18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究, 生物儀器,試劑,實(shí)驗(yàn)耗材,選購,比較,標(biāo)準(zhǔn),概況,選擇要點(diǎn),市場(chǎng),指南"/>

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使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究

瀏覽次數(shù):3430 發(fā)布日期:2013-8-20  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

Matthew A.Lauber、Stephan M.Koza和Kenneth J.Fountain
沃特世公司(美國馬薩諸塞州米爾福德市)

應(yīng)用優(yōu)勢(shì)

兩種具備獨(dú)特選擇性的雜化顆粒色譜柱(BEH130 C18和CSH130 C18)。

在使用最優(yōu)濃度的HOAc調(diào)節(jié)流動(dòng)相時(shí),BEH130 C18和CSH130 C18獲得的目標(biāo)肽峰比使用0.1%TFA時(shí)更窄,分離度也更高。利用這一特性,可以通過更少的步驟獲得含有藥用反離子的肽。

BEH130 C18和CSH130 C18由細(xì)胞色素c的胰蛋白酶消化液進(jìn)行質(zhì)控測(cè)試。

沃特世解決方案
ACQUITY UPLC® H-ClassBio系統(tǒng)
XSelect™CSH130 C18,5μm
XBridge™BEH130 C18,5μm
MassPREP™肽混合物

關(guān)鍵詞
反相(RP),肽,乙酸(HOAc),表面帶電雜化顆粒(CSH),CSH130 C18,BEH130 C18,制備型色譜,肽分離技術(shù)(PST)

簡(jiǎn)介
經(jīng)證實(shí),肽在研究中是非常有用的治療劑和標(biāo)記物。通常,為了實(shí)現(xiàn)這些用途,會(huì)通過制備型反相(RP)色譜對(duì)肽進(jìn)行純化。在大多數(shù)情況下,純化出來的肽必須具有高純度。如果存在污染物,會(huì)干擾生物分析的結(jié)果。如果活性藥物成分中存在污染物,后果將會(huì)非常嚴(yán)重。因此,需要較高的色譜分辨率來盡量減少與目標(biāo)肽化學(xué)性質(zhì)非常接近的共洗脫雜質(zhì)。此外,還需要色譜柱填料具有卓越的載樣量,確保實(shí)現(xiàn)最佳的通量和生產(chǎn)率。肽分離使用的流動(dòng)相中通常包含強(qiáng)離子對(duì)試劑,例如三氟乙酸(TFA)。但是,如果選用含有TFA的流動(dòng)相,需要進(jìn)行額外的制備步驟。由于三氟乙酸鹽(TFA鹽)固有的毒性,必須將其除去或置換1。最好使用毒性較低的反離子,尤如乙酸鹽。實(shí)際上,大部分肽藥都是乙酸鹽或含有乙酸的液體制劑2-3。因此,盡可能用乙酸(HOAc)流動(dòng)相替代TFA流動(dòng)相,這種做法似乎更有優(yōu)勢(shì)。之前曾有研究表明,在使用HOAc流動(dòng)相和等度反相色譜后,TFA溶液中的肽(例如粗制合成肽)4-5大部分轉(zhuǎn)化為乙酸鹽形式6。同時(shí),使用高濃度乙酸鹽緩沖液通過簡(jiǎn)單的洗脫步驟進(jìn)行梯度分離,可實(shí)現(xiàn)更徹底的鹽形式轉(zhuǎn)化。7總之,使用HOAc流動(dòng)相可簡(jiǎn)化純化過程,有利于通過更少的步驟獲得所需肽和反離子。

本文研究了使用BEH C18和CSH™ C18色譜柱進(jìn)行制備型肽分離的過程。BEH C18是一種有機(jī)硅C18固定相,基于亞乙基橋雜化顆粒(BEH)技術(shù),并具有卓越的耐用性和pH穩(wěn)定性。表面帶電雜化顆粒(CSH)C18則是BEH C18的升級(jí)產(chǎn)品,其表面被修飾在酸性條件下帶有微弱正電荷。以下數(shù)據(jù)證明了這兩種固定相均適用于高上樣量的肽分離,既可用于TFA調(diào)節(jié)的流動(dòng)相,也可用于HOAc調(diào)節(jié)的流動(dòng)相。并且,在高上樣量下,BEH C18和CSH C18在使用經(jīng)優(yōu)化的HOAc流動(dòng)相時(shí)獲得的目標(biāo)峰均比使用0.1%TFA時(shí)更窄。 

實(shí)驗(yàn)樣品
描述
將MassPREP肽混合物(部件號(hào)186002337,如表1所示)復(fù)溶于0.1%TFA或0.1%HOAc(取決于所用流動(dòng)相)中,使肽的總濃度為0.6或2.0mg/mL(取決于上樣量)。將合成肽的低純度(<70%)制備樣品DFVGYGVKDFVGVGVK復(fù)溶于0.1%TFA/0.1%HOAc中,使?jié)舛葹?或4mg/mL。 

