2014年諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)獲得者，左起分別是：Eric Betzig、Stefan W. Hell、William E. Moerner

說(shuō)了這么多，STED技術(shù)原理到底是什么呢？很簡(jiǎn)單。我們想象一下，一個(gè)點(diǎn)發(fā)射出的熒光信號(hào)，被檢測(cè)后通常是一個(gè)衍射斑；如果我們同時(shí)使用一個(gè)甜甜圈樣的激光將其周圍的信號(hào)擦除掉，只允許中心很小的熒光信號(hào)發(fā)射出來(lái)，這樣分辨率不就提高了嗎。這個(gè)起擦除作用的激光便是STED激光，也叫損耗光，利用的是熒光的受激發(fā)射損耗原理。之后，通過(guò)對(duì)圖像的掃描，即可直接呈現(xiàn)超高分辨圖像，無(wú)需任何后續(xù)計(jì)算過(guò)程。同時(shí)，根據(jù)公式，可通過(guò)增加STED激光功率來(lái)提升圖像分辨率。

STED原理示意圖：STED通過(guò)受激發(fā)射損耗去除衍射環(huán)上的熒光信號(hào)，大大縮小有效的激發(fā)區(qū)域，從而改寫(xiě)了分辨率公式，提高了光學(xué)分辨率

 

STED技術(shù)在病毒學(xué)研究中的應(yīng)用實(shí)例

 

第一個(gè)應(yīng)用實(shí)例，是對(duì)病毒精細(xì)結(jié)構(gòu)的觀察。2012年發(fā)表在國(guó)際頂級(jí)期刊science上，標(biāo)題為：熒光納米顯微鏡（STED）揭示成熟依賴的HIV-1病毒表面蛋白的再分布特征【1】。

圖中綠色代表HIV-1病毒粒子，紅色表示病毒表面的膜蛋白�？梢钥吹�，通過(guò)普通共聚焦無(wú)法分辨膜蛋白的具體定位位置，很模糊。包膜糖蛋白gp120（紅色）與病毒粒子（綠色）90%共定位，信號(hào)模糊，分辨不出細(xì)節(jié)。而STED成像可以發(fā)現(xiàn)，大多數(shù)成熟病毒粒子表現(xiàn)出單一的包膜蛋白Env信號(hào)或焦點(diǎn)(圖1B)，而大多數(shù)未成熟粒子表現(xiàn)出兩個(gè)或兩個(gè)以上的包膜蛋白Env信號(hào)(圖1D)。

 

 

第二個(gè)應(yīng)用實(shí)例，是對(duì)病毒成熟過(guò)程的觀察。標(biāo)題為：STED納米顯微鏡揭示HIV病毒蛋白水解成熟的時(shí)間過(guò)程【2】。

利用STED顯微鏡發(fā)現(xiàn)在HIV-1病毒成熟和未成熟條件下，可非常清晰區(qū)分其Gag蛋白的不同結(jié)構(gòu)特征。未成熟病毒的Gag蛋白呈中空環(huán)狀（圖a），而成熟病毒中呈實(shí)心固縮狀（圖b）。

作者巧妙的利用光控方法，進(jìn)行STED時(shí)間序列成像。在400nm紫外光照后，PDI（光催化降解的蛋白酶抑制劑）降解，Gag蛋白能夠被蛋白酶水解切割，進(jìn)而病毒成熟。STED時(shí)間序列成像可輕松捕獲病毒從未成熟到成熟過(guò)程，Gag蛋白重排的結(jié)構(gòu)變化過(guò)程。

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第三個(gè)應(yīng)用實(shí)例，是對(duì)病毒基因組示蹤。標(biāo)題為：以單分子分辨率示蹤宿主細(xì)胞中的病毒基因組【3】。

腺病毒DNA通過(guò)AF594標(biāo)記的疊氮點(diǎn)擊反應(yīng)顯示，衣殼蛋白通過(guò)抗hexon的抗體識(shí)別，并且只有在脫殼后，病毒DNA才可以被反應(yīng)檢測(cè)到熒光信號(hào)。
 
通過(guò)gated STED超高分辨顯微成像，可顯著提高分辨率，清晰呈現(xiàn)病毒衣殼和DNA的真實(shí)尺寸大小。腺病毒衣殼實(shí)際大小約80nm，gSTED顯示約110nm（包含一二抗尺寸），與實(shí)際一致。gSTED顯示被衣殼蛋白包裹的病毒DNA尺寸略小于80nm，也與衣殼尺寸符合。

 
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第四個(gè)應(yīng)用實(shí)例，是對(duì)病毒基因組復(fù)制的觀察。標(biāo)題為：利用STED超高分辨顯微鏡觀察復(fù)制的HSV-1病毒【4】。值得一提的是，本文由中科院昆明動(dòng)物所周巨民老師課題組與徠卡公司合作完成。

病毒基因組復(fù)制是單純皰疹病毒 1 (HSV-1) 溶解感染周期的重要事件。目前由于檢測(cè)和觀察方法的局限，病毒復(fù)制過(guò)程的細(xì)節(jié)仍難以捕捉。為了獲得更加詳細(xì)的 HSV-1 復(fù)制機(jī)制，本文使用了STED受激發(fā)射損耗顯微鏡，結(jié)合熒光原位雜交 (FISH) 和免疫熒光，對(duì)HSV-1 復(fù)制過(guò)程進(jìn)行了精細(xì)觀察。
 
