師兄做了轉(zhuǎn)錄組測序?qū)嶒�，老師說讓我從這個數(shù)據(jù)里挖掘一下信息作為我下一步課題的開始，我該怎么做呢？估計很多科研者都會碰到此類的問題。轉(zhuǎn)錄組測序一般是通過高通量的方式把對照組和實驗組的所有基因的RNA表達水平差異檢測出來，雖然數(shù)據(jù)只有參考價值，但是可以進行大批量的篩選差異基因，進行進一步的驗證，這也是大家都會用到的方法。通過轉(zhuǎn)錄組測序選擇差異基因，需要繼續(xù)在動物模型和細胞實驗中驗證基因功能，其中細胞實驗基因功能驗證小編前面已經(jīng)寫過，在此就不表述了，下面講講動物模型中的檢驗；
 
1. 首先通過查閱文獻以及其他人已發(fā)布的芯片數(shù)據(jù)，進行目標疾病或者目標表現(xiàn)的差異基因資料查詢，此外也可以自己收集對照組和處理組的樣本進行轉(zhuǎn)錄組測序，分析數(shù)據(jù)，最終都是確定預期靶標基因；
2. QPCR、WB或者免疫組化實驗進行表達量驗證：一般先進行QPCR表達量驗證，若是臨床疾病的差異基因A，可以使用臨床樣本的免疫組化/免疫熒光進行差異基因表達量驗證；
 
免疫熒光實驗驗證表達量：
  
3. 確定表達確實有差異后，進行動物模型造模，動物模型種類比較多，下面簡單列一些，針對這些模型進行下列實驗：
 

裸鼠成瘤模型	大鼠皮下植入模型
大鼠頸動脈狹窄模型	大鼠皮膚缺損模型
大鼠膽結(jié)石模型	兔骨缺損模型
小鼠肺損傷模型	大鼠MCAO模型
豚鼠過敏性鼻炎模型	小鼠胚胎種植
大鼠脊髓損傷模型	大鼠心肌損傷模型
大鼠細菌肺炎模型	大鼠脂肪肝模型
大鼠一型糖尿病模型	大鼠肝纖維化模型
大鼠一型糖尿病模型	大鼠結(jié)腸炎模型
大鼠心肌缺血再灌注模型	大鼠酒精性肝炎模型
大鼠腹部感染模型	大鼠睡眠剝奪模型
大鼠血糖波動模型	小鼠腸炎模型
小鼠動脈粥樣硬化模型	呼吸系統(tǒng)疾病動物模型
大鼠腦死亡模型	大鼠坐骨神經(jīng)壓迫致痛模型
小鼠銀屑病模型	6-OHDA損毀建立部分損傷PD模型

（1）動物造模預實驗（通過文獻查閱，設計模型預實驗，判斷動物造模成功率以及時間安排情況，此處以大鼠頸動脈狹窄模型作為案例）
①對照組，6只
②模型組，6只
頸動脈狹窄（CAS）模型建立：Wistar 大鼠，麻醉后暴露小鼠單側(cè)頸總動脈，夾閉頸總動脈，在頸動脈近心端切開小口，使用導絲探入頸總動脈旋轉(zhuǎn)摩擦破壞動脈內(nèi)膜。生理鹽水沖洗動脈腔，縫合切口，恢復血運。
 
取材：
a造模后在15d和24d對2組動物分別處死3只，取狹窄側(cè)頸動脈標本進行HE染色，判斷造模效果。
B 造模后15d和24d取血清以及狹窄側(cè)頸動脈標本進行-80凍存，進行QPCR和WB檢測，初步判斷A基因在此模型中表達量是否有差異，此外A基因調(diào)控的下游信號通路：例如周期或者凋亡相關(guān)信號通路是否也有差異。
 
HE結(jié)果顯示頸動脈造模效果
 
WB檢測結(jié)果（A基因和內(nèi)參actin） （2）動物正式實驗（此處以大鼠頸動脈狹窄模型作為案例，抑制劑為目標基因A的抑制劑，進行動物注射，也可以用腺相關(guān)病毒注射進行A基因的過表達或者敲低）
①對照組，6只
②模型組，6只
③模型組+抑制劑，6只
 
造模15d后，全部處死取材：血清、頸動脈狹窄端、糞便，進行生化檢測、ELISA檢測、HE、免疫熒光檢測、QPCR、WB、16s細菌多樣性檢測等方法進行后續(xù)機制研究；
 
Α-SMA免疫熒光染色結(jié)果
對照組

 
模型組

 
模型組+抑制劑組

 
ELISA檢測結(jié)果
 
常規(guī)的動物造模實驗都會包含預實驗，正式實驗。而正式實驗就需要通過常規(guī)的病理染色、蛋白平臺、分子平臺等實驗手段，可能還會增加微生物實驗、CT掃描、TTC染色、行為學檢測等，這些都因為模型不同研究的通路不同而有所差異，但是思路都是相通的，需要了解這個模型足夠多的背景文獻和已經(jīng)發(fā)表的機制進展，進而選擇可能的新機制。