综合图区亚洲网友自拍|亚洲黄色网络|成人无码网WWW在线观看,日本高清视频色视频kk266,激情综合五月天,欧美一区日韩一区中文字幕页

English | 中文版 | 手機版 企業(yè)登錄 | 個人登錄 | 郵件訂閱
當前位置 > 首頁 > 技術(shù)文章 > 通過溫度內(nèi)標提高高分辨熔解曲線中純合子檢測的靈敏度

通過溫度內(nèi)標提高高分辨熔解曲線中純合子檢測的靈敏度

瀏覽次數(shù):3634 發(fā)布日期:2010-10-13  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負

摘要

應(yīng)用高分辨率熔解曲線技術(shù)進行基因分型不僅簡單而且有效。基于熔解曲線的分析方法中,探針法是進行基因分型的金標準,能夠全面的檢測匹配的目的等位基因。小片段擴增法是一種不需要設(shè)計探針進行基因分型的方法。由于異源雙鏈的存在,雜合子很容易檢測,而這很大程度上改變?nèi)劢廪D(zhuǎn)化的峰形。純合子基因分型中G/C或A/T的改變是最難檢測的,因為它們的等位基因有相似的Tm值。那些稱為中性純合子的堿基對使用小片段法是很難區(qū)分。此外,純合子難區(qū)分也受樣品與樣品間溫度的變化,緩沖液和體積的限制。無論多么精確的儀器,相關(guān)的變化可能是顯著的,所以需要一種方法來減少這種變化并且改善小片段基因分型。而使用特異性內(nèi)標就可以克服這些限制。

背景

人工合成的寡核苷酸內(nèi)標和互補序列包含相同的分子濃度。在內(nèi)標存在的情況下,使用普通96孔板PCR儀,并添加LC Green® Plus染料進行PCR反應(yīng)。PCR反應(yīng)完成后將PCR產(chǎn)物放入Lightsanner儀器,在55℃到97℃進行熔解曲線分析。內(nèi)標的溶解識別通過每個樣品的熒光數(shù)據(jù)進行校準;蛐屯ㄟ^測序進行驗證。通過測量每個樣品組相應(yīng)的基因型的Tm值峰間的距離來估算校正前后的純合基因型檢測的錯誤率。當樣品的Tm值與錯誤組的Tm值接近時,錯誤將被檢測到。

結(jié)果

通過使用不同微孔板和PCR模板驗證,使用溫度內(nèi)標校準后,純和基因型在中性單核苷酸多態(tài)性堿基對檢測的靈敏度提高了90%到99%以上。使用溫度內(nèi)標后Tm值標準較低大約0.056到0.027℃。

結(jié)論

內(nèi)標提高小片段內(nèi)的純和基因型G/C和T/A堿基的改變。該研究被國家衛(wèi)生部以下部分津貼支持:R44DK069106 、R44HD053215 to SFD 、 R42GM072419 和R42GM073396 to CTW。

背景

變性或熔解時,由于核酸固有特性的不同使得基因型信號會發(fā)生變化。基于探針的基因分型在相關(guān)的大量的等位基因特異性在溫度變化幾度上有較大的優(yōu)勢。高分辨率熔解曲線提供了整個雙鏈的熔解圖并且可以去掉探針。此外,每個實驗當整個擴增子被監(jiān)測時,獲得的堿基審問數(shù)量增加達20倍。由于非常相似的熔解圖和熔解溫度,使純和基因型在沒有探針的情況下檢測難度增加。小片段提供了一個簡單的基因分型方案。
值得注意的是,與大片段擴增子相比小片段擴增能夠更好的進行純合子檢測,因為特異基因型Tm值變化將更大。但是,某些因素可以影響大量純合子的分離。從堿基類型Tm值變化到設(shè)備變化和樣品和樣品的不同都能影響基因分型。溫度內(nèi)標可以減小這些變化,固定熔解轉(zhuǎn)變和提高基因分型的靈敏度。當小片段引物僅僅對側(cè)翼的SNP匹配時,將會得到最好的結(jié)果。

