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AAV在中樞神經(jīng)系統(tǒng)研究中的注射方法

瀏覽次數(shù):3926 發(fā)布日期:2018-6-20  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

 中樞神經(jīng)系統(tǒng)是由許多不同類(lèi)型的細(xì)胞構(gòu)成的,包括神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞。其中,根據(jù)不同的形態(tài)、大小和功能,神經(jīng)元可以分為很多類(lèi)型。而神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞主要包括星形膠質(zhì)細(xì)胞、少突膠質(zhì)細(xì)胞和小膠質(zhì)細(xì)胞。

 AAV在中樞神經(jīng)系統(tǒng)(central nervous system,CNS)中的應(yīng)用包括很多方面,比如在神經(jīng)系統(tǒng)疾病和中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷中的研究和治療,以及某些神經(jīng)系統(tǒng)疾病模型的局部轉(zhuǎn)基因研究等。

 由于AAV的血清型、轉(zhuǎn)錄因子和注射位點(diǎn)的不同,AAV在大腦中介導(dǎo)的轉(zhuǎn)基因通常不是均一的,這種不均一表現(xiàn)在時(shí)間和空間(不同細(xì)胞種類(lèi)的特異性)方面。除此之外,AAV病毒制備的技術(shù)(影響純度和滴度)、病毒注射的方法也會(huì)大大影響到AAV介導(dǎo)的轉(zhuǎn)基因的效率。值得注意的是,AAV感染后所使用的檢測(cè)方法和目的蛋白的自然屬性(胞內(nèi)蛋白/分泌蛋白/轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白)等因素也會(huì)影響到最終對(duì)轉(zhuǎn)基因效果的評(píng)價(jià)。組織學(xué)染色,比如免疫組化或單/雙免疫熒光可以幫助觀察轉(zhuǎn)基因表達(dá)的分布特征,但卻不能量化評(píng)價(jià)病毒感染的效率。對(duì)腦提取物進(jìn)行ELISA或RT-qPCR可以定量轉(zhuǎn)基因效率。

事實(shí)上,通過(guò)將AAV直接注射大腦或大腦外圍區(qū)域(肌肉或靜脈注射)能夠產(chǎn)生不同的轉(zhuǎn)導(dǎo)模式。已經(jīng)有文獻(xiàn)證明AAV9可在小鼠/貓和非人靈長(zhǎng)類(lèi)動(dòng)物中穿過(guò)血腦屏障。并且,AAV載體可以從肌肉逆行運(yùn)輸?shù)郊顾柽\(yùn)動(dòng)神經(jīng)元(27-30)。簡(jiǎn)單來(lái)說(shuō),就是運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的軸突接觸到AAV病毒,并將其傳遞給胞體。實(shí)驗(yàn)表明,AAV1的逆行效率較高。本文主要介紹幾種在神經(jīng)科學(xué)研究中常用的AAV注射方法。

     

 

一.通過(guò)立體定位儀直接向腦內(nèi)注射AAV(需佩戴手套和口罩)

  目前,成年雌雄大鼠和小鼠的大腦圖譜都可通過(guò)文獻(xiàn)和書(shū)籍獲得。立體定位手術(shù)時(shí),顱骨上最常用的注射參照點(diǎn)就是前囪,也就是中矢狀冠狀縫的交叉點(diǎn)。具體的注射部位,可依據(jù)研究的需要而確定。微創(chuàng)技術(shù)可以避免炎癥,以降低轉(zhuǎn)導(dǎo)細(xì)胞的排斥反應(yīng)。

  1.安裝定位儀: 在生物安全柜中安裝立體定位框架和工具。

  2.準(zhǔn)備并吸滿(mǎn)病毒懸液:在噴嘴出安裝超微量注射器,把針尖浸在準(zhǔn)備好的AAV病毒懸液中,并使用“快速反向”功能吸滿(mǎn)。

  3.排除空氣:使用“快速正向”功能檢查泡沫,知道在針頭處出現(xiàn)一滴液體。用浸泡在0,1M NaOH溶液中的棉花輕輕拭去針尖的液滴。

  4.麻醉大鼠:選取250g左右的大鼠,通過(guò)25 G 1毫升注射器注射甲苯噻嗪(10mg/kg)和氯胺酮(100mg/kg)。

  5.固定大鼠:首先將大鼠的下切牙固定在齒棒上,然后用耳棒通過(guò)大鼠的外耳道進(jìn)行固定,并固定頭部。檢查顱骨是否是水平的,并確保兩個(gè)眼睛在同一水平線(xiàn)上。在每只眼睛中滴入一滴聚丙烯酸,以防麻醉造成眼睛干燥。調(diào)整光源對(duì)準(zhǔn)大鼠的頭部,剃去頭部的毛并用酒精消毒清潔。

  6.切口并暴露前囪點(diǎn):用刀片在頭皮上前后軸切口,并用鉗子保持刀口開(kāi)放狀態(tài),用棉球吸去血。去除骨膜以便看到前囪。

  7.暴露λ點(diǎn):調(diào)整齒夾的垂直位置,使得前囪點(diǎn)和λ點(diǎn)的高度一致,如果λ點(diǎn)的位置難以看到,讓切口處干燥5-10min后再尋找。

