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CRISPR觸發(fā)的內(nèi)源Oct4或Sox2基因位點(diǎn)染色質(zhì)重塑激活細(xì)胞重編程

瀏覽次數(shù):5287 發(fā)布日期:2018-3-7  來源:原創(chuàng)

題目:CRISPR-Based Chromatin Remodeling of the Endogenous Oct4 or Sox2 Locus Enables
Reprogramming to Pluripotency
期刊:Cell stem cell
影響因子:23.394
主要技術(shù):CRISPR-dCas9-VP64激活系統(tǒng)、誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞構(gòu)建、原代細(xì)胞制作、iPS鑒定
研究背景
       終末分化的成體細(xì)胞逆分化,形成多能干細(xì)胞狀態(tài)的過程稱為細(xì)胞重編程(Cell reprogramming)。在2006年,日本科學(xué)家山中伸彌(Shinya Yamanaka)發(fā)表誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞(iPS, induced pluripotent stem cells)構(gòu)建技術(shù),利用逆轉(zhuǎn)錄病毒,把OSKM(OCT4, SOX2,KLF4 and C-myc)四因子在體細(xì)胞中進(jìn)行超表達(dá),成功把小鼠胚胎成纖維細(xì)胞誘導(dǎo)形成多能干細(xì)胞,開辟了一個全新的干細(xì)胞研究領(lǐng)域。隨著研究的深入,人皮膚成纖維細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞等也被成功誘導(dǎo)成多能干細(xì)胞。而這些多能干細(xì)胞與供體DNA是保持一致的,且有分化成多種細(xì)胞的潛力,展現(xiàn)出非常廣闊的臨床應(yīng)用前景。如把人血液中的T淋巴細(xì)胞逆分化形成多能干細(xì)胞后,當(dāng)定向分化技術(shù)成熟時, iPS能被有序分化成需要的細(xì)胞,比如心肌細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞等。
       染色體上重要的基因啟動子位點(diǎn)的表觀遺傳學(xué)變化,如DNA甲基化水平變化、組蛋白乙;阶兓、染色質(zhì)重塑等,開啟重要基因如OCT4, SOX2等的內(nèi)源性表達(dá),是iPS誘導(dǎo)過程中至關(guān)重要的事件,直接關(guān)系到誘導(dǎo)是否成功。
       CRISPR-Cas9系統(tǒng)作為一種強(qiáng)大的基因編輯工具,現(xiàn)今已廣泛用于常規(guī)的細(xì)胞或者個體的基因敲除、基因敲入、點(diǎn)突變外。當(dāng)CAS9蛋白進(jìn)行失活改造以及結(jié)構(gòu)域添加后,得到CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng),則能實(shí)現(xiàn)特異基因轉(zhuǎn)錄激活。CRISPR-dCas9內(nèi)源基因激活技術(shù)(SunTag Gene Activation),正好與iPS誘導(dǎo)技術(shù)完美契合,解決了激活內(nèi)源OSKM四基因的問題,從而誕生了新型的iPS構(gòu)建策略(見圖1)。
           




 

 








 

 

 

 

 

 

 

 

 

圖1. 利用CRIPR-dCas9基因激活系統(tǒng)的iPS誘導(dǎo)策略                 

研究內(nèi)容及結(jié)果
1. 設(shè)計(jì)定位于Sox2和Oct4基因啟動子區(qū)和Oct4增強(qiáng)子區(qū)的sgRNA,利用CRISPR-dCas9-SunTag-VP64對Sox2和Oct4進(jìn)行激活。

      本研究首先設(shè)計(jì)了相應(yīng)基因靶標(biāo)的SgRNA,啟動子區(qū)或者增強(qiáng)子區(qū)靶標(biāo)位置考慮因素包括:sgRNA靶標(biāo)位置與重要的轉(zhuǎn)錄因子(OCT4、SOX2、NANOG)結(jié)合位點(diǎn)、組蛋白乙酰轉(zhuǎn)移酶p300結(jié)合位點(diǎn)的距離,靶標(biāo)區(qū)附近組蛋白乙;植、DNA甲基化分布等。并以MEF細(xì)胞為材料,在RNA水平檢測了不同sgRNA對靶標(biāo)基因sox2和oct4的激活效果(圖2)。
                
圖 2. MEF細(xì)胞中,Sox2和Oct4基因啟動子區(qū)和Oct4增強(qiáng)子區(qū)不同sgRNA的轉(zhuǎn)錄激活效果驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)        


2. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)對重要基因進(jìn)行內(nèi)源激活,能成功獲得iPS。
       隨后,同樣使用此方法,利用篩選出來18個有效sgRNA,分別激活7個重要基因: Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nr5a2, Glis 1, Cebpa。將MEF利用病毒感染方法進(jìn)行18 sgRNA導(dǎo)入后,與dCas9-SunTag-VP64形成復(fù)合體,激活了OG2-MEF中相應(yīng)內(nèi)源基因的表達(dá),經(jīng)過17天的誘導(dǎo)后,成功得到了iPS細(xì)胞,并穩(wěn)定傳代,且顯示出與胚胎干細(xì)胞相同的克隆形態(tài)。通過免疫熒光和QPCR,顯示得到的iPS表達(dá)Nanog, Sox2和SSEA-1,相關(guān)干細(xì)胞基因表達(dá)水平與RI胚胎干細(xì)胞相比,均相當(dāng)或者超過。此部分證明CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)進(jìn)行內(nèi)源激活時,能成功實(shí)現(xiàn)iPS誘導(dǎo)(圖3)。
 
