Q-PCR實(shí)驗(yàn)流程
一、 ①實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)備,每天早上到實(shí)驗(yàn)室后,先把超凈工作臺(tái)的紫外燈打開15-20分鐘。②超凈臺(tái)前做實(shí)驗(yàn),需佩戴干凈的橡膠手套/一次性薄膜手套,RNA抽提需帶口罩。③取EP管/槍頭時(shí)需用鑷子,不可以用使用過的手套直接取用。取完EP管/槍頭后,袋子及時(shí)封好。④橡膠手套須放入超凈臺(tái)照射紫外,實(shí)驗(yàn)操作過程中不得帶出超凈臺(tái),移液器在一天工作結(jié)束后調(diào)至最大量程,并用75%乙醇清潔移液器,槍頭盒及超凈臺(tái)面。⑤實(shí)驗(yàn)進(jìn)行的過程中或觀看實(shí)驗(yàn)時(shí),沒有帶口罩不要在超凈臺(tái)前講話。
二、 總RNA抽提
1)細(xì)胞培養(yǎng)皿中細(xì)胞樣品用1*PBS洗兩次后,用1ml槍將PBS吸干凈,加入1ml Trizol (invitrogen)溶液,吹打混勻,并吸至1.5ml RNase free EP管中使細(xì)胞充分裂解,室溫靜置5min;
如使用組織樣品,則先用液氮充分研磨組織樣品,然后加入1ml Trizol (Invitrogen)溶液,混勻,室溫放置5min使其充分裂解;(管蓋與管壁都需標(biāo)記樣品名稱)
2)加入200μl氯仿,劇烈振蕩混勻30s,使水相和有機(jī)相充分接觸,室溫靜置3-5min;(離心時(shí)離心管按順序排放,離心完畢,離心管的順序也按順序排好,與第一步的順序一致)
3) 4℃下,14,000g離心15min,可見分為三層,RNA在上層水相,移至另一個(gè)新的RNase free EP管;(用20-200ul的槍吸取上清,吸上清時(shí),槍頭應(yīng)沿著液面上層吸取上清,槍頭不可碰到、吸到中間層)
4)沉淀RNA:加入等體積異丙醇,輕柔地充分混勻(顛倒6-8次)(不應(yīng)用振蕩器混勻),室溫靜置10min;
5)4℃下,14,000g離心10min,收集RNA沉淀(如離心后仍不見EP管底部有沉淀,應(yīng)將EP管放置在-80度冰箱過夜,繼續(xù)在4℃下,14,000g離心10min,收集RNA沉淀),去上清;
6)用75%乙醇洗滌兩次(12,000g離心5min)(加入乙醇后只需輕輕顛倒EP管即可,不用振蕩器震蕩或槍頭吸打沉淀),超凈臺(tái)風(fēng)干;沉淀不能過干或過濕,過干則不易溶解,過濕則乙醇?xì)埩簟?/p>
7)視沉淀量加入適量DEPC水(至少15ul)溶解沉淀。
三、去基因組
使用RNase-free的DNase І(Promega),按以下體系配置反應(yīng)液,37℃消化30min,65℃滅活10min。
RNA |
30 |
µl |
總體積 |
100 |
µl |
然后按以下步驟操作:
1) 加入等體積的苯酚/氯仿,上下顛倒混勻,室溫放置5min后, 14,000rpm離心15min,取上清。
2) 加入等體積的氯仿,上下顛倒混勻,靜置分層后14,000rpm,離心15min,取上清。
3)加入等體積異丙醇,輕柔地充分混勻(顛倒6-8次),-20℃靜置15min;
4)4℃下,14,000g離心15min,收集RNA沉淀,去上清;
5)用75%乙醇洗滌兩次(12,000g離心5min),超凈臺(tái)風(fēng)干;
6)加入適量DEPC水(至少15ul)溶解沉淀。
四、總RNA純度和完整性檢測(cè)
1)純度檢測(cè):取1μl RNA樣品50倍稀釋,在核酸蛋白檢測(cè)儀上測(cè)定OD值,OD260/OD280的比值大于1.8,說明制備的RNA較純,無蛋白質(zhì)污染。
2)總RNA完整性檢測(cè):取RNA樣品1μl,1%瓊脂糖凝膠電泳80V×20min,EB染色10min,用凝膠成像系統(tǒng)觀察并拍照,總RNA的5s rRNA, 18s rRNA和28s rRNA條帶,三條條帶完整的話即可證明總RNA抽提比較完整。
五、逆轉(zhuǎn)錄
1. mRNA:
1) 在RNase free的PCR管中配置下列溶液.