  8.確定前囪點(diǎn)的AP和ML坐標(biāo)和目標(biāo)注射點(diǎn)的距離:將針垂直于前囪點(diǎn),并記錄AP和ML坐標(biāo)的數(shù)值。參考大鼠腦圖譜的標(biāo)記的目標(biāo)注射部位的AP和ML值,計(jì)算前囪點(diǎn)與目標(biāo)注射部位的AP和ML坐標(biāo),并做標(biāo)記。

  9.確定前囪點(diǎn)的DV坐標(biāo)和目標(biāo)注射點(diǎn)的距離:用鉆頭在顱骨上打洞,注意不要損傷硬腦膜。把針尖置于硬腦膜的表面并測(cè)量出前囪點(diǎn)DV的坐標(biāo)。計(jì)算目標(biāo)注射部位的DV坐標(biāo)。

  10.注射AAV:緩慢垂直移動(dòng)注射器針尖到達(dá)目標(biāo)注射部位,慢慢地將針插入并靜置5min。然后,以0.2 μ l/min的速度,將2μL的病毒懸液注射入腦。結(jié)束后,需要靜置5min再將注射器緩慢移出。

  11.縫合并做標(biāo)記:縫合頭皮,并做耳標(biāo)。

  12.大鼠術(shù)后的護(hù)理:將大鼠單獨(dú)放在一個(gè)干凈的籠子里,直到醒來(lái)。第一天需要讓大鼠在獨(dú)立的通風(fēng)籠中度過(guò)。

  13.處理針頭和手術(shù)材料:先用0.1 M NaOH or 10%氯漂白劑清洗手術(shù)工具,并用蒸餾水沖洗,最后用酒精沖洗。

                                

 

 

 圖1:腦立體定位儀。(1)耳棒;(2)齒棒;(3)注射器支架;(4)設(shè)置垂直坐標(biāo)的螺釘;(5)設(shè)置橫向

坐標(biāo)的螺釘;(6)設(shè)置前后坐標(biāo)的螺釘;(7)垂直游標(biāo)刻度;(8)側(cè)游標(biāo)刻度;(9)前后游標(biāo)刻度。

二.靜脈注射AAV9

(一)新生小鼠的顳靜脈注射

  1. 調(diào)整光源位置以便照亮顯微鏡區(qū)域,中等強(qiáng)度的光照最佳。

  2. 將一個(gè)新生幼鼠直接置于冰上1-3min,進(jìn)行麻醉。

  3. 當(dāng)動(dòng)物在冰上麻醉時(shí),在注射器中注滿(mǎn)AAV病毒。體積不應(yīng)超過(guò)100μL,體積在30到100μL之間不會(huì)影響轉(zhuǎn)導(dǎo)效率。

  4. 在顯微鏡下觀察幼鼠。用不持注射器的手的食指放在幼鼠口鼻處,中指放在耳芽處,以便拉伸幼鼠的皮膚,可見(jiàn)顳淺靜脈。

  5. 確定顳淺靜脈。可通過(guò)皮膚看到位于耳芽前部,周?chē)?xì)血管下部,有一條隱約可見(jiàn)的靜脈血管,從背部到腹部,匯入頸靜脈,這就是顳淺靜脈。

  6. 注射器針尖斜面插入顳靜脈?梢钥吹结樇庑泵嫱ㄟ^(guò)皮膚的以后被血填充。輕壓注射器,并注意幼鼠臉側(cè)面的靜脈變白。

(二)成年小鼠的尾靜脈注射

  1. 確保動(dòng)物進(jìn)入約束裝置。

  2. 用酒精擦拭尾巴。

  3. 把尾巴置于溫水中。

  4. 將注射器吸滿(mǎn)AAV病毒懸液。

  5. 將注射器插入尾靜脈中。如果沒(méi)有瞄準(zhǔn),可以靠近尾巴根部再試一次。

  6. 注射病毒溶液。體積控制在100-250μL。

  7. 將小鼠放回籠內(nèi)。

                                 

 

                                              圖2:動(dòng)物約束裝置

 

三.AAV從周?chē)窠?jīng)到目標(biāo)神經(jīng)元的逆行運(yùn)輸

  1.選取250g左右的大鼠,通過(guò)25 G 1毫升注射器注射甲苯噻嗪(10mg/kg)和氯胺酮(100mg/kg)。

  2.將麻醉后的大鼠置于無(wú)菌布上。在每只眼睛中滴入一滴聚丙烯酸,以防麻醉造成眼睛干燥。

  3.刮去肌肉附近的毛發(fā)并用酒精清潔。用刀片在皮膚上切一個(gè)小口,并用鉗保持刀口開(kāi)放,以暴露肌肉。

  4.使用超微量注射器吸入AAV病毒懸液,并排除空氣和氣泡。

  5.擠壓肌肉以使肌肉建立起一定的厚度,并把針尖置于肌肉上。

  6.緩緩插入針尖,并在肌肉中靜置1min。然后以10μl/min的速度注入10-20μl的AAV懸液。

  7.注射結(jié)束后,將針在肌肉中靜置2min,然后緩緩拔出。可進(jìn)行多次注射。

  8.縫合皮膚并做耳標(biāo)。將大鼠單獨(dú)放在一個(gè)干凈的籠子里,直到醒來(lái)

  9.先用0.1 M NaOH or 10%氯漂白劑清洗手術(shù)工具,并用蒸餾水沖洗,最后用酒精沖洗。

 

 

                      

圖3:超微量注射器

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