圖3. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)同時激活Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nr5a2, Glis 1, Cebpa內(nèi)源表達(dá)時,能成功實(shí)現(xiàn)iPS誘導(dǎo)                         

3. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)單獨(dú)對Sox2基因進(jìn)行內(nèi)源激活,也能有效獲得iPS
       研究者單獨(dú)選取了能對Sox2進(jìn)行激活的SgRNA進(jìn)行iPS誘導(dǎo),發(fā)現(xiàn)在有效激活內(nèi)源Sox2基因表達(dá)的情況下,能成功得到誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞,并能穩(wěn)定增殖傳代。得到iPS通過體內(nèi)體外實(shí)驗(yàn),如干細(xì)胞基因表達(dá)情況檢測實(shí)驗(yàn)(免疫熒光、qPCR等)、囊胚注射實(shí)驗(yàn)等,在囊胚注射實(shí)驗(yàn)后,還得到了嵌合體小鼠,并能穩(wěn)定地生殖傳遞,后代中得到OG2小鼠品系的小鼠。這些實(shí)驗(yàn)證明了iPS細(xì)胞系的完整干性:穩(wěn)定自我更新能力和多向分化能力(圖4)。
                 圖4. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)單獨(dú)激活Sox2內(nèi)源表達(dá)時,能成功實(shí)現(xiàn)iPS誘導(dǎo)   

4. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)同時對Oct4基因啟動子區(qū)和增強(qiáng)子區(qū)進(jìn)行內(nèi)源激活,能有效獲得iPS
      接下來,研究者選取靶標(biāo)位置為Oct4啟動子區(qū)或者增強(qiáng)子區(qū)的sgRNA進(jìn)行誘導(dǎo)實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)單獨(dú)利用Oct4啟動子區(qū)的sgRNA或者增強(qiáng)子區(qū)sgRNA對Oct4基因進(jìn)行激活時,雖然表達(dá)激活,但內(nèi)源強(qiáng)度無法得與胚胎干細(xì)胞系R1相比。在誘導(dǎo)過程中,單獨(dú)的sgRNA無法得到iPS。Oct4啟動子區(qū)的sgRNA或者增強(qiáng)子區(qū)sgRNA進(jìn)行組合時,內(nèi)源Oct4表達(dá)強(qiáng)度得到了很好的提升,最終得到iPS,并能穩(wěn)定增殖傳代。得到iPS通過體內(nèi)體外實(shí)驗(yàn),如干細(xì)胞基因表達(dá)情況檢測實(shí)驗(yàn)(免疫熒光、qPCR等)、囊胚注射實(shí)驗(yàn)等,在囊胚注射實(shí)驗(yàn)后,還得到了嵌合體小鼠,并能穩(wěn)定地生殖傳遞,后代中得到OG2小鼠品系的小鼠。這些實(shí)驗(yàn)證明了iPS細(xì)胞系的完整干性:穩(wěn)定自我更新能力和多向分化能力(圖5)。

            
圖 5. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)同時對Oct4基因啟動子區(qū)和增強(qiáng)子區(qū)進(jìn)行內(nèi)源激活能有效獲得iPS                                       

文章小結(jié)
      作為利用CRISPR-dCas9激活系統(tǒng)進(jìn)行iPS構(gòu)建,作者非常有力地證明了CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)對構(gòu)建iPS的有效性?梢灶A(yù)見,后續(xù)的MEF直接誘導(dǎo)形成心肌細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞的研究中,此系統(tǒng)很可能也有一席之地。此文章既進(jìn)行了相關(guān)技術(shù)方法探索,也回答了一個非常好的科學(xué)問題:iPS誘導(dǎo)過程中,相關(guān)內(nèi)源基因的表觀遺傳學(xué)變化直觀重要。
在表觀遺傳學(xué)研究中,CRIPSR-dCas9激活內(nèi)源基因表達(dá)的應(yīng)用,會相對廣泛一些。CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)稍加改進(jìn),很可能是直接改變相關(guān)基因表觀遺傳學(xué)特征的利器。

解析文獻(xiàn)
P. Liu, M. Chen, Y. Liu, L.S. Qi, S. Ding. CRISPR-Based Chromatin Remodeling of the Endogenous Oct4 or Sox2 Locus Enables Reprogramming to Pluripotency, Cell stem cell, 22 (2018) 252-261.


參考文獻(xiàn)
1. Black, J. B., Adler, A. F., et al. (2016) Targeted Epigenetic Remodeling of Endogenous Loci by CRISPR/Cas9-Based Transcriptional Activators Directly Converts Fibroblasts to Neuronal Cells. Cell stem cell 19, 406-414
2Chakraborty, S., Ji, H., Kabadi, A. M., et al. (2014) A CRISPR/Cas9-based system for reprogramming cell lineage specification. Stem cell reports 3, 940-947
3. Chavez, A., Scheiman, J., et al. (2015) Highly efficient Cas9-mediated transcriptional programming. Nature methods 12, 326-328
4. Thakore, P. I., D'Ippolito, A. M., et al. (2015) Highly specific epigenome editing by CRISPR-Cas9 repressors for silencing of distal regulatory elements. Nature methods 12, 1143-1149
5. Buganim, Y., Faddah, D. A., et al. (2012) Single-cell expression analyses during cellular reprogramming reveal an early stochastic and a late hierarchic phase. Cell 150, 1209-1222
6.Takahashi, K., and Yamanaka, S. (2006) Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell 126, 663-676

 

來源:武漢金開瑞生物工程有限公司
聯(lián)系電話:027-62431110
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標(biāo)簽: CRISPR Cas9
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