細(xì)胞培養(yǎng)所用玻璃及塑料制品的清洗與消毒

清洗

在組織細(xì)胞培養(yǎng)中，體外細(xì)胞對(duì)任何有害物質(zhì)都非常敏感。微生物產(chǎn)品附帶雜物，上次細(xì)胞殘留物及非營(yíng)養(yǎng)成分的化學(xué)物質(zhì)，均能影響培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)。因此對(duì)新使用玻璃器 皿和重新使用的培養(yǎng)器皿都要嚴(yán)格徹底的清洗，且要根據(jù)器皿的組成材料不同，選擇不同 的清洗方法。

玻璃器皿的清洗

組織細(xì)胞培養(yǎng)中，使用量最大的是玻璃器皿，故工作最最大的是玻璃器皿的清洗。一般玻璃器皿的清洗包括浸泡、刷洗、浸酸和沖洗四個(gè)步驟。清洗后的玻璃器皿不僅要求干凈透明無(wú)油跡，而且不能殘留任何物質(zhì)。

（1）浸泡：初次使用和培養(yǎng)使用后的玻璃器皿均需先用清水浸泡，以使附著物軟化或被 溶液掉。新的初次使用的玻璃器皿，在生產(chǎn)及運(yùn)輸過(guò)程中，玻璃表面帶有大量的干固的灰塵，且玻璃表面常呈堿性及帶有一些對(duì)細(xì)胞有害的物質(zhì)等。新瓶使用前應(yīng)先用自來(lái)水簡(jiǎn)單刷洗，然后用稀鹽酸液浸泡過(guò)夜，以中和其中的堿性物質(zhì)。再次使用的玻璃器皿則常附有 大量剛使用過(guò)的蛋白質(zhì)，干固后不易洗掉，故用后要立即浸入水中，且要求完全浸入，不 能留有氣泡或浮在液面上。

（2）刷洗：浸泡后的玻璃器皿一般要用毛刷沾洗滌劑刷洗，以除去器皿表面附著較牢的 雜質(zhì)。刷洗要適度，過(guò)度會(huì)損害器皿表面光澤度。

（3）浸酸：清潔液是由重鉻酸鉀、濃硫酸和蒸餾水按一定比例配制而成，其處理過(guò)程稱為浸酸。清潔液對(duì)玻璃器皿無(wú)腐蝕作用，而其強(qiáng)氧化作用可除掉刷洗不掉的微量雜質(zhì)。清 潔液去污能力很強(qiáng)。是清洗過(guò)程中關(guān)鍵的一環(huán)。浸泡時(shí)器皿要充滿清潔液，勿留氣泡或器 皿露出清潔液面。浸泡時(shí)間一般為過(guò)夜，不應(yīng)少于 6 小時(shí)。 清潔液可根據(jù)需要，配制成 不同的強(qiáng)度，常用的下列三種： 重鉻酸鉀（g）濃硫酸（ml）蒸餾水（ml）（A）強(qiáng) 清潔液 63∶1000∶200000（B）次強(qiáng)清洗液 120∶200∶1000（C）弱清潔液 100∶100∶100。

清潔液配制時(shí)應(yīng)注意安全，須穿戴耐酸手套和圍裙，并要保護(hù)好面部及身體裸露部分。配制過(guò)程中可使重鉻酸鉀溶于水中，然后慢慢加濃硫酸。并不停的用玻璃棒攪拌，使產(chǎn)生的熱量揮發(fā)，配制過(guò)程中可使重鉻酸鉀溶于水中，然后慢慢加濃硫酸。并不停的用玻璃棒 攪拌，使產(chǎn)生的熱量揮發(fā)，配制溶液應(yīng)選擇塑料制品。配成后清潔液一般為棕紅色。

（4）沖洗：玻璃器皿在使用后，刷洗及浸泡后都必須用水充分沖洗。使之盡量不留污染或潔液的殘跡。沖洗最好用洗滌裝置。即省力、效果又好。如用手工操作，則需流水沖洗十次以上，每天水須灌滿及倒干凈，最好用蒸餾水清洗 3-5 次，晾干備用。

