T7共轉(zhuǎn)錄加帽試劑盒應(yīng)用：

體外RNA合成

T7共轉(zhuǎn)錄加帽試劑盒產(chǎn)品特點:

1)一步法化學(xué)加帽  一步到位，合成結(jié)束，可直接純化

2)嚴格的質(zhì)量管理規(guī)范 無殘留 

3)產(chǎn)生的mRNA活性更高

質(zhì)量控制：

純度≥95%，宿主DNA殘留≤100pg/mg，宿主蛋白殘留≤50ppm，內(nèi)毒素殘留≤10EU/mg，無RNA酶、核酸內(nèi)切酶、核酸外切酶、蛋白酶殘留，無菌，無病原體。
 

反應(yīng)體系（僅供參考）：

組分	體積（uL）	終濃度
T7 RNA Polymerase Mix	2	-
10×Transcription Buffer	2	1×
CTP / GTP/ ATP/ UTP (100 mM each)	2 each	10 mM each
Template DNA	1 µg	-
RNase free H2O	Up to 20	-

注意:反應(yīng)在室溫下進行，由于10×轉(zhuǎn)錄緩沖液中含有亞精胺，亞精胺濃度過高會導(dǎo)致DNA模板在低溫下沉淀。

備注:

1. 注意不要在反應(yīng)系統(tǒng)中混入RNase。

2. 實驗設(shè)備(如:移液器尖端、產(chǎn)品管等)應(yīng)嚴格使用RNase Free產(chǎn)品。

3.為了您的安全與健康，請穿白大褂，戴一次性手套。

4. 僅供研究使用!

常見問題解答：

1. 轉(zhuǎn)錄產(chǎn)量低

模板的質(zhì)量與成品率密切相關(guān)。試驗組的產(chǎn)量顯著低于對照組，可能的原因有:①實驗?zāi)０搴�有抑制成�?模板有問題。

建議:①重新純化模板;②確定模板定量及其完整性;③延長反應(yīng)時間;④增加模板輸入量;⑤嘗試其他啟動子和RNA聚合酶。

2. 短轉(zhuǎn)錄產(chǎn)量低

短轉(zhuǎn)錄起始片段會抑制該反應(yīng)。當轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物小于100 nt時，延長反應(yīng)時間至4-8 hs或增加模板量至2 μg均可提高RNA產(chǎn)量。

3.RNA轉(zhuǎn)錄長度大于預(yù)期

如果電泳顯示產(chǎn)物條帶大于預(yù)期條帶，可能的原因是:①質(zhì)粒模板可能沒有完全線性化;②感覺鏈3’端結(jié)構(gòu)突出;③RNA具有未完全變性的二級結(jié)構(gòu)。

建議:①檢查模板是否完全線性化，必要時進行額外線性化;②選擇合適的限制性內(nèi)切酶，避免3'外翻，或使用Klenow Fragment /T4 DNA聚合酶完成轉(zhuǎn)錄后再繼續(xù);③用變性凝膠檢測RNA產(chǎn)物。

4. RNA轉(zhuǎn)錄長度低于預(yù)期

如果電泳顯示產(chǎn)物條帶小于預(yù)期大小，可能的原因是:①模板中含有類似于T7 RNA聚合酶的終止序列;②模板中GC含量較高。

建議:①降低反應(yīng)溫度(如30℃)。有時降低溫度可以增加轉(zhuǎn)錄長度，但會降低產(chǎn)量。或者嘗試不同的RNA聚合酶進行轉(zhuǎn)錄;②若模板GC含量較高，可采用42℃轉(zhuǎn)錄，或添加SSB以增加產(chǎn)量和轉(zhuǎn)錄長度。

5. 轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物的電泳跟蹤

電泳過程中出現(xiàn)拖尾現(xiàn)象�？赡茉�因:①實驗操作過程中被RNase污染;②RNase污染DNA模板。

建議:①使用不含RNase的移液針尖和EP管，佩戴一次性乳膠手套和口罩，所有試劑均使用不含RNase的H2O制備。②重新純化模板DNA。

RAA/RPA試劑盒推薦：

HP90206-48 RT-RAA核酸擴增試劑盒(試劑條法)

HP90204-48 RT-RAA核酸擴增試劑盒(熒光法)

HP90202-48 RT-RAA核酸擴增試劑盒（基礎(chǔ)型）

HP90205-48 RAA核酸擴增試劑盒(試劑條法)

HP90203-48 RAA核酸擴增試劑盒(熒光法)

HP90201-48 RAA核酸擴增試劑盒（基礎(chǔ)型）