關鍵詞:類細胞微囊泡、基因遞送、細胞轉(zhuǎn)染、難轉(zhuǎn)染細胞的新型基因遞送技術。
新加坡國立大學研究團隊在本研究中,介紹了一種新型的基于微細胞囊泡技術 ( micro Cell Vesicle Technology mCVT)的嵌合型基因遞送平臺系統(tǒng)。這種基因遞送平臺系統(tǒng)由細胞膜和陽離子脂質(zhì)融合而成,被用于提高難轉(zhuǎn)染(hard-to-transfect HTT)細胞的轉(zhuǎn)染效率。微細胞囊泡的細胞膜成分賦予整個復合體胞吞特異性,減少了轉(zhuǎn)染過程中的復合體細胞毒性,而陽離子脂質(zhì)負責與遺傳物質(zhì)相結(jié)合,同時為mCVTs提供了結(jié)構完整性。
圖1 利用類細胞微囊泡技術進行難轉(zhuǎn)染細胞的轉(zhuǎn)染過程示意
背景
基因遞送是將外來DNA引入真核細胞的過程。如在基礎研究(如藥物發(fā)現(xiàn)和功能蛋白的機理研究)和臨床應用(如基因治療)中傳遞治療性或功能性基因以改變細胞過程。有效的基因轉(zhuǎn)染不僅需要成功地將外來核酸引入細胞,而且還需要它們隨后在細胞中的轉(zhuǎn)運和表達。這是一項具有挑戰(zhàn)性的任務,因為DNA分子本身是帶負電荷,因此在其常規(guī)形式下很難被細胞內(nèi)化。因此,人們對開發(fā)有效的基因傳遞系統(tǒng)產(chǎn)生了極大的興趣。在過去的幾十年里,人們探索了大量的載體系統(tǒng),從基于病毒的遞送系統(tǒng)到非病毒載體。盡管非病毒基因遞送載體的轉(zhuǎn)染效率相對較低,但在安全性和臨床接受度方面有望成為首選,其中陽離子脂質(zhì)系統(tǒng)和基于聚合物的平臺是主要的例子。表1總結(jié)了目前常用的轉(zhuǎn)染試劑或方法的主要優(yōu)缺點。
表1 目前主要轉(zhuǎn)染試劑/方法的優(yōu)缺點
理想的非病毒基因遞送系統(tǒng)應能有效地將所需的DNA分子遞送到特定的細胞類型中,且細胞毒性最小,以確保目標基因的最大表達。然而,據(jù)我們所知,目前市售的轉(zhuǎn)染試劑明顯達不到這些標準,特別是當它們被用于轉(zhuǎn)染難轉(zhuǎn)染(HTT)細胞時。
表2 常用轉(zhuǎn)染試劑與方法對HTT細胞的轉(zhuǎn)染效率
HTT細胞通常包括原代細胞、胚胎干細胞和一些永生化細胞系,如3T3-L1(小鼠前脂肪細胞)、U937(人單核細胞)、Jurkat(人T淋巴細胞)、HUVEC(人臍靜脈內(nèi)皮細胞)等。據(jù)統(tǒng)計使用市售試劑對HTT細胞進行質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的效率經(jīng)常不超過25%。HTT細胞對外來物質(zhì)和質(zhì)粒的吸收率低的原因之一是其代謝活性低。此外,這些細胞通常對所使用的轉(zhuǎn)染試劑引起的細胞擾動非常敏感,有可能導致細胞毒性,最終導致細胞死亡。
最近,鑒于細胞來源的遞送系統(tǒng)有可能在一定程度上特異性地將活性貨物分子遞送到目標部位,因此獲得了相當?shù)年P注。事實上,許多研究已經(jīng)探索了使用單核細胞衍生的藥物遞送系統(tǒng)(DDS)來定向遞送化療藥物和質(zhì)粒DNA(pDNA)到腫瘤,或者使用紅細胞衍生的DDS來延長血液循環(huán)和定向遞送pDNA到血細胞中。據(jù)推測,保留母體細胞的細胞膜成分將賦予這些基于細胞的藥物遞送系統(tǒng)識別特定目標細胞的能力,可能通過逃避身體免疫系統(tǒng)的識別能力來促進。
