ELISPOT技術(shù)原理
在免疫學(xué)領(lǐng)域中,對于疾病以及疫苗研究不僅僅局限于體液免疫應(yīng)答(B細(xì)胞免疫),細(xì)胞介導(dǎo)的免疫應(yīng)答(cell mediated immune response,CMI)也是人們所關(guān)注的,而T細(xì)胞在CMI中起關(guān)鍵作用。在研究免疫應(yīng)答機制時以往常用用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)檢測體液中游離的細(xì)胞因子(CK)或抗體,但由于游離的循環(huán)抗體或CK的半哀期不同,使之在體液中不斷的被代謝或與靶器官結(jié)合,而不能確切的反映體內(nèi)的抗體及CK的水平。 80 年代,國外的科研工作者根據(jù) ELISA 技術(shù)的基本原理,建立了體外檢測特異性抗體分泌細(xì)胞和 CK 分泌細(xì)胞的固相酶聯(lián)免疫斑點技術(shù)( ELISPOT )。作為一項新型的免疫酶技術(shù)——酶聯(lián)免疫斑點法(enzyme linked immunospot assay,ELISPOT),是從單細(xì)胞水平檢測分泌抗體細(xì)胞(ASC) 或分泌細(xì)胞因子(CK) 細(xì)胞的一項細(xì)胞免疫學(xué)檢測技術(shù)。由于該方法具有較高的特異性和敏感性,易操作,成本相對流式細(xì)胞分析術(shù)也較低,已被廣泛用于分泌CK細(xì)胞檢測或ASC測定中,對探索自身免疫系統(tǒng)疾病發(fā)病機制具有重要意義。
ELISPOT 法源自 ELISA,又突破傳統(tǒng) ELISA 法,是定量 ELISA 技術(shù)的延伸和新的發(fā)展。兩者都是檢測細(xì)胞產(chǎn)生的細(xì)胞因子或其他可溶性蛋白,它們最大的不同在于:
(1) ELISA通過顯色反應(yīng),在酶標(biāo)儀上測定吸光度,與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較得出可溶性蛋白總量。
(2) ELISPOT也是通過顯色反應(yīng),在細(xì)胞分泌這種可溶性蛋白的相應(yīng)位置上顯現(xiàn)清晰可辨的斑點,可直接在顯微鏡下人工計數(shù)斑點或通過ELISPOT 分析系統(tǒng)對斑點進行計數(shù),1個斑點代表1個細(xì)胞,從而計算出分泌該蛋白的細(xì)胞的頻率。(某些研究不僅要測細(xì)胞因子生成量,還需檢測分泌此細(xì)胞因子的細(xì)胞頻率)
由于是單細(xì)胞水平檢測, ELISPOT 比 ELISA 和有限稀釋法等更靈敏,能從20萬-30萬細(xì)胞中檢出1個分泌該蛋白的細(xì)胞。捕獲抗體為高親和力、高特異性、低內(nèi)毒素單抗,在研究者以刺激劑激活細(xì)胞時,不會影響活化細(xì)胞分泌細(xì)胞因子。
下面將從發(fā)展、原理、具體實驗操作、技術(shù)優(yōu)勢和應(yīng)用幾方面進行介紹。
ELISPOT技術(shù)的發(fā)展
(1) ELISPOT技術(shù)的過去
ELISPOT是20多年前便己研發(fā)成功的老技術(shù)。Czerkinsky 等人率先在1983年,運用該技術(shù)成功地檢測出因受激而分泌抗體的B細(xì)胞頻率。從那時起世界各國免疫學(xué)者便開始一長期的ELISPOT Cytokine技術(shù)競賽,每個團隊都希望能率先將此一技術(shù)推廣來研究T細(xì)胞免疫,其絕妙之處在提供一接近體內(nèi)實驗的環(huán)境,藉由偵測T細(xì)胞分泌的各類細(xì)胞因子,來定量機體內(nèi)免疫反應(yīng)啟始者Precursor T的clonal size族群大小,同時預(yù)測體內(nèi)免疫系統(tǒng)即將進行的下游免疫反應(yīng)。
ELISPOT Cytokine技術(shù)雖說操作簡單,但該技術(shù)并沒能如預(yù)期地很快地被成功應(yīng)用在ex vivo T細(xì)胞功能研究。要讓ELISPOT技術(shù)從B細(xì)胞免疫走向T細(xì)胞免疫的產(chǎn)生的第一個主要問題,便是靈敏度的提升,因為T細(xì)胞因子較之B細(xì)胞免疫球蛋白產(chǎn)量極少。早期ELISPOT的分析條件不是非常理想,成對抗體的品質(zhì)、呈色底膜的材質(zhì)等幾個技術(shù)性的問題,使當(dāng)時多數(shù)研究團隊很難獲得清晰的斑點,結(jié)果是敏感度不夠、數(shù)據(jù)分析重現(xiàn)性低。這問題直到1996美國俄亥俄卅Case Western Reserve大學(xué)Paul Lehmann團隊引進PVDF薄膜的應(yīng)用(Forsthuber et al., Science, 1996),才釜底抽薪地解決了該技術(shù)因斑點呈色問題造成低敏感度的缺失。與原來的標(biāo)準(zhǔn)膜面相比,PVDF薄膜提供1,000倍的較大面積來吸附單株抗體,使T細(xì)胞分泌的各類細(xì)胞因子能在細(xì)胞周圍就近被俘虜,讓呈色斑點集中、清晰、對比色高,大大的提高ELISPOT Cytokine分析的敏感度。圖一是使用PVDF-BASED改良薄膜(Panel A)與傳統(tǒng)標(biāo)準(zhǔn)薄膜(Panel B)并行實驗的比較結(jié)果。同樣的人體 PBMC樣品,在通過完全相同的實驗,Panel A呈現(xiàn)較清晰的小色點。
第二個技術(shù)性問題是ELISPOT Cytokine實驗分析的幾個基本假設(shè)缺乏科學(xué)實證,也使得該技術(shù)在當(dāng)時并沒受到該有的廣泛重視。沒有科研人員嘗試去厘清一些基礎(chǔ)但很重要的問題,諸如:
實驗所得的斑點是抗原特定T細(xì)胞所生產(chǎn),還是旁觀細(xì)胞受Cytokine刺激的次級效應(yīng)?