膠塞的清洗

細(xì)胞培養(yǎng)中所用的橡膠制品主要是瓶塞。新購(gòu)置的瓶塞帶有大量滑石粉及雜質(zhì)，應(yīng)先 用自來(lái)水沖洗，再做常規(guī)處理，常規(guī)清洗方法是：每次用后立即置入水中浸泡，然后用2% NaOH 或洗衣粉煮沸 10-20 分鐘，以除掉培養(yǎng)中的蛋白質(zhì)。自來(lái)水沖洗后，再用 1% 稀 鹽酸浸泡 30 分鐘或蒸餾水沖洗后再煮沸 10-20 分鐘，晾干備用。

塑料制品的清洗塑料自制品現(xiàn)多是采用無(wú)毒并已經(jīng)特殊處理的包裝，打開(kāi)包裝即可用，多為一次性物品。必要時(shí)用 2% NaOH 浸泡過(guò)夜，用自來(lái)水充分沖洗，再用 5% 鹽酸溶液浸泡 30 分鐘， 最后用自來(lái)水和蒸餾水沖洗干凈，晾干備用。

消毒

細(xì)胞培養(yǎng)的最大危險(xiǎn)是發(fā)生培養(yǎng)物的細(xì)菌，真菌和病毒等微生物的污染。污染主要是 由于操作者的疏忽而引起，常見(jiàn)的原因有操作間或周?chē)�空間的不潔，培養(yǎng)器皿和培養(yǎng)液消毒不合格或不徹底。由于有關(guān)培養(yǎng)的每個(gè)環(huán)節(jié)的失誤均能導(dǎo)致培養(yǎng)失敗，故細(xì)胞培養(yǎng)的每個(gè)環(huán)節(jié)都應(yīng)嚴(yán)格遵守操作常規(guī)，防止發(fā)生污染。 消毒方法分為三類(lèi)：物理滅菌法（紫外線、濕熱、干烤、過(guò)濾等），化學(xué)滅菌法（各種化 學(xué)消毒劑）和抗生素。

（1）紫外線消毒：用于空氣，操作臺(tái)表面和不能使用其它法進(jìn)行消毒和培養(yǎng)器皿。紫外線 直接照射方便、效果好，經(jīng)一定的時(shí)間照射后，可以消滅空氣中大部分細(xì)菌，培養(yǎng)室紫外 線燈應(yīng)距地面不超過(guò) 2.5 米，且消毒進(jìn)物品不宜相互遮檔，照射不到的地方起不到消毒作 用。紫外線可產(chǎn)生臭氧，污染空氣，試劑及培養(yǎng)液都有不良影響，對(duì)人皮膚也有傷害，不 宜近照射。

（2）溫?zé)嵯�毒：即高壓蒸氣消毒，是一種使用最廣泛、效果最好的消毒方法。溫?zé)嵯�毒時(shí)， 消毒物品不能裝得過(guò)滿，以防止消毒器內(nèi)氣體阻塞而千百萬(wàn)危險(xiǎn)，保證其內(nèi)氣體的流通。 在加熱升壓之前，先要打開(kāi)排氣閥門(mén)排放消毒器內(nèi)的冷空氣，冷氣空氣排出后，關(guān)閉排氣 閥門(mén)，同時(shí)檢驗(yàn)安全閥活動(dòng)自如，繼后開(kāi)始升壓，當(dāng)達(dá)到所需壓力時(shí)，開(kāi)始記算消毒時(shí)間。 消毒過(guò)程中，操作者不能離開(kāi)工作崗位，要定時(shí)檢查壓力及安全，防止消毒及表皮意外事 件發(fā)生。

常用物品消毒壓力及時(shí)間：

培養(yǎng)液、平衡鹽溶液及其它需要滅菌的液體：121℃, 15 磅, 20 分鐘；

布類(lèi)、玻璃制品、金屬器械等物品：先 121℃, 15 磅, 20 分鐘，然后在烘箱中烘干；

玻璃瓶：干熱滅菌 170℃, 4 小時(shí)。

（3）化學(xué)消毒法：最常見(jiàn)的是 70% 酒精及 1‰ 的新潔而滅，前者主要用于操作者的皮膚， 操作臺(tái)表面及無(wú)菌室內(nèi)的壁面處理。后者則主要用器械的浸泡及皮膚和操作室壁面的擦試消 毒。化學(xué)消毒法操作簡(jiǎn)單、方便有效。

