普通 PCR
基本原理
PCR(聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng))是一種體外 DNA 擴(kuò)增技術(shù),是在模板 DNA、引物和 4 種脫氧核苷酸存在的條件下,依賴于 DNA 聚合酶的酶促合反應(yīng),將待擴(kuò)增的 DNA 片段與其兩側(cè)互補(bǔ)的寡核苷酸鏈引物經(jīng)「高溫變性—低溫退火 —引物延伸」三步反應(yīng)的多次循環(huán),使 DNA 片段在數(shù)量上呈指數(shù)增加,從而在短時(shí)間內(nèi)獲得我們所需的大量的特定基因片段。DNA 的半保留復(fù)制是生物進(jìn)化和傳代的重要途徑。
PCR 反應(yīng)體系舉例
10×擴(kuò)增緩沖液 |
10µl |
4 種 dNTP 混合物 |
各 100~250μmol/L |
引物 |
各 5~20μmol/L |
模板 DNA |
0.1~2µg |
Taq DNA 聚合酶 |
5~10U |
Mg2+ |
1~3mmol/L |
加雙或三蒸水至 |
100µl |
儀器與耗材
基于聚合酶制造的 PCR 儀實(shí)際就是一個(gè)溫控設(shè)備,能在變性溫度、復(fù)性溫度和延伸溫度之間很好地進(jìn)行控制。這些儀器主要用變溫鋁塊、變溫水浴及變溫氣流的方式達(dá)到熱循環(huán)的目的,各有其優(yōu)缺點(diǎn),在此不再贅述。
結(jié)果檢測(cè)
PCR 反應(yīng)擴(kuò)增出很高的拷貝數(shù),下一步檢測(cè)就成了關(guān)鍵。熒光素(溴化乙錠,EB)染色凝膠電泳是最常用的檢測(cè)手段。電泳法檢測(cè)特異性不太高,引物兩聚體等非特異性的雜交體很容易引起誤判,但因?yàn)槠浜?jiǎn)捷易行,成為了主流檢測(cè)方法。
應(yīng)用
PCR 是一種用于放大擴(kuò)增特定的 DNA 片段的分子生物學(xué)技術(shù),它可看作是生物體外的特殊 DNA 復(fù)制,最大特點(diǎn)是能將微量的 DNA 大幅增加。因此,無論是化石中的古生物、歷史人物的殘骸,還是幾十年前兇殺案中兇手所遺留的毛發(fā)、皮膚或血液,只要能分離出一丁點(diǎn)的 DNA,就能用 PCR 加以放大,進(jìn)行比對(duì)。這也是「微量證據(jù)」的威力之所在。
實(shí)時(shí)熒光定量 PCR(Quantitative Real-time PCR,qPCR)
基本原理
qPCR 技術(shù)是在反應(yīng)體系中加入熒光報(bào)告基團(tuán)和熒光淬滅基團(tuán),隨著 PCR 反應(yīng)的進(jìn)行,擴(kuò)增產(chǎn)物不斷積累,導(dǎo)致熒光信號(hào)不斷積累, 從而利用熒光信號(hào)的變化實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè) PCR 進(jìn)程。
根據(jù) PCR 定量原理公式可推導(dǎo)出, 模板起始拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)與閾值循環(huán)數(shù)呈線性關(guān)系,模板起始拷貝數(shù)越多,熒光信號(hào)達(dá)到閾值的循環(huán)數(shù)越少,即 Ct 值越小。利用已知起始拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)樣品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)熒光基團(tuán)發(fā)出的熒光強(qiáng)度與 PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物的數(shù)量呈對(duì)應(yīng)關(guān)系, 只要對(duì)熒光信號(hào)進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)并得到未知樣品的 Ct 值,即可通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算未知樣品的起始拷貝數(shù)。
Ct 值指 PCR 擴(kuò)增過程中,擴(kuò)增產(chǎn)物的熒光信號(hào)達(dá)到設(shè)定閾值時(shí)所經(jīng)過的擴(kuò)增循環(huán)數(shù)。相同模板進(jìn)行 96 次擴(kuò)增,終點(diǎn)處產(chǎn)物量不恒定,但 Ct 值卻極具重現(xiàn)性。