斑點的小或大有何生理意義;如何決定cutoff值?
能否相信斑點是由單一的細(xì)胞造成?
ELISPOT Cytokine分析技術(shù)能準(zhǔn)確測量的頻率范圍?
如果效應(yīng)相互拮抗的cytokine同時產(chǎn)生,它們是否會互相妨礙?及到什么程度?
(2) ELISPOT 技術(shù)的現(xiàn)在
1996年以來隨著抗體制備、PVDF膜材篁等技術(shù)改良,ELISPOT 分析技術(shù)已經(jīng)逐漸達到科研人員的期待,它已是當(dāng)世公認(rèn)最靈敏抗原特定T細(xì)胞的體外檢測技術(shù)。藉由檢驗新鮮分離PBMC細(xì)胞所分泌cytokine的指紋,ELISPOT 分析技術(shù)可提示T細(xì)胞免疫系統(tǒng)的兩個重要參數(shù):抗原特定T細(xì)胞的clone族群大;和免疫效應(yīng)細(xì)胞的信號傳導(dǎo)路徑Th1/Th2。
多年來經(jīng)過數(shù)十個研究團隊的致力研究,對于ELISPOT分析技術(shù)本身的幾個問題,也有了科學(xué)上的驗證。目前一般公認(rèn),ELISPOT技術(shù)允許科研人員在單細(xì)胞水平上識別抗原特定T細(xì)胞,主要針對經(jīng)由CD4或者CD8細(xì)胞的免疫反應(yīng)。在適當(dāng)?shù)膶嶒炘O(shè)計下,ELISPOT Cytokine 斑點的數(shù)量分析顯示斑點是由一個單細(xì)胞所生成,同時斑點形態(tài)學(xué)與Time Response分析則顯示斑點直徑大小直接反映該細(xì)胞族群的產(chǎn)能。也因為如此,ELISPOT是個免疫學(xué)上的標(biāo)竿技術(shù),它可以允許科研人員在幾乎自然生理條件下,觀察細(xì)胞實際分泌Cytokine的進程,進而可以得到藥理學(xué)信息,闡明免疫調(diào)節(jié)藥物如何影響T細(xì)胞分泌各類cytokine的速率。藥物抑制T細(xì)胞免疫一般可通過兩程截然不同的機轉(zhuǎn);使能分泌Cytokine的Precursor T細(xì)胞族群變小,或減少每Precursor T細(xì)胞的cytokine產(chǎn)能,而ELISPOT技術(shù)能提供雙份信息。
ELISPOT分析技術(shù)的幾個特點已經(jīng)讓它在抗原特定T細(xì)胞免疫學(xué)上獨占鰲頭。此技術(shù)是當(dāng)世唯一準(zhǔn)許百萬分之一1:1000,000的準(zhǔn)確分析,如此強效的解析力使流式細(xì)胞技術(shù)也望其項背,以目前國內(nèi)外常規(guī)的intracellular cytokine或者Dimer/ tetramer染色,流式技術(shù)的靈敏度一般限制在1:10,000。這樣的高靈敏度對T細(xì)胞免疫學(xué)研究是必須的,因為抗原特定T細(xì)胞一般在機體周邊循環(huán)系統(tǒng)發(fā)生的頻率通常低于萬中取一。此外由于ELISPOT Cytokine技術(shù)被證實適用于冰凍后復(fù)蘇的人類淋巴球,解凍后PMBC與新鮮分離樣品有相當(dāng)?shù)男r,沒有喪失功能。這一點對臨床試驗非常重要,它使科研人員得以并行分析免疫治療前、后的病人血樣,如果試驗牽涉全國多個臨床試驗機構(gòu),病人血樣可冰存并同時集中在「中央實驗室」一齊被測試。同理,一個血樣或標(biāo)準(zhǔn)對照品可被分裝小份,被送到不同檢驗中心進行測試,以交互比對,同時有利ELISPOT Cytokine技術(shù)流程的規(guī)范化、標(biāo)準(zhǔn)化。
(3) ELISPOT 未來展望
ELISPOT 分析技術(shù)正在歐美各國發(fā)揮它的完整潛能,它讓免疫學(xué)家可以直接洞察活體內(nèi)T細(xì)胞相關(guān)生理學(xué)或病理學(xué),就像是心臟外科醫(yī)師手上的那張心電圖,經(jīng)由這個技術(shù)科研人員可以在活體內(nèi)直接進入一個器官系統(tǒng),在那里視察、發(fā)掘,得到全新的智識。
從各國文獻可見ELISPOT技術(shù)已經(jīng)達到標(biāo)準(zhǔn)化、規(guī)范化的要求,并被廣泛地應(yīng)用在多項領(lǐng)域,包括監(jiān)視癌癥病人接受免疫療程時的反應(yīng)(Lewis, 2000 and Janetzki, 2000),以及感染性疾病(Moss, 2000, Rahman, 2000, Rowland-Jones, 1998, Herr, 1997 and Lechner, 2000)、腫瘤(Nagorsen, 2000)、或自體免疫病人體內(nèi)的一個特定的免疫反應(yīng)型式(Pelfrey, 2000)。ELISPOT技術(shù)同時也在數(shù)個疫苗效價評估人體試驗中,被當(dāng)成重要的終結(jié)指針。2003年1月,世界衛(wèi)生組織通過與大陸北京性艾中心合作,將應(yīng)用ELISPOT技術(shù)來監(jiān)測HIV疫苗研究免疫應(yīng)答反應(yīng)技術(shù),該計劃將是首次利用ELISPOT技術(shù)對亞洲國家從事HIV疫苗研究和臨床試驗的有關(guān)研究。我們期待未來此技術(shù)能在我國免疫學(xué)界得到廣泛地應(yīng)用。