（4）抗生素消毒：主要用于培養(yǎng)用液滅菌或預(yù)防培養(yǎng)物污染。

細(xì)胞培養(yǎng)常用物品

細(xì)胞培養(yǎng)基

目前，市場(chǎng)上可提供干粉培養(yǎng)基和液體培養(yǎng)基。干粉培養(yǎng)基需使用者自己配制并滅菌，其優(yōu)點(diǎn)是價(jià)格便宜。缺點(diǎn)是配制過(guò)程繁瑣，質(zhì)量不易控制。液體培養(yǎng)基是由專(zhuān)業(yè)產(chǎn)家按標(biāo)準(zhǔn)規(guī)�；�生產(chǎn)，不僅質(zhì)量得到保證，而且使用十分方便。

血清（略）

平衡鹽液體

PBS（Phosphate-Buffered Sallines）

DPBS（Dulbecco’s Phosphate-Buffered Sallines）標(biāo)準(zhǔn)型

Hanks’ 平衡鹽溶液（Hanks’ Balanced Salt Solutions，HBSS）

D-Hanks’ 平衡鹽溶液 (D-Hanks Balanced Salt Solutions, D-HBSS)

消化液：

分離組織和分散細(xì)胞。常用的有胰蛋白酶和二乙胺四乙酸二鈉 (EDTA) 兩種溶液�？梢� 單獨(dú)使用，也可以混合使用。

（1）胰蛋白酶溶液

胰蛋白酶（簡(jiǎn)稱胰酶）是一種黃白色粉末，易潮解，應(yīng)放置冷暗干燥處保存。目前應(yīng)用的胰蛋白酶主要來(lái)自牛或豬的胰腺。胰酶的主要作用是使細(xì)胞間的蛋白質(zhì)水解，使細(xì)胞相 互離散。胰酶對(duì)細(xì)胞的分離作用與細(xì)胞的種類(lèi)和細(xì)胞的特性有密切關(guān)系。一般來(lái)講，胰酶濃度大、作用溫度高、作用時(shí)間長(zhǎng)，對(duì)細(xì)胞分離能力也大，但超過(guò)一定的限度會(huì)損傷細(xì)胞。胰 酶溶液在 pH8.0，溫度為 37℃ 時(shí)，作用能力最強(qiáng)。注意：鈣離子、鎂離子和血清蛋白的存在會(huì)降低胰酶活力。因此，胰酶溶液常用無(wú) Ca2+、Mg2+的 D-Hanks』 平衡鹽溶液配制成 0.25% 溶液。消化細(xì)胞時(shí)，加入一些血清或含血清的培養(yǎng)液，或胰蛋白酶抑制劑能終止胰蛋白酶對(duì) 細(xì)胞的消化作用。

胰蛋白酶溶液配制：

（1）稱取胰蛋白酶粉末置燒杯中，先用少許 D-Hanks 平衡鹽溶液（pH7.2 左右）調(diào)成糊狀， 然后再補(bǔ)足 D-Hanks 平衡鹽溶液，攪拌混勻，置室溫 4 小時(shí)或冰箱過(guò)夜，并不斷攪拌振蕩；

（2）次日，先用濾紙粗濾，再進(jìn)行過(guò)濾除菌，分裝入瓶中，低溫冰箱保存?zhèn)溆茫�常用濃�?為 0.25% 或 0.125%。胰蛋白酶溶液偏酸，使用前可調(diào)用碳酸氫鈉溶液調(diào) pH 至 7.2 左右。

保存條件：配制好的胰蛋白酶溶液必須保存在-20℃ 冰箱中，以免分解失效。

EDTA•4Na 溶液

EDTA 是一種化學(xué)螯合劑，對(duì)細(xì)胞有一定的離觧作用，而且毒性小，價(jià)格低廉，使用方便。 常用工作液濃度為 0.02%。通常與 0.25% 的胰蛋白酶溶液按 1：1 混合使用（混合液）。

