. L. A. Herzenberg, D. Parks, B. Sahaf, O. Perez, M. Roederer and L. A. Herzenberg, Clinical Chemistry, 2002, 48,1819-1827.
4. J. Autebert, B. Coudert, F. C. Bidard, J. Y. Pierga, S. Descroix, L. Malaquin and J. L. Viovy, Methods, 2012, 57,297-307.
5. A. Y. Fu, C. Spence, A. Scherer, F. H. Arnold and S. R. Quake, Nature Biotechnology, 1999, 17, 1109-1111.
6. A. Wolff, I. R. Perch-Nielsen, U. D. Larsen, P. Friis, G. Goranovic, C. R. Poulsen, J. P. Kutter and P. Telleman,Lab on a Chip, 2003, 3, 22-27.
7. J. J. Chalmers, M. Zborowski, L. P. Sun and L. Moore, Biotechnology Progress, 1998, 14, 141-148.
8. L. Saias, J. Autebert, L. Malaquin and J. L. Viovy, Lab on a Chip, 2011, 11, 822-832.
9. A. A. S. Bhagat, H. W. Hou, L. D. Li, C. T. Lim and J. Y. Han, Lab on a Chip, 2011, 11, 1870-1878.
10. A. Jain and L. L. Munn, Lab on a Chip, 2011, 11, 2941-2947.
11. S. S. Shevkoplyas, T. Yoshida, L. L. Munn and M. W. Bitensky, Analytical Chemistry, 2005, 77, 933-937.
12. M. Kumar, D. L. Feke and J. M. Belovich, Biotechnology and Bioengineering, 2005, 89, 129-137.
13. H. S. Moon, K. Kwon, S. I. Kim, H. Han, J. Sohn, S. Lee and H. I. Jung, Lab on a Chip, 2011, 11, 1118-1125.
14. J. S. Sun, Y. D. Gao, R. J. Isaacs, K. C. Boelte, P. C. Lin, E. M. Boczko and D. Y. Li, Analytical Chemistry, 2012,84, 2017-2024.
15. S. Nagrath, L. V. Sequist, S. Maheswaran, D. W. Bell, D. Irimia, L. Ulkus, M. R. Smith, E. L. Kwak, S.Digumarthy, A. Muzikansky, P. Ryan, U. J. Balis, R. G. Tompkins, D. A. Haber and M. Toner, Nature, 2007, 450,1235-U1210.
16. T. F. Didar and M. Tabrizian, Lab on a Chip, 2010, 10, 3043-3053.
17. A. Adamo and K. F. Jensen, Lab on a Chip, 2008, 8, 1258-1261.
18. Y. Chen, B. Zhang, H. Feng, W. Shu, G. Y. Chen and J. F. Zhong, Lab on a Chip, 2012, 12, 3930-3935.
19. A. W. Caron, B. Massie and D. D. Mosser, Methods Cell Sci, 2000, 22, 137-145.
20. E. Townes-Anderson, R. S. St. Jules, D. M. Sherry, J. Lichtenberger, M. Hassanain and Molecular Vision, 1998, 4.
21. A. Menachery, D. Graham, S. M. Messerli, R. Pethig and P. J. S. Smith, Iet Nanobiotechnology, 2011, 5, 1-7.
22. D. M. Graham, M. A. Messerli and R. Pethig, Biotechniques, 2012, 52, 39-43.
23. K. Kim, X. Y. Liu, Y. Zhang and Y. Sun, Journal of Micromechanics and Microengineering, 2008, 18, 055013.
24. E. B. Steager, M. Selman Sakar, C. Magee, M. Kennedy, A. Cowley and V. Kumar, The International Journal ofRobotics Research, 2013, 32, 346-359.
25. M. Schindler, M. L. Allen, M. R. Olinger and J. F. Holland, Cytometry, 1985, 6, 368-374.
26. A. Mayer, M. Stich, D. Brocksch, K. Schutze and G. Lahr, Methods Enzymol, 2002, 356, 25-33.
27. Y. Wang, C. Phillips, W. Xu, J.-H. Pai, R. Dhopeshwarkar, C. E. Sims and N. Allbritton, Lab on a Chip, 2010, 10,2917-2924.
28. N. C. Dobes, R. Dhopeshwarkar, W. H. Henley, J. M. Ramsey, C. E. Sims and N. L. Allbritton, Analyst, 2013, 138,831-838.
29. S. Guo, Y. Wang, N. Allbritton and X. Jiang, Applied Physics Letters, 2012, 101, 163703.
30. A. Meister, M. Gabi, P. Behr, P. Studer, J. Voros, P. Niedermann, J. Bitterli, J. Polesel-Maris, M. Liley, H.Heinzelmann and T. Zambelli, Nano Letters, 2009, 9, 2501-2507.
31. O. Guillaume-Gentil, E. Potthoff, D. Ossola, P. Dörig, T. Zambelli and J. A. Vorholt, Small, 2013, n/a-n/a.
32. P. Stiefel, F. I. Schmidt, P. Dörig, P. Behr, T. Zambelli, J. A. Vorholt and J. Mercer, Nano Letters, 2012, 12, 4219-4227.
33. E. Potthoff, O. Guillaume-Gentil, D. Ossola, J. Polesel-Maris, S. LeibundGut-Landmann, T. Zambelli and J. A.Vorholt, Plos One, 2012, 7, e52712.
34. J. E. Sader, J. W. M. Chon and P. Mulvaney, Rev Sci Instrum, 1999, 70, 3967-3969.
35. C. Wallis, B. Ver and J. L. Melnick, Experimental Cell Research, 1969, 58, 271-282.
36. P. Dorig, P. Stiefel, P. Behr, E. Sarajlic, D. Bijl, M. Gabi, J. Voros, J. A. Vorholt and T. Zambelli, Applied PhysicsLetters, 2010, 97.
37. D. L. Elbert and J. A. Hubbell, Chem Biol, 1998, 5, 177-183.
38. R. Ogaki, O. Z. Andersen, G. V. Jensen, K. Kolind, D. C. E. Kraft, J. S. Pedersen and M. Foss,Biomacromolecules, 2012, 13, 3668-3677.
39. J. Voros, J. J. Ramsden, G. Csucs, I. Szendro, S. M. De Paul, M. Textor and N. D. Spencer, Biomaterials, 2002, 23,3699-3710.
相關(guān)產(chǎn)品及鏈接:
Quantum Design中國子公司
座機:010-85120280 | 手機:13021034795
郵箱:info@qd-china.com