如今,單克隆抗體藥物以其獨特的作用機(jī)制及高效性,在腫瘤和自身免疫疾病的治療中發(fā)揮了不可估量的作用,成為全球的研發(fā)熱點,目前已有2400個單克隆抗體藥物處于研發(fā)及商業(yè)化階段。
1975年雜交瘤技術(shù)問世[1]。1986年鼠源單克隆抗體藥物Muromonab的上市拉開了單克隆抗體發(fā)展的序幕。隨后的50年,單克隆抗體藥物經(jīng)歷了嵌合抗體-人源化抗體--全人源抗體四個階段,產(chǎn)生了抗體偶聯(lián)藥物、抗體融合蛋白、單域抗體等多種新型抗體藥物,標(biāo)志著免疫療法黃金時代的開啟[2]。單克隆抗體藥物的推陳出新歸根于單克隆抗體技術(shù)的不斷發(fā)展與創(chuàng)新。目前應(yīng)用的抗體技術(shù)有:雜交瘤技術(shù)、噬菌體展示技術(shù)、天然全人源庫技術(shù)和單個B細(xì)胞技術(shù)。
單個B細(xì)胞抗體制備技術(shù)原理
單個B細(xì)胞技術(shù)[3]是近年來新發(fā)展的一類快速制備單克隆抗體的技術(shù),是根據(jù)每一個B細(xì)胞只含有一個功能性重鏈可變區(qū)DNA序列和一個輕鏈可變區(qū)DNA序列,以及每一個B細(xì)胞只產(chǎn)生一種特異性抗體的特性,從免疫動物組織或外周血中分離抗原特異性B細(xì)胞,通過單細(xì)胞PCR技術(shù)從單個抗體分泌B細(xì)胞中擴(kuò)增IgG重鏈和輕鏈可變區(qū)基因,然后在哺乳動物細(xì)胞內(nèi)表達(dá)獲得具有生物活性的單克隆抗體。這種方法保留了重鏈和輕鏈可變區(qū)的天然配對,具有基因多樣性好、效率高、全天然源性的特點,也成為了目前快速開發(fā)針對抗病毒感染性疾病抗體的重要策略。
單個B細(xì)胞抗體制備過程
圖1 單個B淋巴細(xì)胞抗體制備過程[4]
1. 鑒定和分離單個B細(xì)胞
1)溶血斑塊技術(shù)分選B細(xì)胞
溶血斑塊技術(shù)原理[5]是抗原與抗體反應(yīng)后,在補(bǔ)體作用下能使紅細(xì)胞裂解形成溶血斑塊,進(jìn)而通過顯微技術(shù)篩選和分離抗原特異性B細(xì)胞。該方法有點:方便、快捷、特異性好;缺點:紅細(xì)胞容易受到溫度、滲透壓、酶等多方面影響,且溶血斑塊技術(shù)分離的B細(xì)胞往往不能進(jìn)行高通量分析和活細(xì)胞增殖。
圖2 克隆單細(xì)胞免疫球蛋白VH和VLcDNAs產(chǎn)生特異性抗體的策略[5]
2)MACS法(磁珠分選法)分選B細(xì)胞
原理是基于抗原抗體結(jié)合的特異性,B細(xì)胞表面分子與包被有特異性抗體的磁珠相結(jié)合,形成表面分子-抗體-磁珠復(fù)合物,在外加磁場中,通過抗體與磁珠相連的細(xì)胞被吸附而滯留在磁場中,不能與特異性抗體相結(jié)合的細(xì)胞由于沒有吸附磁珠,不在磁場中停留,從而使細(xì)胞得以分離[6]。該方法優(yōu)點:操作簡單、穩(wěn)定、重復(fù)性好;缺點:用到的抗體種類較多、對磁珠與磁珠柱的質(zhì)量要求較高、費用較高。該方法可以和其它分離方法配合使用。
圖4 ISAAC技術(shù)檢測單個抗體分泌細(xì)胞[8]
4)FACS法分選B細(xì)胞
FACS法原理[9]是基于抗原抗體的特異性反應(yīng),利用熒光素標(biāo)記的B細(xì)胞表面分子的抗體,以及標(biāo)記的特異性抗原,通過多色流式分析與分選的方法,篩選抗原特異性B細(xì)胞。FACS分選可以將單個抗原特異性B細(xì)胞分選入細(xì)胞培養(yǎng)板的單孔中,直接進(jìn)行抗體基因的擴(kuò)增與測定。該技術(shù)是目前應(yīng)用較廣泛的一種方法。優(yōu)點:分離B細(xì)胞快速、準(zhǔn)確、大量、多參數(shù)同時分析;缺點:費用高、通電磁場對細(xì)胞有一定損傷,會影響細(xì)胞活性。
