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無稀釋的冷凍電鏡樣品優(yōu)化解決方案

瀏覽次數(shù):402 發(fā)布日期:2024-7-5  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

·4分鐘,高通量,40nL樣品,無稀釋,多維質(zhì)控優(yōu)化冷凍電鏡樣品·
冷凍電鏡發(fā)展難題:不能忽略的樣品制備技術(shù)

冷凍電鏡(Cryo-Electron Microscopy)解析生物分子結(jié)構(gòu)在過去的十年間迅速成為結(jié)構(gòu)生物學(xué)領(lǐng)域中一種極具吸引力的方法。隨著Cryo-EM的爆炸式普及,樣品制備必須與時俱進(jìn),以防止工作流程中斷,導(dǎo)致反復(fù)耗時的的實(shí)驗(yàn)過程。

目前,樣品制備已成為工作流程中的主要障礙,部分結(jié)構(gòu)生物學(xué)科學(xué)家和工程師將研究方向鎖定在解決這一難題上。

隨著研究的樣品越來越異質(zhì)化和復(fù)雜化,研究者需要更繁瑣的優(yōu)化流程以及更高的研究成本。雖然優(yōu)化樣品的技術(shù)層出不窮,但每種方法的效果因樣品而異。目前,很多樣品優(yōu)化的結(jié)果主要取決于用戶的專業(yè)知識和經(jīng)驗(yàn),這一過程可能會變得越來越耗時和具有挑戰(zhàn)性。

樣品優(yōu)化和負(fù)染載網(wǎng)制備過程中會遇到許多變量尤其是每個流程中都需要對樣品進(jìn)行稀釋,因此很難確定因果關(guān)系。研究人員只能在電鏡下對樣品進(jìn)行分子水平的評估。雖然一次制備載網(wǎng)的過程不需要太多時間,但為獲得合適的條件而進(jìn)行的反復(fù)試驗(yàn)卻耗時耗力。從實(shí)際情況來看,這使得實(shí)驗(yàn)方案難以標(biāo)準(zhǔn)化


為了簡化目前的冷凍電鏡樣品制備流程,我們需要一種高通量,快速的,在無稀釋條件下直接表征樣品穩(wěn)定性的技術(shù)手段。FIDA是一種基于第一性原理直接表征分子絕對水動力學(xué)半徑的技術(shù),可以實(shí)現(xiàn)無稀釋,高通量,多維度表征樣品的穩(wěn)定性,是全新的樣品質(zhì)控解決方案。

評估樣品優(yōu)化參數(shù)多,一個完整流程往往需要多種儀器,每個流程中都需要對樣品進(jìn)行稀釋,很難確定因果關(guān)系,導(dǎo)致高成本長時間優(yōu)化后仍然不能得到完美的冷凍電鏡結(jié)果。

英國知名的蛋白質(zhì)科學(xué)服務(wù)公司PEAKProtein,使用FIDA對蛋白質(zhì)進(jìn)行全面QC分析,相較于傳統(tǒng)QC方法,效率、精度及成本得到全面提升和改善,目前已經(jīng)將FIDA技術(shù)全面應(yīng)用于冷凍電鏡相關(guān)技術(shù)的服務(wù)流程。實(shí)現(xiàn)了對原有采用SDS-PAGE、FSEC、負(fù)染的流程進(jìn)行了優(yōu)化。
 


 

FIG1.FIDA的冷凍電鏡解決方案,從小規(guī)模構(gòu)建,放大生產(chǎn)質(zhì)控與樣品優(yōu)化全流程都大部分工作可直接通過FIDA完成,尤其是無稀釋的樣品優(yōu)化,可大大提高得到高質(zhì)量冷凍電鏡數(shù)據(jù)成功率。
 


表1:蛋白質(zhì)量表征技術(shù)比較


難題2 影響冷凍電鏡結(jié)果質(zhì)量因素很多,需要在樣品制備與優(yōu)化時采用多維度數(shù)據(jù)評估
FIDA技術(shù)單次運(yùn)行只需要40 nL 蛋白質(zhì)在 4 分鐘內(nèi)獲得的完整蛋白質(zhì) QC 圖,包括冷凍電鏡樣品QC的關(guān)鍵參數(shù)表征,例如多分散性指數(shù)(PDI),聚集(Agg),粘度(Viscosity),粘附性(Stickiness),完整性(Rh)等指標(biāo),F(xiàn)IDA是一種非常有效的支持所有生物物理學(xué)和結(jié)構(gòu)生物學(xué)的基本工具。