原理
ELISPOT就其原理來說實在是很簡單的,從本質(zhì)上說和ELISA的原理是一樣的,理解起來并不難。細(xì)胞受到刺激后局部產(chǎn)生細(xì)胞因子,此細(xì)胞因子被特異單克隆抗體捕獲。細(xì)胞分解后,被捕獲的細(xì)胞因子與生物素標(biāo)記的二抗結(jié)合,其后再與堿性磷酸酶標(biāo)記的親和素結(jié)合。BCIP/NBT 底物孵育后,PVDF孔板出現(xiàn)“紫色”的斑點表明細(xì)胞產(chǎn)生了細(xì)胞因子,通過ELISPOT 酶聯(lián)斑點分析系統(tǒng)對斑點的分析后得出結(jié)果。傳統(tǒng)的ELISA與ELISPOT都是根據(jù)酶免疫學(xué)檢測原理,通過酶的高催化頻率,放大反應(yīng)效果,從而達到很高敏感度的檢測效果。
ELISPOT全名為Enzyme-linked Immunospot Assay,其技術(shù)原理與ELISA相似。其實驗設(shè)計是在96微孔培養(yǎng)盤底部披覆PVDF薄膜,用來吸附特殊挑選、且無毒性(不含sodium azide、內(nèi)毒素endotoxin)的單株抗體。靜脈血PBMC細(xì)胞經(jīng)適當(dāng)分離處理后,會被分配到微孔盤上,再接受適當(dāng)?shù)目乖碳,并將微孔盤放置于溫箱中過夜培養(yǎng)一段時間。一般而言,記憶型T細(xì)胞在受抗原刺激數(shù)小時后會開始分泌細(xì)胞激素,此時局部(在緊靠分泌細(xì)胞的周圍)分泌出的細(xì)胞激素會被PVDF薄膜上特異抗體捕獲。微孔盤中的細(xì)胞被移除并清洗后,被捕獲的細(xì)胞激素可進一步使用生物素(Biotin)標(biāo)記的二次抗體來標(biāo)志,其后再以結(jié)合酵素的StreptAvidin與之作用,并加入酵素受質(zhì)使其呈色,有反應(yīng)作用的細(xì)胞會留下染色斑點。
反應(yīng)步驟可大致分為:
(1) 利用特定細(xì)胞因子的單克隆抗體包被96孔板,封閉剩余的空白位點;
(2) 加入細(xì)胞懸液,用特異性抗原刺激、活化細(xì)胞,產(chǎn)生細(xì)胞因子,細(xì)胞因子會往附近擴散與之前包被的抗體進行特異結(jié)合;
(3) 洗掉細(xì)胞;
(4) 加入酶標(biāo)二抗特異與細(xì)胞因子進行結(jié)合,通過底物的顯色反應(yīng),一個細(xì)胞所在位置就會顯出斑點,最后利用顯微鏡或者特定的讀板機(reader)就可以計算出樣品中被激活細(xì)胞的數(shù)目。
以上是檢測分泌細(xì)胞因子細(xì)胞的流程,如果是檢測分泌特異抗體的細(xì)胞只需把包被特異抗體變?yōu)榘惶禺惪乖纯伞?nbsp;
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ELISPOT技術(shù)實驗步驟
從原理上看ELISPOT的確很簡單,但是在操作過程中有許多條件需要摸索,所以這里進一步介紹一下ELISPOT的操作步驟。
(1) 將適量捕獲性抗體預(yù)先包被于96孔ELISPOT板上,用膠帶封板并在4℃孵育過夜。將板用PBS洗6遍,再用含體積比10%胎牛血清(FCS)的培養(yǎng)基封閉,室溫下孵育至少1h。FCS可以封閉所包被抗體的FCS受體以降低非特異性反應(yīng)。有一種特殊的96孔板底面介質(zhì)是PVDF膜,利用膜的多孔結(jié)構(gòu)可以讓單個細(xì)胞坐到其中,然后分泌細(xì)胞因子或特定抗體,這樣使最后的檢測單個細(xì)胞靈敏度成為可能。同時,PVDF膜的不透光性也是ELISPOT與ELISA的不同之處。理論上是可以同時包被兩個不同的抗體的,兩種不同的抗體可以利用不同的顯色系統(tǒng)顯出不同顏色,但是這樣就要考慮到不同抗體間的不親和性,必需保證每種抗體包被的數(shù)量要足夠。如果是使用試劑盒的預(yù)包被板,這一步就可以省略啦。