(A) 傳感器的流體力學(xué)聚焦和振動產(chǎn)生的液流斷裂成液滴,其含有已被熒光標(biāo)記抗體染色的細(xì)胞。(B) 通過激光掃描液滴,并對信號進(jìn)行處理以給出“分類決策”(如果液滴含有綠色熒光細(xì)胞,則將進(jìn)行充電并相應(yīng)分類)。(C)當(dāng)液滴脫落時,施加電荷。(D) 含有目標(biāo)細(xì)胞的帶電液滴由靜電場引導(dǎo)進(jìn)入指定的收集管完成分類。
5)微流控技術(shù)分選B細(xì)胞
結(jié)合微流控設(shè)備和芯片的技術(shù)是目前主流的商業(yè)化單B細(xì)胞平臺。BLI公司(Berkeley Lights,Inc)的Beacon單細(xì)胞光導(dǎo)系統(tǒng)受到多家大型藥企的青睞。Beacon平臺是通過微流控系統(tǒng)將分泌抗原特異性抗體的細(xì)胞輸送到芯片部位,并通過光電定位技術(shù)OEP將單細(xì)胞分離到芯片的各個小室中。而后采用基于磁珠的雙色熒光結(jié)合實驗檢各細(xì)胞的分泌物,分泌抗原特異性抗體的細(xì)胞會產(chǎn)生熒光信號,被儀器識別,單個陽性細(xì)胞通過OEP技術(shù)被導(dǎo)出輸送到96孔板中,進(jìn)行進(jìn)一步的測序、表達(dá)。該系統(tǒng)集單細(xì)胞分選和檢測及分析為一體,靈敏度和準(zhǔn)確度高。
2. 擴(kuò)增和克隆抗體基因
通常通過FACS法分離抗原特異性B細(xì)胞后,將其分選至含裂解液的96孔板中,裂解B細(xì)胞并釋放細(xì)胞內(nèi)RNA。隨后通過RT-PCR、巢式PCR得到抗原特異性單個B細(xì)胞抗體可變區(qū)基因。
3. 表達(dá)、篩選和鑒定抗原特異性抗體
FACS分選的單個B細(xì)胞抗體基因擴(kuò)增、載體構(gòu)建、抗體表達(dá)及活性驗證是必要步驟。表達(dá)系統(tǒng)常用的是原核表達(dá)系統(tǒng)(例如大腸桿菌)或真核表達(dá)系統(tǒng)。在大腸桿菌中,通常表達(dá)抗體的抗原結(jié)合片段(Fab),而在哺乳動物中,可以表達(dá)完整的IgG分子?贵w生物活性驗證主要通過ELISA、間接免疫熒光、中和試驗等常規(guī)方法來驗證;除此之外,還可以通過流式分析法、免疫共沉淀、空斑法、空斑減少中和試驗等方法來驗證。
單個B細(xì)胞抗體制備技術(shù)應(yīng)用
許多單B細(xì)胞抗體對病毒的治療正在臨床試驗階段中。HIV引起獲得性免疫缺陷綜合征,全球已有6390萬人感染,通過單B細(xì)胞技術(shù)已獲得5種抗HIV包膜蛋白的抗體(3BNC117; 10-1074; VRC01; PGT121;N6)正在臨床I/II 期實驗中進(jìn)行評價。利用單個B細(xì)胞抗體技術(shù),從治愈后的患者血液中分選抗體分泌的單個B細(xì)胞,快速鑒定和表達(dá)抗體基因,特別是對于新型病毒的治療和預(yù)防有很大幫助。
偏頭痛是全球第三大最常見疾病和第六大致殘性疾病,這是一種常見的慢性神經(jīng)血管性疾病。2020年2月21日,Lundbeck宣布其偏頭疼藥物Vyepti(eptinezumab,兔抗體藥物)獲得美國FDA批準(zhǔn)上市。Vyepti是由單B細(xì)胞技術(shù)制備的兔抗體藥物,靶向結(jié)合降鈣素相關(guān)基因肽(CGRP)配體,阻斷其對受體的結(jié)合作用。其II期臨床結(jié)果顯示許多患者的偏頭痛天數(shù)可以減少75%。此外,該公司的另一種偏頭疼藥物ALD1910正處于臨床前研究階段。
雖然,單個B細(xì)胞抗體制備技術(shù)具有效率高、全人源、基因多樣性更豐富等優(yōu)勢。但2020年之前的10年中FDA尚未批準(zhǔn)任何該方法制備的抗體藥物,且仍有一些不足,還有要不斷克服和完善。全人抗體開發(fā)成為近期藥物開發(fā)的趨勢,多種抗體技術(shù)的結(jié)合也將產(chǎn)生更多有效藥物,在醫(yī)藥領(lǐng)域極具前景。