注意：使用 EDTA 處理細(xì)胞后，一定要用 Hanks 液沖洗干凈，因殘留的 EDTA 會(huì)影響

細(xì)胞生長(zhǎng)。

EDTA 溶液配制：用無(wú)鈣、鎂的 D-HBSS 平衡鹽溶液溶解后，高壓蒸汽滅菌，分裝成小瓶， 室溫或 4℃ 冰箱保存。

胰蛋白酶–EDTA•4Na 溶液（0.05% 胰蛋白酶, 0.53 mM EDTA•4Na）

0.5 g 胰蛋白酶＋0.2 gEDTA•4Na＋1L D-HBSS。-20℃ 冰箱中保存。

pH 調(diào)整液

（1）NaHCO3 溶液

常用濃度為 7.5%。配制時(shí)用三蒸水溶解后，過(guò)濾除菌，分裝，4℃ 冰箱或室溫保存。 當(dāng) pH 值超過(guò)后，可用高壓滅菌的 10％ 醋酸溶液或通入 CO2 氣體方法調(diào)節(jié)。

（2）HEPES（分子量 238.31）溶液

HEPES 使用終濃度一般為 10-50 mM, 但通常配成 1M 儲(chǔ)存液：用 200 ml 雙蒸水溶解 47.6 克 HEPES，用 1N NaOH 調(diào)節(jié) pH 至 7.5-8.0; 然后過(guò)濾除菌，分裝小瓶，室溫或 4℃ 保存。 抗生素溶液

酚紅：

大多數(shù)培養(yǎng)液中使用酚紅作為 pH 指示劑。紅色表示中性 pH，黃色代表酸性 pH，紫色表 示堿性 pH。但是，在一些特殊培養(yǎng)液中不含酚紅，因?yàn)橐延幸恍┭芯勘砻鳎悍蛹t能模擬類(lèi)固醇激素（尤其是雌激素）樣作用。

丙酮酸鈉：

是細(xì)胞液中細(xì)胞的另一種碳源。D-葡萄糖是細(xì)胞優(yōu)選碳源，但是當(dāng)培養(yǎng)液中 D-葡萄糖耗 盡時(shí)，細(xì)胞可以代謝丙酮酸鈉獲取碳源。

抗生素

哺乳動(dòng)物細(xì)胞冷凍保存

主要目的：（1）保存種子細(xì)胞，以便隨時(shí)取用。這是保存細(xì)胞的最主要目的。

（2）減少細(xì)胞被微生物污染的危險(xiǎn)性。

（3）減少細(xì)胞之間交叉污染的危險(xiǎn)性。

（4）減少細(xì)胞因傳代培養(yǎng)而引起的遺傳變異和形態(tài)改變。

（5）避免有限細(xì)胞系出現(xiàn)衰老或惡性轉(zhuǎn)化。

(6) 降低人力和物力。

冷凍保存要點(diǎn)：（1）冷凍過(guò)程要緩慢。需要冷凍保存的細(xì)胞先在 4℃ 冰箱中放置 30－60 分鐘；然后轉(zhuǎn)入-20℃，放置 30 分鐘；然后再轉(zhuǎn)入-80℃ 放置 16－18 小時(shí)（或過(guò)夜）；最后放入液氮中長(zhǎng)期保存。有條件的地方，可用程控降溫儀，按每分鐘-1 到 -3℃ 速度降溫，一直 到-80℃ 以下，然后直接放入液氮中長(zhǎng)期保存。

（2）凍存細(xì)胞必須處在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期，活力大于 90％，無(wú)微生物污染。

（3）細(xì)胞濃度控制在：1×107－5×107/ml。

（4）使用高濃度血清或蛋白保護(hù)劑。一般情況下，用于冷凍保存完全細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)液中血 清濃度大于 20％。

（5）使用合適的細(xì)胞冷凍保護(hù)劑，以保護(hù)細(xì)胞在冷凍過(guò)程中免受冰晶破壞。目前，最常用 的冷凍保護(hù)劑是 DMSO(二甲基亞砜)，使用終濃度為 5－10％。但是，有些細(xì)胞系不能用 DMSO 作為冷凍保護(hù)劑，如人白血病細(xì)胞系 HL-60。因?yàn)�，DMSO 能誘導(dǎo) HL-60 細(xì)胞分化。在這種情 況下，可選用其它冷凍保護(hù)劑，如甘油（glycele）, 羥乙基淀粉等。