模板 DNA 量越多,熒光達(dá)到域值的循環(huán)數(shù)越少,即 Ct 值越小。Log 起始模板濃度與 Ct 呈線性關(guān)系,通過已知起始拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品可作出標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)樣品 Ct 值,就可以計(jì)算出樣品中所含的模板量。
目前常用熒光標(biāo)記方法
方法 |
優(yōu)點(diǎn) |
缺點(diǎn) |
應(yīng)用范圍 |
SYBR Green I |
適用性廣 靈敏 方便 便宜 |
引物要求高 易出現(xiàn)非特異條帶 |
科研中對(duì)各種目的基因定量分析,基因表達(dá)量的研究,轉(zhuǎn)基因重組動(dòng)植物研究 |
Taqman |
特異性高 重復(fù)性好 |
價(jià)格高 只適合特定目標(biāo) |
病原體檢測(cè),疾病耐藥基因研究,藥物療效考核,遺傳疾病診斷 |
分子信標(biāo) |
高特異性 熒光背景低 |
只適合特定目標(biāo) 設(shè)計(jì)困難 價(jià)格高 |
特定基因分析,SNP分析 |
熒光定量 PCR 反應(yīng)體系舉例 |
|
試劑 |
含量 |
2xGoTaq Master Mix |
5µl |
無核酸酶水 |
3.5µl |
上游引物 |
0.25µl |
下游引物 |
0.25µl |
基因組 DNA |
1µl(約20ng)梯度稀釋 |
共 10µl |
儀器與耗材
在普通 PCR 儀的基礎(chǔ)上增加一個(gè)熒光信號(hào)采集系統(tǒng)和計(jì)算機(jī)分析處理系統(tǒng),就成了熒光定量 PCR 儀。其 PCR 擴(kuò)增原理和普通 PCR 儀擴(kuò)增原理相同,只是 PCR 擴(kuò)增時(shí)加入的引物是利用同位素、熒光素等進(jìn)行標(biāo)記,使用引物和熒光探針同時(shí)與模板特異性結(jié)合擴(kuò)增。擴(kuò)增的結(jié)果通過熒光信號(hào)采集系統(tǒng)實(shí)時(shí)采集信號(hào)連接輸送到計(jì)算機(jī)分析處理系統(tǒng)得出量化的實(shí)時(shí)結(jié)果輸出,把這 PCR 儀叫做實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 儀 (qPCR 儀)。熒光定量 PCR 儀有單通道,雙通道,和多通道。當(dāng)只用一種熒光探針標(biāo)記的時(shí)候,選用單通道,有多熒光標(biāo)記的時(shí)候用多通道。單通道也可以檢測(cè)多熒光的標(biāo)記的目的基因表達(dá)產(chǎn)物,因?yàn)橐淮沃荒軝z測(cè)一種目的基因的擴(kuò)增量,需多次擴(kuò)增才能檢測(cè)完不同的目的基因片段的量。該儀器主要用于醫(yī)學(xué)臨床檢測(cè),生物醫(yī)藥研發(fā),食品行業(yè),科研院校等機(jī)構(gòu)。
實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 與普通 PCR 對(duì)比
實(shí)時(shí)熒光定量 PCR |
普通 PCR |
|
檢測(cè) |
熒光檢測(cè) |
電泳跑膠 |
特異性 |
引物和熒光探針,特異性高 |
引物,特異性低 |
靈敏度 |
熒光檢測(cè)靈敏度高 |
電泳檢測(cè)相對(duì)較低 |
自動(dòng)化程度 |
無需跑膠,自動(dòng)化程度高 |
結(jié)束后再跑膠 |
結(jié)果 |
全程監(jiān)控,準(zhǔn)確的算法進(jìn)行定量 |
定性 |
污染 |
封閉體系,環(huán)境污染少 |
污染可能性大 |
應(yīng)用
定性分析研究:雜合或純合子鑒定,SNP 分析等。
絕對(duì)定量研究:病毒和病原菌定量分析,基因拷貝數(shù)定量分析,GMO 定量檢測(cè)等。
相對(duì)定量研究:mRNA 表達(dá)分析,siRNA 效果確認(rèn),差異顯示結(jié)果驗(yàn)證等。
1992 年,Sykes 等從非淋巴細(xì)胞和正常體細(xì)胞背景中鑒定突變的白血病細(xì)胞,檢測(cè)了復(fù)雜背景下低豐度的 IgH 重鏈突變基因。該研究中提出了三個(gè)重要的原則:有限稀釋、終點(diǎn)信號(hào)的有或無及對(duì)數(shù)據(jù)泊松分布的統(tǒng)計(jì)處理,為以后 dPCR 的發(fā)展奠定了基礎(chǔ),逐步拉開了 Digital PCR 研究和應(yīng)用的序幕......
三朵金花,先表兩朵,數(shù)字 PCR(Digital PCR,dPCR)下期綻放!
參考文獻(xiàn):