作者設(shè)計(jì)了位于HSV-1病毒基因組兩端的探針，分別以DIG（綠色）和Biotin（紅色）進(jìn)行標(biāo)記，在病毒復(fù)制的早期和晚期，分別成像觀察。STED成像發(fā)現(xiàn)，在復(fù)制的早期，紅綠兩色信號(hào)的共定位程度較高；而在復(fù)制后期，兩個(gè)系數(shù)均發(fā)生了明顯降低，表明HSV-1 基因組在復(fù)制過(guò)程中經(jīng)歷了從緊湊到松弛的動(dòng)態(tài)結(jié)構(gòu)變化，同時(shí)需要占用較大的空間進(jìn)行復(fù)制。
 

第五個(gè)應(yīng)用實(shí)例，是對(duì)病毒侵染和傳播過(guò)程捕獲的研究。標(biāo)題為：ARP2和病毒誘導(dǎo)的絲狀偽足促進(jìn)了人類呼吸道合胞體病毒的傳播【5】。

利用STED超高分辨顯微鏡進(jìn)行成像，發(fā)現(xiàn)感染了RSV病毒的細(xì)胞（圖A第一行，標(biāo)記為A和C）外存在大量的絲狀偽足（紅色），且富集有大量病毒顆粒（綠色）；暗示可通過(guò)絲狀偽足將RSV病毒傳遞給鄰近細(xì)胞。而在ARP2敲除的細(xì)胞中（圖A第二行），即便感染了RSV病毒，細(xì)胞的絲狀偽足數(shù)量都大量減少，病毒在細(xì)胞間的傳播不明顯。放大圖像（圖B），可觀察到RSV病毒主要分布在絲狀偽足的尖端，進(jìn)一步驗(yàn)證了病毒可通過(guò)誘導(dǎo)絲狀偽足的產(chǎn)生來(lái)促進(jìn)其在細(xì)胞間的傳播。
 
如何進(jìn)一步提高STED分辨率？
根據(jù)公式我們可以知道，通過(guò)增加STED激光功率就可直接增加圖像的分辨率，這個(gè)方法最為簡(jiǎn)單；但問(wèn)題是不利于活細(xì)胞成像。那么如何在不提高激光功率的前提下，進(jìn)一步提高STED分辨率呢？有以下三種方法，分別是gated STED，gated STED + Lightning，和徠卡新推出的τ-STED。
 

以兩個(gè)距離76nm的DNA Origami為例，gated STED在不改變STED激光功率的前提下，逐步縮小熒光壽命的檢測(cè)范圍，可逐步提高分辨率，清晰地分辨兩個(gè)點(diǎn)信號(hào)。

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對(duì)中心粒的gated STED + Lightning成像結(jié)果，分辨率（半高寬）可達(dá)22nm！

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新一代STED：τ-STED，即將STED和超快速的熒光壽命相結(jié)合，實(shí)時(shí)呈現(xiàn)超高清分辨圖像。它在已有STED優(yōu)勢(shì)的基礎(chǔ)上，可以更低激光功率獲得更高圖像分辨率，進(jìn)一步拓展熒光染料的選擇，非常適合長(zhǎng)時(shí)間的活細(xì)胞成像。

結(jié)語(yǔ)
徠卡STED擁有13年的研發(fā)、技術(shù)和服務(wù)經(jīng)驗(yàn)，也具有以下突出優(yōu)勢(shì)特點(diǎn)，是病毒學(xué)研究的絕佳利器：

• “純光學(xué)”超高分辨顯微技術(shù)，所見(jiàn)即所得
• 全光譜、多色超高分辨成像，提供592nm/660nm/775nm三根 STED譜線
• 專為STED設(shè)計(jì)的多款滿足不同應(yīng)用需求的物鏡
• 使用常規(guī)熒光染料及熒光蛋白，制樣簡(jiǎn)單、方便
• τ-STED低光毒性，更適合活細(xì)胞超高分辨成像
• 快速掃描頭能夠更好的保護(hù)樣品
• LAS X Navigator能夠輕松尋找目標(biāo)視野

 
此外，整個(gè)STED是搭載在徠卡共聚焦平臺(tái)上的，因此也擁有共聚焦的所有優(yōu)點(diǎn)。相信徠卡STED超高分辨顯微鏡能夠更多地貢獻(xiàn)超高清圖像結(jié)果，助力病毒學(xué)和生命科學(xué)研究發(fā)展。
 
參考文獻(xiàn)：
【1】Chojnacki J, Staudt T, Glass B, et al. Maturation-dependent HIV-1 surface protein redistribution revealed by fluorescence nanoscopy.[J]. Science, 2012, 338(6106): 524-528.
【2】Hanne J, Gottfert F, Schimer J, et al. Stimulated Emission Depletion Nanoscopy Reveals Time-Course of Human Immunodeficiency Virus Proteolytic Maturation[J]. ACS Nano, 2016, 10(9): 8215-8222.
【3】Wang IH, Suomalainen M, Andriasyan V, et al. Tracking viral genomes in host cells at single-molecule resolution. Cell Host Microbe. 2013;14(4):468–480. 
【4】Li Z, Fang C, Su Y, et al. Visualizing the replicating HSV-1 virus using STED super-resolution microscopy[J]. Virology Journal, 2016, 13(1): 65-65.
【5】Mehedi M, Mccarty T, Martin S E, et al. Actin-Related Protein 2 (ARP2) and Virus-Induced Filopodia Facilitate Human Respiratory Syncytial Virus Spread[J]. PLOS Pathogens, 2016, 12(12).