百奧賽圖引入Beacon®單細(xì)胞光導(dǎo)系統(tǒng),將分離和鑒定產(chǎn)生抗體的原代B細(xì)胞的工作在不到一天的時間內(nèi)完成,結(jié)合自主開發(fā)的全人抗體RenMab小鼠,能夠快速高效獲得全人抗體,建立一站式抗體藥物開發(fā)平臺。百奧賽圖將通過“千鼠萬抗”計劃,打造全球創(chuàng)新藥物發(fā)源地,助力合作伙伴加快藥物研發(fā)進(jìn)程。
圖 7 百奧賽圖RenMab小鼠+Beacon平臺加速抗體發(fā)現(xiàn)過程
參考文獻(xiàn)
[1] Kohler G., Milstein C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity[J]. Nature, 1975, 256(5517):495-497.
[2] 高倩, 江洪, 葉茂, 等. 全球單克隆抗體藥物研發(fā)現(xiàn)狀及發(fā)展趨勢[J]. 中國生物工程雜志, 2019(3):111-119.
[3] 向軍儉, 童吉宇, 王宏. 抗體技術(shù)研究進(jìn)展(1):人源抗體技術(shù)[J]. 暨南大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)與醫(yī)學(xué)版, 2012(05):92-98.
[4] 呂信萍, 吳靜, 陳京濤. 單個B細(xì)胞抗體制備技術(shù)及其在肝臟疾病中的應(yīng)用[J]. 臨床肝膽病雜志, 2015, 31(12):2104-2109.
[5] Babcook J.S., Leslie K.B., Olsen O.A., et al. A novel strategy for generating monoclonal antibodies from single, isolated lymphocytes. [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1996,93(15):7843-7848.
[6] Bosio A., Huppert V., Donath S., et al. Isolation and Enrichment of Stem Cells. Engineering of Stem Cells, [J]. advances in biochemical engineering/biotechnology, 2009, 114(114):23.
[7] Love J.C., Ronan J.L., Grotenbreg G.M., et al. A microengraving method for rapid selection of single cells producing antigen-specific antibodies[J]. Nature Biotechnology, 2006, 24(6):703-707.
[8] Jin A., Ozawa T., Tajiri K., et al. A rapid and efficient single-cell manipulation method for screening antigen-specific antibody–secreting cells from human peripheral blood[J]. Nature Medicine, 2009, 15(9):1088-1092.
[9] Fitzgerald V., Leonard P., et al. Single cell screening approaches for antibody discovery[J]. Methods, 2016(1-9).
[10] 遲象陽, 于常明,陳薇. 單個B細(xì)胞抗體制備技術(shù)及應(yīng)用[J]. 生物工程學(xué)報, 2012, 28(6):651-660.
[11] http://commercial.dxy.cn/article/680978?trace=hot
掃碼關(guān)注百奧賽圖了解更多資訊哦