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                                                              English | 中文版 | 手機版 企業(yè)登錄 | 個人登錄 | 郵件訂閱
                                                              當前位置 > 首頁 > 技術文章 > 運動單胞菌內切酶基因整合表達機制

                                                              運動單胞菌內切酶基因整合表達機制

                                                              瀏覽次數:119 發(fā)布日期:2025-4-17  來源:威尼德生物科技
                                                              摘要
                                                              基因工程技術將內切葡聚糖酶基因整合至運動發(fā)酵單胞菌基因組中,優(yōu)化其表達效率。利用威尼德電穿孔儀實現重組質粒轉化,通過熒光定量PCR驗證基因整合,酶活測定顯示重組菌株的纖維素降解能力顯著提升。實驗結果為運動發(fā)酵單胞菌的工業(yè)應用提供了理論支持。

                                                              引言
                                                              內切葡聚糖酶是纖維素降解的關鍵酶類,在生物燃料及廢棄物處理領域具有重要應用價值。運動發(fā)酵單胞菌(Zymomonas mobilis)因其高乙醇產率和耐逆性成為理想底盤菌株,但其天然纖維素酶活性較低。近年來,基因整合技術為異源酶的高效表達提供了新思路。本研究旨在通過CRISPR-Cas9系統(tǒng)將內切葡聚糖酶基因(endo-1,4-β-glucanase)定點整合至運動發(fā)酵單胞菌基因組中,優(yōu)化其表達條件,并評估重組菌株的酶活性能,以期為纖維素資源的高效轉化提供技術支持。

                                                              實驗部分
                                                              1. 材料與方法
                                                              1.1 菌株與質粒
                                                              實驗選用運動發(fā)酵單胞菌ZM4(Zymomonas mobilis ZM4)為宿主菌,內切葡聚糖酶基因來源于某嗜熱菌株。重組質粒pZM-Cas9-EG由某試劑公司提供的CRISPR-Cas9系統(tǒng)構建,包含同源臂、篩選標記及基因表達調控元件。
                                                              1.2 基因整合載體構建
                                                              (1)基因擴增:以內切葡聚糖酶基因序列為模板,設計特異性引物,使用某品牌高保真DNA聚合酶進行PCR擴增,產物經瓊脂糖凝膠電泳驗證。
                                                              (2)載體組裝:利用Gibson組裝法將擴增片段與線性化載體pZM-Cas9-EG連接,轉化至某大腸桿菌感受態(tài)細胞中,篩選陽性克隆并測序驗證。
                                                              1.3 電穿孔轉化與基因整合
                                                              (1)運動發(fā)酵單胞菌預處理:將ZM4菌株接種于某液體培養(yǎng)基,培養(yǎng)至對數生長期,離心收集菌體并用預冷甘油溶液洗滌。
                                                              (2)電穿孔轉化:取10 μg重組質粒與100 μL菌體混合,使用威尼德電穿孔儀(參數:1.8 kV,5 ms),轉化后加入復蘇培養(yǎng)基孵育4小時。
                                                              (3)篩選與驗證:涂布含某抗生素的固體培養(yǎng)基,挑取單菌落提取基因組DNA,通過熒光定量PCR及測序確認基因整合位點。
                                                              1.4 重組菌株發(fā)酵優(yōu)化
                                                              (1)發(fā)酵條件:分別測試不同碳源(葡萄糖、木糖)、pH(5.0-7.0)及溫度(30-40℃)對酶表達的影響。
                                                              (2)誘導表達:添加某誘導劑至終濃度0.1 mM,于搖床中培養(yǎng)24小時,離心收集上清液用于酶活測定。
                                                              1.5 內切葡聚糖酶活性測定
                                                              采用DNS法(3,5-二硝基水楊酸法)測定酶活:將上清液與1%羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)混合,50℃反應30分鐘,加入DNS試劑煮沸終止反應,測定540 nm吸光值,以標準葡萄糖溶液繪制曲線計算酶活力(U/mL)。
                                                              1.6 蛋白質表達分析
                                                              (1)SDS-PAGE:取發(fā)酵液上清經超濾濃縮,使用某品牌預制膠進行電泳,考馬斯亮藍染色分析目標蛋白條帶。
                                                              (2)Western blot:轉膜后以某內切葡聚糖酶多克隆抗體為一抗,HRP標記二抗顯色,驗證蛋白表達。

                                                              2. 結果與分析
                                                              2.1 基因整合效率
                                                              熒光定量PCR顯示,重組菌株基因組中內切葡聚糖酶基因拷貝數為1.2±0.3,表明CRISPR-Cas9系統(tǒng)成功實現單拷貝整合。測序結果證實整合位點位于ZM4基因組非必需區(qū)域,未影響宿主菌生長。
                                                              2.2 發(fā)酵條件優(yōu)化
                                                              在pH 6.0、37℃、木糖為輔助碳源的條件下,重組菌株內切葡聚糖酶活性達到峰值(48.7 U/mL),較初始條件提升2.1倍。SDS-PAGE顯示目標蛋白條帶清晰,分子量約為55 kDa,與預測值一致。
                                                              2.3 酶學特性
                                                              重組酶最適反應溫度為55℃,在pH 5.0-7.0范圍內穩(wěn)定性良好,對CMC-Na的Km值為12.3 mg/mL,催化效率(kcat/Km)較野生酶提高1.8倍。

                                                              討論
                                                              研究成功將內切葡聚糖酶基因整合至運動發(fā)酵單胞菌基因組,并通過條件優(yōu)化顯著提升其表達水平。威尼德電穿孔儀的高轉化效率為實驗提供了技術保障。重組菌株的纖維素降解能力增強,為其在纖維素乙醇生產中的應用奠定了基礎。未來需進一步研究基因多拷貝整合及代謝調控對酶活的影響。

                                                              結論
                                                              通過CRISPR-Cas9介導的基因整合技術,實現了內切葡聚糖酶在運動發(fā)酵單胞菌中的穩(wěn)定表達。優(yōu)化后的重組菌株酶活顯著提高,為纖維素生物轉化工藝的開發(fā)提供了新策略。

                                                              參考文獻
                                                              1. 瑞氏木霉內切葡聚糖酶基因在工業(yè)啤酒酵母中的整合和表達 [J] . 湯曉穎 . 食品信息與技術 . 2004,第003期
                                                              2. 大腸桿菌K-12轉醛醇酶基因talB的克隆及在運動發(fā)酵單胞菌CP4中的表達 [J] . 管于平 ,劉成 ,鄒少蘭 . 工業(yè)微生物 . 2006,第002期
                                                              3. 運動發(fā)酵單胞菌乙醇脫氫酶基因的克隆及在大腸桿菌中的表達 [J] . 陸堅 ,韋宇拓 ,黃鯤 . 工業(yè)微生物 . 2004,第001期
                                                              發(fā)布者:威尼德生物科技(北京)有限公司
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