(2) 將陰性對照和細(xì)胞樣品,如外周血單核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC),經(jīng)純化的CD8+T細(xì)胞或去除某種特異細(xì)胞群的PBMC,用含10%FCS的培養(yǎng)基稀釋至5×104~2×105個/孔如果條件可以達到更高的細(xì)胞數(shù),建議可以嘗試3×105~5×105個/孔,特別是在分泌細(xì)胞),分裝于ELISPOT板孔中,再加入特異的刺激物,如多肽或基因表達產(chǎn)物,提取的抗原等,陰性對照孔中只加入培養(yǎng)基(實驗中最好采用無血清的培養(yǎng)基,這樣可以避免因為血清批次不同的差異所造成的誤差,同時也避免血清的某些成份會引起非特異的反應(yīng)),陽性對照孔加入植物血凝素(PHA,2μg/mL)或陽性多肽,37℃,體積比為5% CO2培養(yǎng)24~48h。要進行ELISPOT實驗的細(xì)胞必需制備成為懸液的形式。利用ELISPOT的檢測是十分靈敏的,頻率低至10-12的分泌細(xì)胞都可以被檢測出來。并且對于那些會貼壁的細(xì)胞也可以使用此種方法,雖然細(xì)胞生長貼壁后不易被洗去,但是不會妨礙最后斑點的顯色。只要細(xì)胞可以正常分泌與抗體特異結(jié)合的產(chǎn)物,這些產(chǎn)物會逐步擴散到細(xì)胞四周,最后還是可以顯示出斑點。
(3) 用含體積比0.01%Tween-20的PBS洗6次,以棄去細(xì)胞,加入生物素化抗細(xì)胞因子的檢測抗體,孵育3h。再洗6次后,加入AP或HRP標(biāo)記的鏈親和素,室溫孵育3h。
(4) 用PBS-Tween-20 再洗5次,加入底物 室溫下顯色,待出現(xiàn)紫色(AKP和底物的產(chǎn)物)或紅色(HRP和底物的產(chǎn)物)斑點時,即可用立體解剖顯微鏡或計算機輔助成像分析系統(tǒng)計算斑點數(shù),并用斑點形成單位(sfu/L百萬加入細(xì)胞)記錄結(jié)果。每一個斑點代表一個特異分泌CK的細(xì)胞。若預(yù)先包被抗原,則可用于ASC測定,這時,每一個斑點代表一個分泌特異抗體的細(xì)胞。
完成了以上步驟后其實只是完成了實驗的一半。在你不斷摸索反應(yīng)的條件之后,得到了一塊布滿斑點的板,接下來要如何對這些斑點進行分析呢。如果利用顯微鏡人工技術(shù)無疑是太參有個人因素的實驗了,實驗結(jié)果肯定會被審稿人好好質(zhì)疑一番。隨后,有人使用數(shù)碼相機拍攝下來后,使用photoshop進行處理、計數(shù),這種方法也存在較多的個人因素。一項技術(shù)要普及,為廣大研究人員所接受,就必需盡量減小人為的誤差。所以,近年許多公司開始開發(fā)計算機輔助系統(tǒng),使用系統(tǒng)設(shè)定的閾值對斑點進行人工智能計數(shù)。這樣,由計算機將陰性對照中非特異反應(yīng)斑點進行去除,同時由計算機進行統(tǒng)一計數(shù),這樣的實驗結(jié)果置信度便大大提升了。目前判斷的首要標(biāo)準(zhǔn)還是斑點的大小,但是做過電泳、同位素等的計算機成像的研究人員都遇到過一個問題:很多時候?qū)嶒灂a(chǎn)生一些較淡的斑點,用肉眼判斷絕對是背景。所以在設(shè)計軟件時也必需考慮到斑點深淺因素。計算機可以利用斑點的深淺、是否以中心為原點向四周減淡等特征對細(xì)胞分泌動力學(xué)特征進行分析,這項技術(shù)的成熟相信會使ELISPOT的應(yīng)用范圍更加擴寬。
(5) ELISPOT 斑點的判讀像多數(shù)的Cell-based分析技術(shù)一樣,ELISPOT Cytokine技術(shù)也是相當(dāng)耗時、耗勞力的工作。事實上到目前為止,以目視法判讀少量細(xì)胞族群的特性如激活T細(xì)胞之激素分泌,仍被視為是免疫學(xué)技術(shù)上的一大挑戰(zhàn)。ELISPOT結(jié)果的判讀常需要專聘、有經(jīng)驗的技術(shù)員才可以;有時就算有專職技師判讀,使用傳統(tǒng)的顯微鏡計算斑點數(shù)仍不免會偶有主觀意見,而有所偏頗。
科學(xué)實證的本質(zhì),在于如何使實驗結(jié)果能盡可能客觀、精確、同時有高重現(xiàn)性,傳統(tǒng)的人工計算法顯然無法達到此一要求。故而有幾個科研團隊使自行開發(fā)Plate Scanner與自動分析軟件,其中以Paul Lehmann教授研究開發(fā)之ImmunoSpot Analyzer自動分析儀最具代表性。分析ELISPOT實驗數(shù)據(jù)的過程中,儀器先以高分辨率鏡頭捕捉微小孔中膜上呈色影像,而后儲存成TIF檔;這些影像可以進一步使用手動、或是自動方式計算斑點數(shù)目,如果使用ImmuneSpot分析軟件,可以先設(shè)定條件,然后同時分析斑點的大小,以推估激素分泌的多寡。預(yù)料像ImmunoSpot Analyzer這一類自動圖像掃描分析儀器,將可克服傳統(tǒng)顯微鏡判讀方法耗費人力、及人為客觀性等缺點,徹底解除ELISPOT分析技術(shù)的瓶頸問題,進一步推廣該技術(shù)的新穎應(yīng)用。
ImmunoSpot@影像掃描分析儀可以提供不同的數(shù)據(jù)格式,包括未處理與處理過的膜表面影像、每個小孔中的斑點數(shù)目、每個小孔中的平均斑點數(shù)目、每個小孔中斑點大小的直方統(tǒng)計圖。
ELISPOT分析儀的出現(xiàn)解決了以下問題
