使用基于ATF的補料分批/灌流混合工藝進行病毒疫苗生產(chǎn)
來自德國馬克斯·普朗克復(fù)雜技術(shù)系統(tǒng)動力學(xué)研究所和ProBioGen AG等的科學(xué)家們在2019年第103期的《Applied Microbiology and Biotechnology》雜志上發(fā)表了題為“High titer MVA and influenza A virus production using a hybrid fed-batch/perfusion with an ATF system”的文章。文中,研究人員提出了一種在高細胞密度工藝中提高MVA(修飾的安卡拉痘苗病毒)產(chǎn)率的培養(yǎng)策略。該策略基于此前研究人員在搖瓶培養(yǎng)中開發(fā)的方法,在臺式生物反應(yīng)器中建立,包括AGE1.CR.plX細胞在化學(xué)限定培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)至高細胞密度,然后以MVA-CR19病毒株感染。首先,建立灌流策略,以優(yōu)化細胞生長階段。其次,初始感染階段選擇補料分批策略,以促進病毒攝入和細胞間的傳播。最后,再切換為灌流,為病毒增殖晚期連續(xù)提供營養(yǎng)物。該補料分批/灌流混合策略獲得最大感染性滴度為1.0 x 10^10 IU/mL,相比傳統(tǒng)批次培養(yǎng),產(chǎn)物滴度可提高一個數(shù)量級。最后,從生產(chǎn)滅活疫苗考慮,將該策略用于生產(chǎn)流感A/PR/8/3(H1N1)病毒,使用相同的培養(yǎng)系統(tǒng),可達到3.8 × 10^10 virions/mL的總數(shù)。總體來講,使用相同的系統(tǒng),可獲得與傳統(tǒng)批次培養(yǎng)相當(dāng)或更高的細胞特異性病毒產(chǎn)量和單位體積產(chǎn)率。此外,大多數(shù)病毒顆粒在培養(yǎng)上清中,可簡化下游操作,特別是MVA病毒。研究人員總結(jié)認為該策略有助于新的病毒疫苗生產(chǎn)方法的開發(fā)。
實驗:生物反應(yīng)器培養(yǎng)
CR.pIX細胞以0.8-10^6cells/mL的密度接種1L 臺式生物反應(yīng)器,工作體積0.6-0.8L。生物反應(yīng)器操作條件設(shè)置為37℃、pH 7.2、攪拌速度 120-160rpm,以20μm微泡控制DO為40%。細胞開始以批次模式培養(yǎng),當(dāng)葡萄糖濃度達到14-17mM時(接種后60-72h),開始灌流。灌流使用XCell ATF 2系統(tǒng),以C24控制器控制,流速設(shè)置為1.0L/min,并以確定的灌流速率進行操作,以達到>25 x 10^6cells/mL的細胞密度。
在細胞生長階段,灌流速率每12或24h手動調(diào)節(jié)。操作時,離線檢測活細胞密度,計算取樣時間點的相應(yīng)流速,確保CSPR為0.06nL/cell/day,這是CR.pIX細胞基于其葡萄糖消耗速率的最佳置換速率。根據(jù)最高細胞特異性生長速率μ=0.026h-1,計算12或24h后的預(yù)期活細胞密度和相應(yīng)的灌流速率。使用BIOSTAT B plus模塊的級聯(lián)控制,可獲得采樣時間點之間的線性曲線。感染前2h,使用ATF系統(tǒng),以新鮮培養(yǎng)基置換1個反應(yīng)器體積。
培養(yǎng)置換后,生物反應(yīng)器感染MVA-C19或流感A病毒A/PR/8/34(H1N1)。對于MVA-CR19病毒,使用2種補液程序加上灌流程序,命名為混合工藝1和混合工藝2,以優(yōu)化在高細胞密度條件下的病毒增殖。對于混合工藝1,廢棄部分細胞懸液,以0.3L的細胞懸液開始病毒生產(chǎn)階段。病毒感染后,加入0.15L新鮮培養(yǎng)基,立即開始補料分批,在感染后12h再補液0.15L,感染后24小時,補液0.3L。最后,在感染后36-120h,以1vvd的速率進行灌流。病毒顆粒(200-400 nm)使用與細胞生長階段相同的ATF中空纖維組件進行收獲。相似的,對于混合工藝2,在病毒感染后立即補液0.2L,之后在感染后24h,補液0.25L,最后,在感染后36-120h,以1vvd的速率進行灌流。為提高病毒收獲,在感染后36小時,將細胞生長階段使用的0.2μm中空纖維組件替換為新的更大孔徑組件。對于流感病毒A生產(chǎn),評估了一種與MVA-CR19病毒相似的混合策略。
詳細內(nèi)容,請參考原文。
原文:D.Vazquez-Ramirez, I.Jordan, V.Sandig, High titer MVA and influenza A virus production using a hybrid fed-batch/perfusion with an ATF system. Applied Microbiology and Biotechnology, 2019, 103: 3025-3035.
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