方法條件(除非另有說明)

LC條件
系統(tǒng):帶20-cm柱溫箱的ACQUITY UPLC H-ClassBio系統(tǒng)
檢測(cè)條件:帶500-nL分析型流通池的ACQUITY UPLC TUV檢測(cè)器
Xevo®G2 vQ-Tof™質(zhì)譜儀
波長:214和250nm
掃描率:2Hz(過濾時(shí)間常數(shù),1s)
色譜柱:XBridge BEH130 C184.6×100mm,5μm,多孔,130Å(部件號(hào)186003579)
XSelect CSH130 C184.6×100mm,5μm,多孔,130Å(部件號(hào)186007077)
柱溫:40℃
樣品溫度:10℃
進(jìn)樣體積:50至1000μL,上樣量見下文
流速:1mL/min(在UV檢測(cè)器后分流,以大約20μL/min注入MS源)
流動(dòng)相:參見梯度表
樣品瓶:LCGC認(rèn)證透明玻璃12×32mm螺口Qsert樣品瓶(部件號(hào)186001126C)

 梯度:MassPREP肽混合物
A:0.1%(v/v)TFA水溶液
B:0.1%(v/v)TFA的
90:10乙腈(ACN)/水溶液

A:0.1%(v/v)HOAc水溶液
B:0.1%(v/v)HOAc的
90:10ACN/水溶液
 DFVGYGVKDFVGVGVK的聚焦梯度
A:0.1%(v/v)TFA水溶液
B:0.1%(v/v)TFA的90:10ACN/水溶液
 
時(shí)間(min) %A %B
0 99.5 0.5
1 99.5 0.5
61 40.0 60.0
62 10.0 90.0
65 10.0 90.0
66 99.5 0.5
85 99.5 0.5
 
時(shí)間(min)          %A          %B
0 90 10
3 90 10
4 80 20
24.2 60 40
29.2 10 90
32.2 10 90
33.2 90 10
52 90 10

A:0.1%(v/v)HOAc水溶液
B:0.1%(v/v)HOAc的90:10ACN/水溶液

A:99:1(v/v)水/HOAc–1%HOAc
B:90:9:1(v/v)ACN/水/HOAc–1%HOAc

時(shí)間(min)
%A
%B
0.0 90 10
3.0 90 10
3.3 87 13
23.5 67 33
29.2 10 90
32.2 10 90
33.2 90 10
52.0 90 10

MS條件
質(zhì)譜儀:Xevo G2Q-Tof
電離模式:ESI+
分析儀模式:分離度
毛細(xì)管電壓:3.00kV
錐孔電壓:25V
源溫度:120°C
脫溶劑氣體溫度:350°C
錐孔氣體流速:0.0L/h
脫溶劑氣體流速:800L/h
校正:NaI,1μg/μL,50至2000m/z
采集:50至1990m/z,
2Hz掃描率

數(shù)據(jù)管理
MassLynx軟件4.1版

結(jié)果與討論
含有九種組分的肽混合物的載量研究
在之前的研究中,已經(jīng)對(duì)CSH130 C18和BEH130 C18在分析型肽分離中的應(yīng)用(例如肽圖繪制)進(jìn)行了廣泛的探討8-9。簡(jiǎn)而言之,與其他肽分離反相填料相比,CSH130 C18及其創(chuàng)新的表面帶電技術(shù)能夠改善峰形和載量。在分析型應(yīng)用中,尤其是在流動(dòng)相含有極少或不含離子對(duì)試劑時(shí),可以觀察到峰容量有顯著升高,最高達(dá)到90%。與BEH130 C18相比,CSH130 C18的表面正電荷還提供了獨(dú)特的選擇性和較低的保留性,使得它們成為肽分離色譜填料的絕佳搭配。

為了研究CSH130 C18和BEH130 C18在制備型分離中的表現(xiàn),采用生產(chǎn)中常用的流動(dòng)相(即含有TFA或HOAc的流動(dòng)相)對(duì)一系列不同肽進(jìn)行了載量研究。這些方法開發(fā)實(shí)驗(yàn)中使用的是5μm顆粒填充的分析柱(4.6mm內(nèi)徑)。

