葡聚糖凝膠G系列使用說明
1 化學(xué)和物理性質(zhì)
葡聚糖凝膠是一種珠狀的凝膠,含有大量的羥基,很容易在水中和電解質(zhì)溶液中溶脹。親水基質(zhì)使其非特異性吸附最小化,并在生物分子分離期間得到較高的回收率。G型的葡聚糖凝膠有各種不同的交聯(lián)度,因此它們的溶脹度和分級分離范圍也有所不同。葡聚糖凝膠的溶脹度基本上不因鹽和洗滌劑的存在而受影響。
葡聚糖凝膠有不同的粒度。超細(xì)級的葡聚糖凝膠是用于需要極高分辨率的柱色譜和薄層色譜。粗級和中級的凝膠用于制備性色譜過程,可在較低的壓力下獲得較高的流速。另外,粗級也可用于批量工藝。
2 產(chǎn)品說明
產(chǎn) 品 名 稱 |
分離范圍(球蛋白) |
應(yīng) 用 |
葡聚糖凝膠 G-10 |
<700 |
緩沖液交換、脫鹽,分離小分子,去除小分子 |
葡聚糖凝膠 G-15 |
<1500 |
緩沖液交換、脫鹽,分離小分子,去除小分子 |
葡聚糖凝膠 G-25 |
1000-5000 |
工業(yè)上脫鹽及交換緩沖液 |
葡聚糖凝膠 G-50 |
1000-30000 |
多肽分離、脫鹽、清洗生物提取液、分子量測定 |
葡聚糖凝膠 G-75 |
2000-70000 |
蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定 |
葡聚糖凝膠 G-100 |
2000-120000 |
蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定 |
葡聚糖凝膠 G-150 |
5000-300000 |
蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定 |
葡聚糖凝膠 G-200 |
5000-600000 |
蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定 |
3 使用方法
葡聚糖凝膠G系列產(chǎn)品以干粉形式存在,使用前必須溶脹,在膨脹期間應(yīng)避免過度攪拌,因為它可能破壞填料,不要使用磁力攪拌器。
3.1 填料的準(zhǔn)備
(1)將填料在過量去離子水或緩沖液中,室溫條件下膨脹3小時,或用熱水膨脹10分鐘。洗脫緩沖液不應(yīng)含有高粘度的試劑。溶脹過程中,如果上層有碎膠,請去除。
(2)將溶脹好的填料,所有的緩沖液等材料平衡至實驗操作溫度。
3.2 裝柱
(1)檢查層析柱所有部件,特別是過濾網(wǎng),密封圈,螺旋塞是否緊密,玻璃管是否干凈和完整。
(2)將柱內(nèi)及柱子底端用水或緩沖液潤濕并保持一小段液位(液面略高于濾膜),務(wù)必使底端無氣泡。
(3)用玻璃棒引導(dǎo)勻漿沿著柱內(nèi)壁一次性倒入柱內(nèi),注意勿使產(chǎn)生氣泡。打開柱子出液口,使凝膠在柱內(nèi)自由沉降,連結(jié)好柱子頂端柱頭。
(4)打開蠕動泵,讓緩沖液用使用時流速的1.33倍的流速流過,使柱床穩(wěn)定(注意壓力不要超過填料最大耐壓)。
3.3平衡
上樣前平衡層析柱至少5-10個柱體積直到記錄儀基線變得平穩(wěn)為止(流出液的PH值和等電點(diǎn)等于上柱的Buffer的PH值和等電點(diǎn))。
3.4 上樣
樣品一定要離心或過濾后(0.45um)上樣。
凝膠過濾的上樣量一般為不大于5%的柱床體積,我們建議初次上樣控制在1-2%的柱床體積,視分離情況可以調(diào)整;脫鹽時上樣量可以達(dá)到20%的柱床體積,柱高的選擇也與分離要求相關(guān),柱高過高的凝膠層會引起較大的反壓,應(yīng)當(dāng)盡可能避免。難分離物質(zhì)要有一定柱高和流速控制,脫鹽時高徑比為5:1即可。
3.5 洗脫方法
可以用無鹽水,也可以采用上柱時的緩沖液洗脫;在上柱Buffer中加入NaCl等梯度洗脫或鹽梯度洗脫也可以完全分離純化。
3.8 在位清洗(CIP)
凝膠使用十次后作一次CIP,目的是去除柱床內(nèi)沉淀的及頑固殘留的蛋白。方法是以40cm/h用0.1 M氫氧化鈉洗四個柱體積,再以至少三個柱體積平衡緩沖液再生。
注意事項:
1.上樣之前,樣品必須經(jīng)過膜過濾及去除色素,否則雜質(zhì)及色素會被吸附到填料上,影響填料的正常使用。
2.在使用過程中,避免使用高濃度的強(qiáng)酸強(qiáng)堿,酸和堿的濃度應(yīng)低于0.15摩爾。堿會使流速變慢。
3.不同的樣品,吸附和洗脫方法不相同,可以根據(jù)相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行。