其中需要強(qiáng)調(diào)的是FIDA不僅可以看到溶液中的蛋白質(zhì),還可以看到可溶性和不可溶性聚集體,并可以量化后者,而且可以確定寡聚狀態(tài)并實(shí)際計算二聚化的 Kd。

FIDA所獲得的Rh為絕對的粒徑大小,可以直接與后期的電鏡數(shù)據(jù)做比較。此外FIDA內(nèi)置的 PDB 關(guān)聯(lián)程序,可以將實(shí)際獲得的 Rh 與數(shù)據(jù)庫中的結(jié)構(gòu)信息進(jìn)行比較,有助于結(jié)構(gòu)的精細(xì)解析。


FIG2. FIDA單次測試的8個質(zhì)控參數(shù)


難題3 膜蛋白難以純化,需要用去垢劑溶解,但有效提取膜蛋白的去垢劑不一定適用于冷凍電鏡,需要高通量快速方法優(yōu)化膜蛋白增溶條件

納升級樣品高通量膜蛋白的去垢劑增溶條件篩選

FIG3.用40nL的GFP標(biāo)記的Lac-Y蛋白座位指示劑,采用11種不同去垢劑方案對蛋白溶解程度和PDI指數(shù)檢測
 


FIG4.FIDA檢測在11種去垢劑的GFP-LacY熒光信號峰值圖和直方圖


將FIDA檢測的在不同11種去垢劑的GFP-LacY峰值圖信號疊加,其中峰面積代表了溶解蛋白的濃度,將峰值面積整理成直方圖顯示了去垢劑溶解蛋白的能力。


FIG5.11種去垢劑中的GFP-LacY多分散指數(shù)(PDI)
 

FIG6.11種去垢劑中的GFP-LacY增溶效果排序


FIDA再根據(jù)峰值的形狀計算了了不同去垢劑中蛋白的多分散指數(shù)(PDI),可確定樣品是否在去垢劑中呈單分散狀態(tài),這是評估樣品是否適合高質(zhì)量單粒子冷凍電鏡的關(guān)鍵指標(biāo)。最后綜合樣品在去垢劑中的溶解度和PDI進(jìn)行對不同組合排序可以得到最優(yōu)的組合,并且最終結(jié)果與FSEC方法一致。

難題4 聚合蛋白低聚條件的條件高通量篩選


FIG7.aSOs-Alexa488樣品在12種添加不同化合物緩沖液中的低聚物與單體比例


FIDA高通量評估在加入12種不同化合物緩沖液中預(yù)孵育后,aSOs-Alexa488樣品聚合和單體的Rh和比例,在復(fù)合體/聚集體樣品的制備和優(yōu)化中可評估緩沖液體系是否能維持樣本有活性的聚合狀態(tài)。
 


FIG8. 膜蛋白在不同pH值、離子強(qiáng)度、溫度、血漿濃度等條件下篩選

有一些蛋白在冷凍電鏡前需要正確組裝并保證其生物活性,例如一些藥物靶點(diǎn)蛋白,以二聚體或多聚體的形式保持活性狀態(tài),或者某些蛋白復(fù)合物分子,很多情況下需要復(fù)雜的緩沖液優(yōu)化或者需要在血漿、配體或細(xì)胞裂解液的環(huán)境中,這使得我們對樣品制備質(zhì)控時需要在多條件和復(fù)雜條件下對樣品進(jìn)行評估。

FIDA通過獨(dú)有的流體誘導(dǎo)分子擴(kuò)散原理,可實(shí)現(xiàn)對于分子的全面和絕對的質(zhì)量表征,其極佳的靈敏度和分辨率只需少量的樣品消耗,通過全自動進(jìn)樣系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)高通量的無人值守操作。FIDA的第一性原理的單平臺多參數(shù)功能極大提升了復(fù)雜實(shí)驗(yàn)的產(chǎn)出效率,其對不同樣品的兼容性有望成為一款基礎(chǔ)的結(jié)構(gòu)生物學(xué)研究利器。


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