哪些斑點是抗原特異性 T 細(xì)胞產(chǎn)生的(此斑點具有進一步分析價值),哪些是無關(guān)細(xì)胞產(chǎn)生的(此斑點沒有 T 細(xì)胞研究價值)
斑點大小的意義 。
在對不同細(xì)胞因子計數(shù)和分析時,如何定義斑點最大和最小尺寸。
如何從單個細(xì)胞基礎(chǔ)上分析 。
實驗精確度有多高?如果一個細(xì)胞產(chǎn)生相似的細(xì)胞因子,在多大程度上會干擾分析結(jié)果。
幾次重復(fù)實驗才能使結(jié)果更有意義。
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ELISPOT技術(shù)優(yōu)勢及應(yīng)用
ELISPOT的歷史可以追溯到1963年Jerne等人創(chuàng)立的溶血空斑技術(shù)(hemo-lytic plaque forming cell assay,HPF),這項技術(shù)可用于檢測并計數(shù)單個抗體形成細(xì)胞。隨著單克隆抗體技術(shù)的成熟,1983年,Czerkinsky等采用此法檢測脾細(xì)胞中分泌特異性抗體的細(xì)胞數(shù),發(fā)現(xiàn)該方法敏感性高簡便易行。后來,他們又用這種方法定量分析受到有絲分裂原刺激的外周血中分泌IFN2γ的細(xì)胞數(shù)。隨后,用ELISPOT法在單細(xì)胞水平檢測分泌其他細(xì)胞因子(如IL-2,IL-4,IL-5,IL-10,TNFα和IL-6) 數(shù)量的手段也被建立起來。Nordstrom等用生物素-抗生物素蛋白生物放大法來提高這種方法的敏感性,Herr用計算機輔助圖像分析系統(tǒng)(computer-assisted video image analysis,CVIA)自動分析TNF2α酶聯(lián)免疫斑點的大小和數(shù)量,計算與負(fù)載抗原肽的靶細(xì)胞接觸后外周血單核細(xì)胞(PBMC)中抗原特異性CD8+T細(xì)胞的數(shù)量,不但提高了對背景染色的分辨力也使大規(guī)模研究成為可能。Vaquerano等將數(shù)碼相機和計算機結(jié)合起來,開發(fā)出類似的斑點計數(shù)系統(tǒng),認(rèn)為當(dāng)每孔斑點數(shù)大于100時,這種方法更客觀、可重復(fù)性高且節(jié)省時間。
隨著ELISPOT技術(shù)的不斷發(fā)展,它的優(yōu)勢也漸漸顯示出來,下面將列舉ELISPOT對比其它一些傳統(tǒng)技術(shù)的優(yōu)勢所在。
ELISPOT 分析使單細(xì)胞分泌產(chǎn)物可視化。這些分析異常敏感,因為它是在直接在分泌細(xì)胞的周圍進行捕捉,而且是在表面被沖淡,或者被臨近的細(xì)胞上的受體捕獲,或降解之前。最低至1:100萬細(xì)胞精度的活體外頻率測量。這種分辨率已經(jīng)遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過使用細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞因子的四聚物染色和ELISA法測量的精度。這種高敏感度是非常關(guān)鍵的,因為抗原特異性 T 細(xì)胞在體外都是典型性的低頻率。高產(chǎn)量T細(xì)胞分析成為可行。一個經(jīng)過訓(xùn)練的相關(guān)實驗室小組可以測試成百的樣本中幾十種抗原的反應(yīng)。只需要少量細(xì)胞,就可以用于通其他細(xì)胞學(xué)分析方法進行比較。例如,45毫升的血液就足以用于測試600種不同抗原/肽類物質(zhì)的反應(yīng)?梢远xCD4和CD8細(xì)胞的免疫因子指標(biāo)。這是因為只需要少數(shù)細(xì)胞,分析就可以在高產(chǎn)量模式下進行。ELISPOT分析在篩選肽庫,繪制免疫因子方面是一個理想的工具。 用于確定抗原特異性T細(xì)胞的功能性親和力。這最大可能受到肽類藥物刺激至50%的影響?梢杂糜谘芯课唇(jīng)藥物處理過的細(xì)胞的分泌過程。如果觀察到凈產(chǎn)量減少,可以確定這種區(qū)別是來自分泌細(xì)胞的減少,還是每個細(xì)胞分泌產(chǎn)量的減少。淋巴細(xì)胞在ELISPOT分析后依然存活。這使得分析之后進行增值,用于更進一步的分析、克隆或者低溫儲藏成為可能低溫儲藏后的人類淋巴細(xì)胞可以用于檢測,而不會丟失其功能。治療前和治療后的樣本可以并排進行測試,結(jié)果可以重復(fù)。
(1) 與ELISA