首先在這些色譜柱上進(jìn)行測(cè)試的是MassPREP肽混合物,其包含九種不同的肽,如表1所示。圖1所示為該混合物在半制備型上樣下的一組色譜圖,其中使用了BEH130 C18和CSH130 C18,以及兩種不同的流動(dòng)相,一種含有0.1%TFA,另一種含有0.1%HOAc。使用0.1%TFA時(shí),BEH色譜柱的平均4峰寬為0.8min。使用0.1%HOAc時(shí),平均峰寬幾乎翻了一倍,達(dá)到1.5min。HOAc的酸性比TFA弱得多,從而導(dǎo)致流動(dòng)相酸性減弱,離子強(qiáng)度和離子配對(duì)能力均顯著降低。因此預(yù)計(jì)使用HOAc代替TFA時(shí),大部分C18柱的峰形會(huì)較差。這一假設(shè)對(duì)于BEH130 C18的半制備型上樣是成立的,如圖1所示。然而對(duì)于CSH130 C18色譜柱,用HOAc替換TFA時(shí)峰形仍保持良好。使用0.1%TFA流動(dòng)相和0.1%HOAc流動(dòng)相時(shí),在CSH130色譜柱中觀察到的平均4峰寬分別為0.5和0.6min。峰寬數(shù)據(jù)匯總于圖2中,其中分別繪出了在不同色譜柱類型和流動(dòng)相條件下混合物中每種肽的峰寬。除了半制備型上樣量的數(shù)據(jù)之外,圖中還顯示了分析型上樣量的數(shù)據(jù)。此圖表明BEH130 C18和CSH130 C18在一些條件下會(huì)生成類似的肽峰形,包括0.1%TFA的分析型上樣量。但是,在其他條件下,例如0.1%HOAc的半制備型上樣量,CSH130 C18生成的峰要窄得多。正如之前研究所證實(shí)8-9,CSH130 C18在使用含有極少或不含離子對(duì)試劑的酸性流動(dòng)相時(shí),獲得的肽峰形明顯更好。同時(shí)也表明,當(dāng)上樣量高于常規(guī)分析20倍時(shí),這種現(xiàn)象更為明顯。

使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究

使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究

低純度合成肽
制備型分離往往要求上樣量必須達(dá)到(有時(shí)要高于)分析型分離所用上樣量的1000倍。使用序列為DFVGYGVKDFVGVGVK的低純度合成肽(一種中性肽,pI=6,1.7kDa),對(duì)低于此范圍和此范圍之內(nèi)的上樣量進(jìn)行研究。在BEH和CSH色譜柱上采用聚焦梯度分離以縮短運(yùn)行時(shí)間,使用低靈敏度波長(250nm)檢測(cè)以獲取完整峰形。

首先使用經(jīng)0.1%HOAc調(diào)節(jié)的流動(dòng)相對(duì)半制備型和制備型上樣量進(jìn)行分析,如圖3所示。BEH色譜柱上的半制備型上樣量(50μg)產(chǎn)生的目標(biāo)肽峰帶有明顯拖尾,這與常見的Langmuirian等溫線一致。相反,在制備型上樣量(1mg)下,目標(biāo)肽的洗脫峰呈略微前伸,正如典型的anti-Langmuirian等溫線。我們知道,當(dāng)肽以兩性離子形式存在時(shí),就會(huì)出現(xiàn)anti-Langmuirian等溫線10。由此可知,經(jīng)0.1%HOAc調(diào)節(jié)的流動(dòng)相酸性不足以將這種合成肽的羧基完全質(zhì)子化,肽可能同時(shí)以陽離子和兩性離子存在。兩性離子的相對(duì)含量應(yīng)隨上樣量增大而增大,尤其是在目標(biāo)肽濃度超過流動(dòng)相的質(zhì)子化/緩沖能力情況下。這就解釋了BEH色譜柱上樣量增大時(shí)峰形出現(xiàn)的巨大變化。

有趣的是,正如在圖3中所看到的,對(duì)于BEH130 C18,在制備型上樣量下使用0.1%HOAc似乎更容易獲得較窄的目標(biāo)肽峰。在這些條件下,BEH色譜柱得到的目標(biāo)肽峰比CSH色譜柱更窄。事實(shí)上,CSH130 C18使用0.1%HOAc時(shí)在兩種上樣量下都獲得了前伸峰。由于其表面所帶的正電荷最大程度地減少了肽的拖尾,所以出現(xiàn)這種情況是意料之中的8-9。因此,前伸峰形也更加明顯。由于沒有拖尾峰,制備型上樣量下CSH柱的目標(biāo)峰寬度實(shí)際上要大于BEH柱。