Total RNA |
1.0 |
µg |
總體積 |
12 |
µl |
2) 將上述溶液吹打均勻,置85℃保溫5min,使RNA變性。隨后立即冰上致冷, 以防止RNA復(fù)性;
3) 在該P(yáng)CR管中加入下列試劑(Promega)
oligo(dT) |
0.5 |
µl |
總體積 |
8.0 |
µl |
4) 將上述20μl反應(yīng)溶液30℃保溫10min;
5) 42℃保溫50min;
6) 85℃保溫10min;
7) -20℃保存。
2. microRNA:
使用莖環(huán)逆轉(zhuǎn)錄法,原理如下圖:
1) 在去RNase的PCR管中配置以下溶液.
total RNA |
1.0
|
µg
|
總體積 |
12.5 |
µl |
2)將上述溶液混勻,85℃孵育5min,以打開RNA二級(jí)結(jié)構(gòu)。隨后立即置于冰上,以防止RNA復(fù)性再次恢復(fù)二級(jí)結(jié)構(gòu);
3) 在另一去RNase的PCR管中配置以下溶液:
10mM dNTP (promega) |
2.0 |
µl |
總體積 |
7.5 |
µl |
4) 將3)溶液加入到1)溶液中,混勻后30℃保溫10min;
5) 42℃孵育50min;
6) 85℃孵育10min滅活逆轉(zhuǎn)錄酶。
四、定量PCR檢測(cè)
1.引物測(cè)試:
根據(jù)mRNA設(shè)計(jì)的引物正式實(shí)驗(yàn)前需進(jìn)行qPCR測(cè)試其特異性和擴(kuò)增效率,具體反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如正式實(shí)驗(yàn),每對(duì)引物需做模板水對(duì)照。
得到結(jié)果后,首先根據(jù)熔解曲線判斷引物特異性,選擇標(biāo)準(zhǔn)為:?jiǎn)畏迩曳逍纹⑺畬?duì)照無明顯引物二聚體熔解曲線峰。若設(shè)計(jì)的多對(duì)引物熔解曲線均顯示特異性良好,則應(yīng)對(duì)比各引物的擴(kuò)增曲線,優(yōu)先選擇Ct值小、擴(kuò)增效率高的引物進(jìn)行正式實(shí)驗(yàn)。
2.確定上機(jī)內(nèi)容后,首先在記錄本上編排好上機(jī)的樣品排放順序。(1)一個(gè)樣品的加樣盡可能安排在同一行(2)如正式實(shí)驗(yàn)中三次重復(fù)不能安排在同一板上,則需把三次重復(fù)中的實(shí)驗(yàn)分開,但同一次重復(fù)的實(shí)驗(yàn)不能分開兩板
3.正式實(shí)驗(yàn):
體系配制:
H2O 4ul
SYBR Green PCR Master Mix 10ul (TOYOBO)(使用前需振蕩均勻)
上游引物 0.5ul (10uM)
下游引物 0.5ul (10uM)
總體積 15ul
計(jì)算好實(shí)驗(yàn)中需用多少份體系,則按具體量配置。體系分裝會(huì)有損失,一般多配0.5份--1份體系。
總的體系配好后,在振蕩器中振蕩均勻或用槍吸打均勻,然后15ul每管分裝至8連管中。
3.cDNA用滅菌純水稀釋適當(dāng)?shù)臐舛,一般?:20稀釋,如遇到基因表達(dá)低的樣品,則適當(dāng)降低稀釋比例至1:10或1:5。cDNA按一定順序排好后,即可加至剛配好的反應(yīng)體系中。加樣完畢,蓋好八連管蓋,并在八連管蓋最上沿的邊上標(biāo)記好1-12的順序(不可將標(biāo)記寫在反應(yīng)管的蓋子上,八連管蓋避免裸手觸摸中間透明的熒光采集區(qū)域,且保證每孔均蓋緊,否則影響重復(fù)性或可能出現(xiàn)熔解曲線峰漂移。)
4.把各排八連管放在掌上離心機(jī)上離心數(shù)秒。
五.上機(jī):
5.1 先開電腦,進(jìn)入Windows 界面。接著打開PCR儀電源開關(guān)。
5.2 打開7500軟件,選擇“新建”,在“Template”下拉菜單中選擇“60”或“65”(普通基因檢測(cè)為“60”,MicroRNA檢測(cè)為“65”)
5.3 打開樣品架,放入八連管,關(guān)上樣品架,并在軟件上選擇已放反應(yīng)管的孔位,剔除無反應(yīng)管的孔位。
5.4 點(diǎn)擊File菜單中Save,輸入要保存結(jié)果的文件名,命名為日期-上機(jī)時(shí)間-客戶名字簡(jiǎn)寫,如100830-1008-WL表示8月30日10點(diǎn)08分魏立的實(shí)驗(yàn)。
5.5 點(diǎn)擊Start鍵,開始運(yùn)行程序。
5.6 程序運(yùn)行完畢后,取出樣品架上的八連管,按順序關(guān)閉ABI PRISM 7500 SDS 軟件、PCR儀電源開關(guān)。
5.7 在7500軟件上標(biāo)記好每個(gè)反應(yīng)孔的樣品名稱及檢測(cè)基因的名稱,分類保存好結(jié)果文件。
反應(yīng)完成后,八連管應(yīng)裝到封口袋中,袋子上標(biāo)記好文件名,客戶的名字。(同一個(gè)客戶的三次重復(fù)實(shí)驗(yàn),則只需保存其中一次重復(fù)的反應(yīng)管即可,其余可丟棄)