方法

PCR反應(yīng)體系10 μL,反應(yīng)體系中加入1X LightScanner高靈敏度Mastermix,該Mastermix包含熱啟動酶,鎂離子緩沖液,其它成分和核酸校準,該PCR的熔解區(qū)間大約在62C和92C。體系中包括0.10μM或0.15 μM的引物,人基因組DNA10-15 ng。PCR循環(huán)條件如下:95C預(yù)變性2min,94C/30s,64-67C/30s(根據(jù)實驗而定)包含退火和延伸,45個循環(huán)。最后的退火條件為28C/30s。所有DNA樣品的基因型通過探針法檢測。
熔解在96孔板的LightScanner設(shè)備上進行,數(shù)據(jù)采集從55-97C。熔解后數(shù)據(jù)校準首先使用接近熒光數(shù)據(jù)的平滑線條,接下來,將使用該數(shù)據(jù)的線條插值峰計算Tm值。這一調(diào)整過程可以校準每個擴增子的熔解峰,以達到最小的變化。數(shù)據(jù)重新使用LightScanner軟件進行分析。擴增子Tm值附近的溫度區(qū)域用于分析(有或沒有以前內(nèi)標校準)同時以衍生峰顯示。

結(jié)果

使用溫度內(nèi)標前的完整熔解圖見圖1,圖中標出了從低溫內(nèi)標到高溫內(nèi)標的熔解圖,中間為擴增子的熔解圖。

圖1. 衍生的熔解曲線顯示了內(nèi)標和擴增子的熔解峰。內(nèi)標的熔解峰在左右兩側(cè)。94個熔解圖產(chǎn)生于獨立的PCR反應(yīng),熔解峰大約出現(xiàn)在76C。內(nèi)標分子沒有校準,純合子的峰沒有完全分開。中間最窄的和最高的峰是A/A(藍色)和T/T(紅色),它是CPS1 A/T多態(tài)性的純和基因型。先前基于探針的基因分型顏色已經(jīng)增加,不是基于這個小片段熔解數(shù)據(jù)。中間的另一個峰是A/T雜合子峰。插圖顯示的是放大的熔解峰。
                       

圖2. 使用溫度內(nèi)標能夠改善衍生的熔解曲線。熒光圖顯示了CPS1、OTC,MSH2和PAH突變94個獨立的PCR反應(yīng)。雙峰CPS1雜合子在校準前很容易被區(qū)分出來(圖2a)。相反,OTC雜合子(圖2c)僅顯示了一條主要的峰,更多的峰在校準前很難區(qū)分。使用溫度內(nèi)標后的基因型數(shù)據(jù)分更加容易,重復(fù)反應(yīng)中沒有發(fā)現(xiàn)出現(xiàn)不同的基因型。

表1  比較每個目的基因使用溫度內(nèi)標前后四個重復(fù)的Tm。在所有情況下,校準后差異降低?梢钥闯,校準后標準差和非感興趣區(qū)域差異都降低。

                                                    表1.校準對Tm值影響的統(tǒng)計

表1. 每個重復(fù)盤包含了相同設(shè)置的47個基因組DNA樣品(94個獨立的PCR反應(yīng));谒屑兒献余徑鼌(shù)預(yù)測的Tm列于表中。雜合子Tm值不包含在內(nèi),因為它們通常在我們的系統(tǒng)中不用校準就可以分型。在某種程度上,由于LCGreen染料的存在,穩(wěn)定的DNA雜交得到的實際Tm值要比理論值高5-7℃;蚍中蜎]有調(diào)準是指未校準和標定Tm值有顯著差異。(p<0.001)。
對于CPS1和OTC PCR產(chǎn)物,分析預(yù)測近鄰值未發(fā)現(xiàn)純合子T/T和A/ATm的不同。然而,兩個靶基因,即使沒有校準, 純合子群體Tm值也是不同的。盡管,從看到的Tm值范圍上看,校準前純合子T/T和A/A重疊。校準后,純合子T/T和A/A沒有重疊,說明純合子已經(jīng)區(qū)分開了(表1)。對于MSH2和PAH小片段產(chǎn)物,鄰近值分析預(yù)測純和擴增子之間有小的Tm值差異。校準前分析純合子間的變化顯示不能清楚的區(qū)分基因型。校準后,純合子基因型的錯誤估測見表2。

                                               表2.校準提高純合子檢測靈敏度

表2. 實驗數(shù)據(jù)顯示了校準對靈敏度的影響。可以看出校準后檢測靈敏度提高10%。實驗中,正確的估計基于近似的Tm值, 而不是Lightsanner軟件預(yù)測。每個目標小片段的錯估預(yù)測將顯示出來。
*OTC T/A突變的rs數(shù)未標出。