使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究

基于此,CSH130 C18和BEH130 C18生成最佳峰形的流動(dòng)相條件應(yīng)該有所不同。為此,還使用10倍酸性的酸(1%HOAc)調(diào)節(jié)的流動(dòng)相進(jìn)行了分離。盡管中等濃度對(duì)于開發(fā)純化工藝可能具有一定參考價(jià)值,但此處未對(duì)其進(jìn)行評(píng)估。如圖3所示,改變流動(dòng)相組分后,CSH柱的峰形大大改善,但BEH柱的峰形變得更差。使用二者各自的最佳HOAc流動(dòng)相時(shí),BEH柱(0.1%HOAc)和CSH柱(1%HOAc)都能生成較窄的目標(biāo)肽峰(半峰寬分別為0.5和0.6min)。為了參照,使用0.1%TFA作為離子對(duì)試劑進(jìn)行了分離,如圖3中右側(cè)所示。在使用TFA時(shí),CSH130 C18上的目標(biāo)肽峰寬為0.6min,BEH130 C18上則為1.1min。無論選用哪種色譜柱填料,使用優(yōu)化的HOAc流動(dòng)相獲得的肽目標(biāo)峰都遠(yuǎn)遠(yuǎn)窄于TFA流動(dòng)相。這些結(jié)果表明,乙酸流動(dòng)相對(duì)于肽制備型分離更為實(shí)用。

較窄的目標(biāo)肽峰往往伴隨著更高的雜質(zhì)分離度,從而有機(jī)會(huì)收集到純度更高的流分。色譜柱填料和流動(dòng)相添加劑對(duì)DFVGYGVKDFVGVGVK制備型上樣量的影響如圖4所示,其中重點(diǎn)顯示了基線以及每種分離方法對(duì)目標(biāo)峰中雜質(zhì)的分離能力,這些雜質(zhì)已通過MS確認(rèn)。如前所述,HOAc流動(dòng)相獲得的目標(biāo)峰更窄。圖4還表明,使用HOAc流動(dòng)相也在最大程度上減少了所監(jiān)測(cè)雜質(zhì)的共洗脫。此外,很明顯可以看出,通過使用不同的流動(dòng)相添加劑和兩種不同的色譜柱填料,目標(biāo)肽和雜質(zhì)之間的色譜選擇性發(fā)生了極大的變化。就此項(xiàng)載量研究篩選的參數(shù)而言,采用1%HOAc流動(dòng)相的CSH柱提供的目標(biāo)肽峰最窄,并且所監(jiān)測(cè)雜質(zhì)的共洗脫也最少。不過,使用BEH色譜柱和0.1%HOAc流動(dòng)相也能獲得與此相當(dāng)?shù)姆蛛x效果。具有不同選擇性和最佳添加劑濃度的色譜柱填料將會(huì)有利于高難度制備型分離工藝的開發(fā)。

使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究

以上我們僅對(duì)合成肽的中等制備型上樣量(1mg)結(jié)果進(jìn)行了討論。圖5所示為4mg肽上樣得到的色譜圖。這一上樣量對(duì)應(yīng)0.5g原料,對(duì)于較大的50mm內(nèi)徑色譜柱,這是非常高的單次進(jìn)樣生產(chǎn)率。從這些數(shù)據(jù)可以明顯看出,CSH和BEH色譜柱都適合用于高上樣量。值得注意的是,從半制備型(50μg)到制備型(4mg),CSH色譜柱獲得的峰形保持了驚人的一致。當(dāng)需要在不消耗大量樣品前提下開發(fā)分離方法時(shí),這種高度可預(yù)測(cè)性可能會(huì)非常有用。

 使用雜化顆粒C18色譜柱和乙酸流動(dòng)相進(jìn)行肽的高載量研究

結(jié)論
根據(jù)對(duì)分析型內(nèi)徑色譜柱進(jìn)行的載量研究,5-μm BEH130 C18和5-μm CSH130 C18在使用含TFA或HOAc的流動(dòng)相時(shí)均顯示出有利于制備型肽分離的巨大潛力。BEH130 C18和CSH130 C18色譜柱都具備有益特性。在酸性條件下,CSH130 C18與BEH130 C18相比顯示出更高的載樣能力,并且通常能產(chǎn)生更窄的目標(biāo)峰。因此,CSH130 C18流分體積更少,這一特性對(duì)后續(xù)的純化和去溶劑步驟可能會(huì)有幫助。BEH130 C18則極適于中性/堿性pH環(huán)境下的制備分離,因其在此類條件下具有更長更高的溫度穩(wěn)定性。最后,CSH130 C18和BEH130 C18還各自表現(xiàn)出獨(dú)特選擇性,成為解決高難度雜質(zhì)/目標(biāo)肽分析問題的有效搭配。

比上述特性更引人注意的是,兩種固定相分別在不同濃度的流動(dòng)相添加劑下對(duì)制備級(jí)上樣量的合成肽取得了最佳效果。使用優(yōu)化的HOAc時(shí)取得的峰形最佳,比使用0.1%TFA效果更好。這意味著可以利用這些雜化顆粒C18色譜柱簡(jiǎn)化純化工藝,因?yàn)槭褂肏OAc流動(dòng)相可用更少的步驟即獲得含有藥用反離子的肽。

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來源:沃特世科技(上海)有限公司
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