ELISA 通過顯色反應(yīng),在酶標(biāo)儀上測定吸光度,與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較得出可溶性蛋白總量。ELISPOT 也是通過顯色反應(yīng),在細(xì)胞分泌這種可溶性蛋白的相應(yīng)位置上顯現(xiàn)清晰可辨的斑點,可直接在顯微鏡下人工計數(shù)斑點或通過計算機輔助的分析系統(tǒng)對斑點進行計數(shù), 1個斑點代表1個細(xì)胞,從而計算出分泌該蛋白的細(xì)胞的頻率。(某些研究不僅要測細(xì)胞因子生成量,還需檢測分泌此細(xì)胞因子的細(xì)胞頻率)由于是單細(xì)胞水平檢測,ELISPOT比ELISA更靈敏,能從20萬-30萬細(xì)胞中檢出1個分泌該蛋白的細(xì)胞。捕獲抗體具有高親和力、高特異性、低內(nèi)毒素的單抗,在研究者以刺激劑激活細(xì)胞時,不會影響活化細(xì)胞分泌細(xì)胞因子。
與有限稀釋法(limiting dilution analysis,LDA)
LDA能夠?qū)μ禺愋訡TL細(xì)胞進行定量,曾在很多年中被認(rèn)為是CTL 檢測的“金標(biāo)準(zhǔn)”,它使人們能夠詳細(xì)了解免疫反應(yīng)動力學(xué)和記憶毒性T淋巴細(xì)胞(memorial CTL, mCTL) 亞群的細(xì)胞周期。但該方法需要高強度抗原刺激, 這會加快效應(yīng)CTL(eCTL)凋亡,且不能定量測定eCTL細(xì)胞數(shù)量或測定值偏低。其次,該方法較繁瑣,培養(yǎng)時間可長達2~3周,而且很容易造成T細(xì)胞數(shù)量損失。
(2) 與四聚體法(Tetramer)
最近幾年出現(xiàn)了MHC2Ⅰ類分子抗原肽四聚體法。該法的優(yōu)勢在于迅速、直接、靈敏且特異性強,即使當(dāng)體內(nèi)mCTL水平低于1%,用MHC2Ⅰ抗原肽四聚體法仍可直接測到準(zhǔn)確的值,比LDA 敏感度要高5~10倍。但該技術(shù)也存在較多應(yīng)用上的困難:除了合成及穩(wěn)定MHCⅠ類分子的技術(shù)困難外,最主要缺點是表位的選擇。由于每次反應(yīng)只能分析單一的抗原表位,而MHCⅠ類分子結(jié)合的各種表位,能否形成CTL反應(yīng),卻隨著基因背景及時間的變化而變化,因此選擇正確的表位就顯得尤為重要。優(yōu)勢表位的篩選可以通過Elispot 來進行,但對整個肽庫進行掃描,并不是一件很容易的事。當(dāng)然,生物信息學(xué)的運用對表位的篩選有很大的幫助。同時,有研究結(jié)果表明,并非所有經(jīng)過Tetramer 鑒定的陽性細(xì)胞都有確切的功能, Tetramer陽性的細(xì)胞數(shù)是用ELISPOT分析能分泌INF2γ細(xì)胞數(shù)的10倍,其中很多是不表現(xiàn)功能的惰性細(xì)胞,可能代表了記憶型CTL前體細(xì)胞。Tetramer分析只增加了分析的靈敏度,同時測定其功能很重要。
(3) 與Cr51釋放法
此法是一種比較經(jīng)典的方法,雖然在檢測CTL識別的抗原多樣性方面非常有效,且能精確闡明被CTL識別的最佳表位,但至多為半定量的層面,而且Cr51標(biāo)記細(xì)胞的自發(fā)釋放率較高,不適于較長時間培養(yǎng);標(biāo)記時所需的細(xì)胞濃度較高,因而給試驗帶來諸多不便;此外,Cr51釋放法所測定的是一個細(xì)胞群體的特性,而不是單個細(xì)胞。
(4) 與胞內(nèi)CK染色法
與ELISPOT法相比較,胞內(nèi)CK染色法(intra-cellular CK staining,ICS) 主要應(yīng)用細(xì)胞內(nèi)累積細(xì)胞因子的染色和多色參數(shù)的FACS法,是檢測循環(huán)淋巴細(xì)胞中抗原特異性T 淋巴細(xì)胞的可行方法,而ELISPOT法卻可以檢測所有分泌CK的eCTL 。
應(yīng)用
目前,ELISPOT已被用于檢測藥物、化學(xué)制劑及其它CK復(fù)合物的特性及功能等方面,因此為體內(nèi)免疫功能的調(diào)節(jié)效應(yīng)提供了檢測依據(jù)。近幾年來, ELISPOT技術(shù)在腫瘤疫苗評價試驗、免疫監(jiān)測及免疫學(xué)研究中越來越被廣泛地使用。
(1) 在抗腫瘤免疫及相關(guān)領(lǐng)域中的應(yīng)用
在許多研究中,該技術(shù)已被用于免疫動物外周血淋巴細(xì)胞中抗原特異的細(xì)胞毒性T細(xì)胞(CTL)的數(shù)量檢測。近期,ELISPOT技術(shù)已用于分析和評價從傳染病病人的PBMC中檢測肽特異的T淋巴細(xì)胞以及在癌癥病人中誘導(dǎo)腫瘤特異的T細(xì)胞的疫苗試驗。
ELISPOT檢測T細(xì)胞反應(yīng)時敏感性、特異性和可重復(fù)性都很高,操作簡單迅速,需要少量標(biāo)本,在檢測抗原特異性細(xì)胞數(shù)量的同時也反應(yīng)其功能,并與臨床結(jié)果相關(guān)。ELISPOT平板可以提前大量準(zhǔn)備,移液、洗板和讀板都可自動化,因而大批量檢查也可做到快速高效。在與與其他方法的比較后,ELISPOT很可能成為定量分析腫瘤或病毒特異性的T細(xì)胞反應(yīng)的首選。
