干細胞成骨、成脂、成軟骨三系分化 的操作方法
瀏覽次數:2539 發(fā)布日期:2022-6-10
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間充質干細胞屬于成體干細胞,在體外不同條件下誘導分化為骨、軟骨及其他結締組織,因其來源廣泛,分離無創(chuàng)傷,較低的免疫原性、生長周期短等特點,是組織工程種子細胞的重要來源。干細胞的誘導分化一方面是干細胞鑒定的主要方法,另一方面也是干細胞功能學研究的主要途徑。采用體外條件培養(yǎng)基誘導培養(yǎng)下,人間充質干細胞應能夠分化為成脂肪、骨、軟骨細胞。成脂分化經油紅O染色法鑒定,成骨分化經茜素紅染色法鑒定,成軟骨分化經阿爾辛藍染色法鑒定。
成骨誘導分化步驟
1.接種骨髓間充質干細胞:取對數生長期的細胞,按照2×104cells/cm2的細胞密度接種至包被后的培養(yǎng)器皿中,于37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)至匯合度60-70%,棄掉上清,加入成骨誘導分化培養(yǎng)基。
2.細胞分化誘導:每2-3天更換成骨誘導培養(yǎng)基,于37℃,5%CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)約14-21天,并注意觀察細胞形態(tài)變化。根據細胞鈣鹽結晶析出和鈣質結節(jié)形成的情況,決定終止細胞誘導的時間,進行染色鑒定。
3.細胞固定:吸去培養(yǎng)基使用適量1×PBS清洗一次,棄去后取適量4%中性甲醛溶液覆蓋培養(yǎng)器皿底面,室溫固定30-60 min,棄去固定液再使用1×PBS清洗兩次。
4.茜素紅染色:加入適量茜素紅染液染3~5min,吸去茜素紅染液,用1×PBS清洗兩次,并加入適量1×PBS避免細胞干燥。
5.誘導評估:顯微鏡下觀察成骨染色效果,并進行圖像采集和誘導評估。誘導成功時,鈣質結節(jié)會與茜素紅染料結合后呈現紅色或橘紅色。
成脂誘導分化步驟
1.接種骨髓間充質干細胞:取對數生長期的細胞,按照2×104cells/cm2的細胞密度接種至包被后的培養(yǎng)器皿中,于37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)至匯合度90-100%,棄掉上清,加入成脂誘導分化培養(yǎng)基誘導液。
2.細胞分化誘導:于37℃,5%CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)約3天,更換為成脂誘導分化培養(yǎng)基誘導液,培養(yǎng)1天后,再更換為成脂誘導分化培養(yǎng)基維持液,繼續(xù)培養(yǎng)3天。
按照以上換液頻率誘導14-21天,并注意觀察細胞形態(tài)變化。根據細胞誘導形成的脂滴數量和大小,決定終止細胞誘導的時間,并進行染色鑒定。
3.細胞固定:吸去培養(yǎng)基,使用適量1×PBS清洗一次,棄去后取適量4%中性甲醛溶液覆蓋培養(yǎng)器皿底面,室溫固定30-60min,棄去固定液再使用1×PBS清洗兩次。
4.油紅O染色:取生理鹽水或1×PBS與油紅O原液配制油紅O工作液(油紅O原液: 生理鹽水=3:2),現用現配。向清洗干凈的誘導孔內加入適量工作液,靜置染色30min;吸走油紅O工作液,用1×PBS清洗兩次,并加入適量1×PBS避免細胞干燥。
5.誘導評估:顯微鏡下觀察成脂染色效果,并進行圖像采集和誘導評估;誘導成功時,脂滴會與油紅O染料結合后呈現紅色或橘紅色。
成軟骨平面誘導分化步驟
1.將對數生長期的細胞消化下來計數,成軟骨誘導分化培養(yǎng)基細胞重懸細胞,離心后調整細胞密度密度1-2.0×107cells/mL。
2.20μL懸滴到24孔板中央。(20μL含有4×105細胞)。37℃培養(yǎng)3h使細胞貼壁。
3.補充200uL誘導分化培養(yǎng)基正常培養(yǎng),每隔2-3天換液一次。按照以上換液頻率誘導21-28天,并注意觀察細胞形態(tài)變化。
4.細胞固定:吸去培養(yǎng)基使用適量1×PBS清洗一次,棄去后取適量4%中性甲醛溶液覆蓋培養(yǎng)器皿底面,室溫固定30-60min,棄去固定液再使用1×PBS清洗兩次。
5.阿利新藍染色:向清洗干凈的誘導孔內加入適量染色液,避光靜置染色30min。吸去阿利新藍染色液,用1×PBS清洗兩次,并加入適量1×PBS避免細胞干燥。
6.誘導評估:顯微鏡下觀察成軟骨染色效果,并進行圖像采集和誘導評估。誘導成功時,軟骨組織中的內酸性粘多糖可被阿利辛藍染成藍綠色。
NOTE:間充質干細胞的成軟骨分化水平因細胞類型、細胞供體來源、培養(yǎng)條件、細胞代次、細胞狀態(tài)和分化時間等因素而異。
成軟骨三維誘導分化步驟
1.間充質干細胞的準備:將對數生長期的細胞消化下來計數,取3×105個細胞轉移到15mL離心管中,250g離心4min。
棄上清,加入0.5mL成軟骨誘導分化培養(yǎng)基基礎液,重懸細胞,150g離心5min。小心棄去上清,加入0.5mL成軟骨誘導分化培養(yǎng)基誘導液,重懸細胞,150g離心5min。
將15mL離心管的管蓋稍稍旋開,放置于37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)。
2.細胞分化誘導:24h后觀察細胞沉淀形變團聚的情況,如有明顯的變化,則小心輕柔地撥動管底,嘗試讓細胞團脫離管底,全部浸潤在誘導液中。
置于37℃,5%CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)約21天,通常每2天更換一次新鮮配制的成軟骨誘導分化培養(yǎng)基誘導液。注意觀察細胞團成球情況及表面光滑度,決定終止細胞誘導的時間,并進行染色鑒定。
3.染色鑒定
a)軟骨球固定:將軟骨球從離心管中轉移至EP管,并使用1×PBS清洗兩次,最后置于適量的4%中性甲醛溶液中。
b)石蠟包埋切片:軟骨球經石蠟包埋后切片。
c)阿利辛藍染色:將石蠟切片脫蠟,使用阿利辛藍染液染色30min,用自來水流水沖洗2min,蒸餾水沖洗1次。
d)誘導評估:顯微鏡下觀察成軟骨染色效果,并進行圖像采集和誘導評估。誘導成功時,軟骨組織中的內酸性粘多糖可被阿利辛藍染成藍綠色。
NOTE: 間充質干細胞的成軟骨分化水平因細胞類型、細胞供體來源、培養(yǎng)條件、細胞代次、細胞狀態(tài)和分化時間等因素而異。