特別注意：（1）細(xì)胞在冷凍過(guò)程中在-20℃ 冰箱內(nèi)放置時(shí)間不可超過(guò) 1 小時(shí)，以防止冰 晶過(guò)大而破壞細(xì)胞。也可跳過(guò)-20℃ 這一步驟直接放入-80℃ 冰箱中，但這樣做細(xì)胞存活率要

低一些。

（2）DMSO 稀釋時(shí)會(huì)釋放大量熱量。因此，DMSO 不能直接加到細(xì)胞液中，必須事先配制。

（3）DMSO 必須是細(xì)胞培養(yǎng)級(jí)別的。新買(mǎi)的 DMSO 本身處于無(wú)菌狀態(tài)，第一次開(kāi)瓶后應(yīng) 立即少量分裝于無(wú)菌試管或瓶中，4℃ 保存。避免反復(fù)凍融造成 DMSO 裂解產(chǎn)生有 害物質(zhì)。并可減少污染機(jī)會(huì)。如要過(guò)濾 DMSO，必須選用耐 DMSO 的尼龍濾膜。

細(xì)胞冷凍保存液主要成分：冷凍保護(hù)劑，基礎(chǔ)培養(yǎng)液，血清或蛋白。

常用細(xì)胞冷凍保存液：（1）10％DMSO ＋ 完全細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)液（20％ 血清＋基礎(chǔ)培養(yǎng)液）

（2）10％ 甘油 ＋ 完全細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)液（20％ 血清＋基礎(chǔ)培養(yǎng)液）懸浮細(xì)胞冷凍保存操作程序（液氮保存法）：

（1）取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞培養(yǎng)物，離心 200－400 g 5 分鐘。用粘附（貼壁）細(xì)胞冷凍保存操作程序（液氮保存法）：

冷凍保存細(xì)胞的解凍與復(fù)蘇要點(diǎn)：（1）快速解凍。凍存細(xì)胞從液氮中取出后，應(yīng)立即放入37℃ 水浴中，輕輕搖動(dòng)冷凍管，使其在 1 分鐘內(nèi)全部融化（不要超過(guò) 3 分鐘）。

（2）解凍操作過(guò)程動(dòng)作要輕。由于冷凍保存過(guò)的細(xì)胞變得非常脆弱，不僅解凍速度要快， 而且動(dòng)作要輕。一般情況下，解凍后的細(xì)胞可直接接種到含完全生長(zhǎng)培養(yǎng)液的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中直接進(jìn)行培養(yǎng)（1 ml 凍存細(xì)胞液加入到 25－30 ml 新鮮完全培養(yǎng)液中），24 小時(shí)后再用新鮮完全培養(yǎng)替換舊培養(yǎng)液，以去除 DMSO。如果，細(xì)胞對(duì)冷凍保護(hù)劑特別敏感，那么，解凍后 的細(xì)胞應(yīng)先通過(guò)離心去除冷凍保護(hù)劑，然后再接種到含完全生長(zhǎng)培養(yǎng)液的培養(yǎng)瓶中。

特別注意：（1）解凍時(shí)務(wù)必注意安全，預(yù)防冷凍管爆裂。，要帶手套，用鑷子將細(xì)胞冷凍管從液氮中取出，放入 37℃ 水浴中。切不可直接用手，以免凍傷。

（2）冷凍管在水浴中解凍時(shí)，液面不可超過(guò)凍存管蓋面，否則，易發(fā)生污染。

解凍冷凍保存細(xì)胞的離心方法:

(1) 從液氮中取出凍存的細(xì)胞，立即放入 37℃ 水浴中快速解凍。

（2）將 1－2 ml 凍存細(xì)胞液加入到 25 ml 新鮮完全細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)液中，輕輕混勻。

（3）用 80 g 離心 2－3 分鐘，棄上清液。

（4）用完全生長(zhǎng)培養(yǎng)液輕輕懸浮細(xì)胞團(tuán)，并計(jì)數(shù)細(xì)胞。

（5）接種細(xì)胞到培養(yǎng)瓶中，起始密度為 3×105/ml。