盡管有重大的治療意義,但迄今為止,基于細胞的DDS在基因傳遞方面的全部潛力在很大程度上仍未得到開發(fā)。需要解決的關鍵挑戰(zhàn)包括細胞來源的DDS(如外泌體形式)的繁瑣和低通量分離/生產(chǎn)過程以及次優(yōu)的基因裝載/復合技術。因此,雖然這些系統(tǒng)在內(nèi)在的靶向性方面似乎很有優(yōu)勢,但它們在產(chǎn)量和pDNA裝載效率方面有很大的局限。因此,為了克服這些限制,我們在此提出開發(fā)一種新型的嵌合基因遞送系統(tǒng),該系統(tǒng)由細胞膜成分和陽離子脂質(zhì)成分組成,前者用于增強靶細胞的內(nèi)化,后者用于增強pDNA的裝載。
在這項研究中,我們首次描述了微細胞囊泡技術(mCVTs)的發(fā)展,這是一種通過陽離子脂質(zhì)與細胞膜融合而獲得的新型混合遞送平臺。為了生產(chǎn)mCVTs,首先用低滲水溶液處理細胞來獲得鬼影細胞(CG無細胞質(zhì)于細胞器細胞),如Goh等人所描述的。低滲溶液在質(zhì)膜上形成短暫的開口,允許清除細胞內(nèi)的內(nèi)容物,同時保持質(zhì)膜的完整性。來自不同細胞懸浮在水介質(zhì)中的CG被用來水化干燥的DOTAP脂質(zhì)薄膜,隨后通過脂質(zhì)體擠出儀擠出,提供與擠出的DOTAP脂質(zhì)體相似的平均流體力學尺寸和Zeta電位的mCVTs。在這項研究中,我們證明了mCVTs能夠與質(zhì)粒復合并被目標細胞內(nèi)化,而且細胞毒性最小。有趣的是,當從不同細胞類型產(chǎn)生的mCVTs在體外進行比較時,對于mCVTs所來源的細胞類型,它們顯示出明顯更高的轉(zhuǎn)染效率。
圖2 mCVTs及其結(jié)構組件的示意圖
方法與結(jié)果
制備鬼影細胞(CG無細胞質(zhì)與細胞器細胞膜)以確保mCVTs的可重復性和安全狀況。方法與結(jié)果 略
mCVTs的生產(chǎn)和特征分析。
與脂質(zhì)體生產(chǎn)類似,脂質(zhì)薄膜法被用來生產(chǎn)mCVTs。DOTAP薄膜與CG水合,形成包裹CG的大型多分子脂質(zhì)體。這種懸浮液被擠出,來自CG的漿膜含有DOTAP脂質(zhì)(如圖3A所示)。按照我們小組以前建立的方法,證明在擠壓后,這樣產(chǎn)生的mCVTs由脂質(zhì)和CG膜的融合組成。一般來說,mCVT的大小分布與脂質(zhì)體相似。為了證明這種方法在各種細胞系中的穩(wěn)健性和通用性,使用來自不同細胞系的CG制作了mCVTs,如一些HTT細胞(即3T3-L1)和非癌細胞(即HEK293和RAW264.7)。如圖3B所示,各種mCVTs的流體力學尺寸和PDI通常在400納米的范圍內(nèi)(PDI∼0.4),與使用相同擠壓方法生產(chǎn)的DOTAP脂質(zhì)體(PDI∼0.2)類似。在圖3C中,不同的配方觀察到類似的zeta電位值(約+30 mV至+40 mV),表明這種方法普遍適用于從不同細胞系產(chǎn)生的CG。有趣的是,當mCVT3T3-L1與pDNA復配時,其大小分布與未復配的mCVTs相似,而整體zeta電位變?yōu)樨撝担@可能表明復配成功(因為帶負電的pDNA使帶正電的mCVTs中和)。
圖3 mCVTs的生產(chǎn)和表征
A. mCVTs的示意圖,涉及細胞鬼魂和水合薄膜制成的脂質(zhì)體的融合。B. 不同的mCVTs和帶有質(zhì)粒的mCVT3T3-L1的水動力尺寸與DOTAP脂質(zhì)體相比。所有mCVTs的尺寸都小于500納米。C. 與DOTAP脂質(zhì)體相比,不同的mCVTs和帶質(zhì)粒的mCVT3T3-L1的Zeta電位。所有mCVTs的Zeta電位都在+30 mV以上,除了帶有質(zhì)粒DNA(5 µg)的mCVT3T3-L1,由于與質(zhì)粒DNA的相互作用而顯示出負的Zeta電位。數(shù)據(jù)代表平均值 ± SD(n = 3)。
圖 原文中mCVTs制備與所用脂質(zhì)體擠出器描述