實時熒光定量PCR（Quantitative Real-time PCR）是一種在DNA擴增反應(yīng)中，以熒光化學物質(zhì)測每次聚合酶鏈式反應(yīng)（PCR）循環(huán)后產(chǎn)物總量的方法。通過內(nèi)參或者外參法對待測樣品中的特定DNA序列進行定量分析的方法。

       在常做的QPCR反應(yīng)體系中，加入過量SYBR熒光染料，SYBR熒光染料特異性地摻入DNA雙鏈后，發(fā)射熒光信號，而不摻入鏈中的SYBR染料分子不會發(fā)射任何熒光信號，從而保證熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加完全同步。

在Real-timePCR中，模板定量有兩種策略，相對定量和絕對定量。
 
         相對定量是用于測定兩個或多個不同樣品中靶基因量的差異，得到的數(shù)據(jù)是目的基因在各樣本中含量的相對比例。即將實驗樣本中靶基因的Ct值與對照樣本的Ct值進行比較，結(jié)果用實驗樣本中靶基因量與對照樣本中靶基因量的比值或差異倍數(shù)來表示。該方法在qPCR定量檢測RNA水平中最常見，研究生理變化對基因表達水平的影響。

        絕對定量常用于精確計算初始模板中目的基因的濃度，比如測定血液樣品中病毒顆粒數(shù)（DNA或RNA）,細胞中基因的拷貝數(shù)等，得到的數(shù)據(jù)是單個樣本的定量描述，不依賴于其他樣本。理想情況下，Ct值與模板起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系，這種關(guān)系表現(xiàn)為標準曲線，絕對定量的檢測即根據(jù)標準曲線對未知樣品進行的定量。



一、實驗方法
1.RNA提取
（1）目前最常用的RNA提取方法就是trizol法，具有極強的裂解能力，可以在短時間內(nèi)充分裂解細胞或者組織樣本，保持RNA的完整性，有效抑制RNA的降解；目前市面上還有很多成品的常用RNA提取試劑盒，均是如此原理。
2.具體步驟
（1）拿出凍存組織或者新鮮組織，稱重，充分液氮研磨；
（2）加入1ml trizol或者其他成品裂解液，充分混勻后放置震蕩搖勻上5-10min，使樣本充分裂解；
（3）4℃，13000rpm離心5min后，吸取上清轉(zhuǎn)移至新1.5ml離心管中；
（4）加入預(yù)冷氯仿后，迅速劇烈震蕩30s-60s，靜置5-10min后，4℃離心；
（5）此時離心管中液體分為三層，吸取最上層水溶液轉(zhuǎn)移新離心管中；
（6）加入等體積異丙醇，充分混勻后，靜置5-10min后，4℃離心；
（7）棄上清，對管底白色沉淀加入預(yù)冷75%乙醇，混勻清洗后，4℃離心，棄上清；
（8）吹干沉淀后，加入DEPC水溶液，測濃度，-80攝氏度保存。
3.RNA濃度測量
一般使用nanodrop就可以測量，觀察260/280在1.8-2即可；此外也可以進行瓊脂糖凝膠電泳檢測，若出現(xiàn)明顯拖帶RNA可能降解；
4.反轉(zhuǎn)錄
（1）RNA自身是無法作為PCR反應(yīng)的模板的，需要先將其反轉(zhuǎn)錄為cDNA，在進行QPCR檢測；
（2）通常根據(jù)RNA濃度，每個樣本量取固定3ug/5ug的RNA進行反轉(zhuǎn)錄，加入反轉(zhuǎn)錄試劑盒中配套的試劑，在固定溫度進行；得到的cDNA稀釋同倍數(shù)后，-80℃保存。
5.實時熒光定量PCR檢測
（1）常規(guī)認為相同RNA的量進行的反轉(zhuǎn)錄，得到的cDNA不需要調(diào)整濃度，在上機檢測PCR時取相同體積cDNA進行，一般取2-4ul均可。



（2）如果是做絕對定量，則上述需要增加標準品即可；如果是做常規(guī)mRNA，內(nèi)參插管選擇actin或者GAPDH即可；若檢測的是特殊的micRNA等，內(nèi)參常規(guī)使用U6。
（3）常見案例