(2) 在抗感染免疫中的應(yīng)用
CTL在抗病毒感染的免疫應(yīng)答中占有主要地位,而CD4+輔助性T細(xì)胞亞群Th1/Th2的平衡在抵御病毒感染中起著同樣重要的作用。在HIV研究方面,由MHC-1類分子加工的不同抗原經(jīng)CTL識別并產(chǎn)生免疫應(yīng)答在控制HIV-1感染中同樣起重要作用。利用ELISPOT方法檢測CK如IFN2γ就可以進一步了解到針對HIV特異的CTL應(yīng)答及相關(guān)免疫信息。
此外,ELISPOT法還用于評價由HIV-1感染引起粘膜的CD4+T細(xì)胞免疫應(yīng)答以及HIVgp 120g與霍亂毒素共表達的DNA疫苗的免疫源性。在其他研究中,ELISPOT還用來檢測通過直腸免疫低劑量甲肝疫苗而產(chǎn)生的細(xì)胞免疫應(yīng)答。在急性的自限性肝炎中,以Th1為主的應(yīng)答促進細(xì)胞介導(dǎo)的免疫,且在控制病毒感染及延緩慢性疾病的發(fā)展方面有重要作用。
在許多抗細(xì)菌免疫研究中,該方法也發(fā)揮了重要作用。例如:應(yīng)用ELISPOT試驗證實表達大腸桿菌MalE蛋白的重組卡介苗(rBCG.MalE)誘導(dǎo)的T細(xì)胞應(yīng)答是CD4+T細(xì)胞依賴的,rBCG.MalE 誘導(dǎo)的特異CD4+T細(xì)胞應(yīng)答存在Th1/Th2平衡轉(zhuǎn)換現(xiàn)象,并逐步形成Th1/ Th2 混合應(yīng)答。
(3) 臨床方面
目前,已經(jīng)實現(xiàn)臨床檢驗的領(lǐng)域是對肺結(jié)核(TB)的檢測。而最近的研究熱點就是對于移植的預(yù)測。受體對供體特異性HLA抗體一直以來都是器官移植的一大障礙,因為它們的存在不僅介導(dǎo)超急性排斥反應(yīng)而且還可導(dǎo)致急性排斥反應(yīng)。因此,HLA抗體的存在限制了異體抗原敏感患者對供體器官的需要,因而增加了等待移植的時間。在心臟,肝臟和腎臟異體移植后早期出現(xiàn)的并發(fā)癥如急性排斥反應(yīng)與移植前存在的異體免疫臨床相關(guān)性迫切需要一種恰當(dāng)?shù)臋z測方法在器官移植前能了解受體對供體特異性體液免疫的功能狀態(tài)。
在接受移植的人群中,部分因有多次輸血、或既往有異體移植失敗或多次妊娠史體內(nèi)曾經(jīng)存在陽性異體抗體,在他們接受異體移植時,現(xiàn)有的檢測方法只能顯示他們對異體的免疫功能正常。但他們體內(nèi)存在記憶B淋巴細(xì)胞,一旦受到相應(yīng)HLA 抗原的刺激則會喚起免疫反應(yīng),這不僅影響著移植的結(jié)果,甚至?xí)霈F(xiàn)危及患者生命的、與移植相關(guān)的并發(fā)癥。
ELISPOT是一種強有效的檢測單個抗體分泌細(xì)胞的方法,具有很高的敏感性。因此,刺激記憶B淋巴細(xì)胞增殖、分化成漿細(xì)胞,并建立一種特異性ELISPOT方法檢測HLA抗體產(chǎn)生細(xì)胞是最佳手段。 如果ELISPOT要進一步推廣應(yīng)用,特別是臨床應(yīng)用,其標(biāo)準(zhǔn)化將是一個十分重要的問題。美國FDA和NIH等已經(jīng)開始建立ELISPOT的標(biāo)準(zhǔn)化流程,相信隨著ELISPOT技術(shù)的成熟、標(biāo)準(zhǔn)化程序的建立,它的應(yīng)用將更加廣泛。
ELISPOT 實驗方案
對應(yīng)BD的試劑盒
實驗材料的準(zhǔn)備
試劑盒中沒有但是必須的
材料:
• 已消毒的移液器 (Gilson)。單道20ul,100ul,200ul,1ml, 8/12道200ul
• 無菌一次性聚苯乙烯吸量管 (1ml, 5ml, 10ml)(Axygen)。
• 一次性乳膠手套 。
• 無菌一次性離心管(15ml、50ml)(Corning cat#430052 and 430290)。
• 吸水紙(衛(wèi)生紙)
• 無菌tip頭, 200ul,1ml,
試劑:
1. PBS 無菌 300ml/10板,有菌4000ml/10板 在準(zhǔn)備包被抗體時不要使用商業(yè)化的PBS
2. ddH2O(無菌) 對于10塊ELISPOT板,200 ml
3. 有菌洗滌緩沖液(PBST):有菌3000ml/10板
Tween-20 進口
4. 有菌洗滌緩沖液(PBS):有菌1000ml/10板
5. 培養(yǎng)液:無血清培養(yǎng)基 (P/S, 2 mM 的谷氨酰胺,以及 Hepes buffer)。
6. PMA +ionomycin.
Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA; Sigma Chemical Co., product nr. P8139 is recommended).