軟件自動校準

隨后的工作是用Lightsanner 軟件自動對相似的圖像的樣品進行分組。這種圖形的基因分型不需要對Tm值了解。對在這種基于Tm值的基因分型已經(jīng)經(jīng)過證實,這種基于圖形的分型受益于溫度內(nèi)標的使用。圖3可以看出通過校準CPS1的小片段產(chǎn)物得到改善。

圖3. 溫度內(nèi)標能夠改善Lightsanner軟件自動校準。下面的顯示板顯示了歸一化后的熔解曲線和不同屏幕截圖。此外,從分組情況可以看出,屏幕上左方的盒子的紅蘭灰顏色在1-6列和7-12列是重復(fù)的模式。在這個資料組校準前得到的靈敏度是92%,校準后得到的靈敏度是100%。

校準降低Tm值對反應(yīng)量的依賴性

Tm值依靠反應(yīng)量預(yù)測,因為在反應(yīng)板中更多的Mastermix或礦物油將阻礙熱量的傳遞。這將提高顯示的Tm值。我們使用OTC小片段測試Tm值對Mastermix反應(yīng)體積的依賴。從7.0 μL到12.5 μL,以0.5 μL遞增(廠家推薦為10μL)。Tm值對反應(yīng)量的依賴性在校準前是很大的(slop=+0.069,R2=0.078),但在校準后(slope=-0.001,R2=0.066),見圖4。校準可以有效降低量對Tm值的影響。

 

圖4.校準前后Mastermix體積對Tm值的影響。擴增OTC基因的47個樣品評估C.299-8T>A突變。該反應(yīng)添加1 μL DNA模板,采用7.5 1 μL到12.5 1 μL以0.5 μL遞增的Mastermix。A板顯示的是校準前重要突變的熔解圖。B板顯示的是校準后減少的突變。C板顯示的是35T/T純合子樣品校準前Tm值對Mastermix的量依賴性。校準后可觀察到兩種情況:1)誤差線將壓縮,突變顯示減少2)斜率和R2值將大大減少,說明Tm值和Mastermix的量關(guān)系不大。對于每個反應(yīng)在板子的不同方位分布,是為了降低Tm值對樣品位置的依賴。

結(jié)論

小片段熔解是一種簡單的基因分型方法,它不需要對樣品進行PCR后處理。盡管較小的片段能夠很好的進行基因分型。但是,沒有溫度內(nèi)標的純合子基因分析的成功不僅取決于高分辨率的數(shù)據(jù)采集,而且取決于樣品間buffer、體積和提取的均一性。有效的校準可以消除這些混合因素的變化,以便于更好的相對穩(wěn)定的進行純合子基因分型。

參考文獻
1. Dodge, A., Turcatti, G., Lawrence, I., de Rooij, N.F., Verpoorte, 1. E., (2004) A microfluidic platform using molecular beacon-based temperature calibration for thermal dehybridization of surface-bound DNA. Anal Chem. 76, 1778-1787.

2. Nellaker, C., Wallgren, U., Karlsson, H. (2007) Molecular beacon-2. based temperature control and automated analyses for improved resolution of melting temperature analysis using SYBR I green chemistry. Clin Chem. 53, 98-103.

3 .Liew, M., Seipp, M., Durtschi, J., Margraf, R.L., Dames, S., 3. Erali, M., Voelkerding, K., Wittwer, C. (2007) Closed-tube SNP genotyping without labeled probes/a comparison between unlabeled probe and amplicon melting. Am. J. Clin. Pathol. 127, 341-348

4. Seipp, M. T., Durtschi, J. D., Liew, M. A., Williams, J., 4. Damjanovich, K., Pont-Kingdon, G., Lyon, E., Voelkerding, K. V., Wittwer, C. T. (2007) Unlabeled Oligonucleotides as Internal Temperature Controls for Genotyping by Amplicon Melting. J Mol Diagn., 9, 284-9.

來源:北京思博全科技有限公司
聯(lián)系電話:010-63877317
E-mail:hli@spectron.com.cn

用戶名: 密碼: 匿名 快速注冊 忘記密碼
評論只代表網(wǎng)友觀點,不代表本站觀點。 請輸入驗證碼: 8795
Copyright(C) 1998-2024 生物器材網(wǎng) 電話:021-64166852;13621656896 E-mail:info@bio-equip.com