PMA
貯 存 液:PMA溶于DMSO,濃度為1mg/ml,-20℃保存
工 作 液:貯存液 1:4000稀釋于無血清培養(yǎng)基中
此時為 250ng/ml
Calcium ionophore (ionomycin; Sigma Chemical Co, product nr. I0634 is recommended).
Ionomycin
貯 存 液:Ionomycin溶于DMSO,濃度為1mg/ml,-20℃保存
工 作 液:貯存液 1:200稀釋于無血清培養(yǎng)基中
此時為 5μg/ml
50ml混合刺激劑=PMA工作液12.5ul,Ionomycin工作液250ul,無血清培養(yǎng)基補齊
7. 10% 熱滅活胎牛血清 (Hyclone cat# ALH14384 )
8. 抗原
設(shè)備:
• 洗板器: 自動或手動 (洗瓶, 手動分液器等)。
•專用CO2-細(xì)胞培養(yǎng)箱 (37°C)。
4°C冰箱
無菌間無菌操作臺
Preparation kit reagents
1.包被用抗體
取50 μl加到10ml PBS中。(足夠包被1塊96孔板,100 μl/well)。
對10塊板子, 500ul加到100ml PBS中
2.生物素標(biāo)記的檢測抗體(detector antibody)
取50μl加到10 ml Dilution buffer中。(混勻后加入ELISPOT板,100 μl/well)。
對10塊板子, 500ul 加到100ml Dilution buffer(PBS+10%FBS)
3.STREP-HRP
取100μl加到10 ml Dilution buffer中。(混勻后加入ELISPOT板,100 μl/孔)。
對10塊板子, 1ml 加到100ml Dilution buffer
4 顯色激活系統(tǒng)(Activation system)
對于1塊ELISPOT板,200ul AEC Chromogen + 10 ml AEC Substrate,混勻,10分鐘內(nèi)用完。(100 μl/孔)。
ELSPOT實驗步驟
Day 1
包被ELISPOT板 16:30
1. 在ELISPOT板中每孔加入包被抗體100μl,4℃ 過夜。
Day 2
ELISPOT板的封閉 17:00
2. 取出已包被的ELISPOT板,吸棄每孔中的包被抗體溶液。
3. 用完全無血清培養(yǎng)基洗1次。
4. 在ELISPOT板中,每孔加入200μl完全無血清培養(yǎng)基。室溫2h。(8道排槍)
5.
PBMC加入ELISPOT培養(yǎng)板 20:00
6. 取出封閉2h的ELISPOT板,吸棄每孔中的封閉液。(不要洗板!)
7. 在ELISPOT板中,先加30μl 無血清培養(yǎng)基(12道排槍)和20μl肽庫(8道排槍),后加50μl細(xì)胞(8道排槍) (每孔活細(xì)胞總數(shù)為2×105,每個病人需活細(xì)胞總數(shù)為10×106,體積為2.5 ml。每條多肽的終濃度為5μg/ml,活細(xì)胞的工作濃度為4×106/ml,活細(xì)胞的終濃度為2×106/ml)。
陽性孔中每孔加入50μl 細(xì)胞和30μl無血清培養(yǎng)基和20μl PMA+Inomysin(工作液濃度分別為250ng/ml和5ug/ml,終濃度分別為50ng/ml和1ug/ml)。
8. 用low evaporation lid 蓋好ELISPOT板,放入37℃ CO2孵箱培養(yǎng)30 h。
注意:不要晃動ELISPOT板。
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樣本 1
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樣本2
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Gag1 |
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Nef |
Nef |
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Gag1 |
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Gag2 |
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Tat
REV |
Tat
REV |
樣本陽對 |
樣本陽對 |
Gag2 |
Gag2 |
Tat
REV |
Tat
REV |
樣本陽對 |
樣本陽對 |
Gag3 |
Gag3 |
Vpu
Vpr |
Vpu
Vpr |
樣本陽對 |
樣本陽對 |
Gag3 |
Gag3 |
Vpu
Vpr |
Vpu
Vpr |
樣本陽對 |
樣本陽對 |
Day 4
二抗和GABA標(biāo)記,顯色反應(yīng) 8:30
9. 培養(yǎng)30h后,取出ELISPOT板,甩去細(xì)胞后。
10. 用去離子水洗滌2次。每次浸泡5分鐘。
11. 用0.05%PBST洗滌3次。每次浸泡2分鐘。
12. 每孔加入100μl 生物素化的detector Ab(8道排槍)。室溫2小時。
13. 取出ELISPOT板,倒去detector Ab溶液,用PBST洗滌3次。每次浸泡2分鐘
每孔加入100μl Strep-HRP溶液(8道排槍)。室溫1小時
14. 取出ELISPOT板,倒去Strep-HRP溶液。
15. PBST洗滌4次。每次浸泡2分鐘。
16. 用PBS洗滌2次。每次浸泡2分鐘。
17. 洗滌完畢后,在吸水紙上輕輕拍干ELISPOT板。
每塊板子200ul AEC Chromogen + 10 ml AEC Substrate,混勻,15分鐘內(nèi)用完。
18. 每孔加入100 µl 配好的substrate(8道排槍)。在暗處、室溫下孵育(5~60分鐘)。
出現(xiàn)斑點后,用自來水沖洗,中止反應(yīng)。室溫下干燥,檢測。