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EVIDENT共聚焦/超分辨助力Nature發(fā)文揭示應(yīng)激顆粒亞型鑒定范式

瀏覽次數(shù):988 發(fā)布日期:2024-6-4  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
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本文作者:尚澤華
四川大學(xué)生物治療全國重點實驗室賈大課題組


應(yīng)激顆粒(SGs)是真核細(xì)胞在應(yīng)對缺氧、熱休克、病毒感染和氧化應(yīng)激等各種應(yīng)激時形成的無膜 RNA 顆粒1。SGs 的形成會導(dǎo)致細(xì)胞新陳代謝的重新規(guī)劃、翻譯的抑制以及正常細(xì)胞信號的改變,從而幫助細(xì)胞存活。SG 是通過一種稱為液-液相分離(LLPS)的物理過程形成的,其中包含許多蛋白質(zhì),包括小核糖體亞基、翻譯起始因子、翻譯受阻的 mRNA 和 RNA 結(jié)合蛋白2。最近發(fā)現(xiàn)了一個由 36 個 SG 蛋白組成的核心 SG 網(wǎng)絡(luò),其中 G3BP1/2 是中心節(jié)點3。這些蛋白對調(diào)節(jié) SG 的組裝和功能至關(guān)重要。在許多病理情況下,如病毒感染4-8、神經(jīng)退行性疾病9-11和癌癥12、13等,SG的組裝和分解失調(diào)都會發(fā)生,這突出了SG在人類疾病中的重要性。最近的研究發(fā)現(xiàn),不同類型的應(yīng)激會誘導(dǎo)不同的 SG 亞型,這些亞型在組成、組裝和解體的動態(tài)以及細(xì)胞功能方面各不相同14。例如,亞砷酸鈉或熱休克處理會誘導(dǎo)形成典型的 SG,這種 SG 更具有活力,能起到促進生存的作用15。與此相反,亞硒酸鈉等化療藥物或紫外線照射會導(dǎo)致非典型 SG 的形成,這種 SG 的動態(tài)性較弱,對細(xì)胞有促進凋亡的作用15、16。盡管應(yīng)激特異性 SG 亞型的概念正在形成7、15、17-19,但它們不同的蛋白質(zhì)和 RNA 組成及功能在很大程度上仍未得到探索。

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2024年5月15日,四川大學(xué)生物治療全國重點實驗室賈大課題組與合作者在Nature communications雜志( IF=16.6 (2023) / JCR分區(qū): Q1 )在線發(fā)表了題為“TRIM25 predominately associates with anti-viral stress granules“ 的研究論文。該工作利用 G3BP1 鄰近蛋白生物素化標(biāo)記實驗發(fā)現(xiàn) TRIM25 是抗病毒 SG 的有效標(biāo)記物。課題組成員發(fā)現(xiàn) TRIM25 會獨立發(fā)生 LLPS 現(xiàn)象,而 dsRNA 的存在會顯著增強這種反應(yīng)。Poly(I:C)處理和RNA病毒感染都會引發(fā)TRIM25和G3BP1的共相分離,從而顯著提高TRIM25對底物的泛素化活性,其中許多底物都定位于SGs中。TRIM25和G3BP1的共相分離對激活RIG-I信號通路和限制RNA病毒感染至關(guān)重要。該研究不僅為抗病毒信號通路的調(diào)控提供了新的見解,而且為研究應(yīng)激特異性 SG 亞型的組成、動態(tài)和功能建立了一個研究范式。
 

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該研究首先采用了一種鄰近生物素化標(biāo)記(BioID)方法(圖1)來鑒定poly(I:C)刺激下的 G3BP1 相互作用網(wǎng)絡(luò)。在 937 個差異蛋白中,有 181 個屬于以前鑒定的 SG 蛋白成分,包括許多 SG 核心蛋白,如 HDAC6 和 DDX3X。有趣的是,TRIM25在所有蛋白中增加最為顯著,它是一個泛素化依賴性抗病毒先天免疫反應(yīng)的驅(qū)動蛋白,經(jīng) poly(I:C) 處理后富集了 130 倍(圖1)。這意味著,poly(I:C) 處理會刺激 TRIM25 被招募到 SG(即抗病毒 SG)中。

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圖1. G3BP1的鄰近蛋白標(biāo)記組鑒定到TRIM25是受poly(I:C)處理富集的SG核心蛋白

(A) G3BP1 BioID 方法與基于 TMT 的定量蛋白質(zhì)組學(xué)相結(jié)合的示意圖。(B) 如(A)中所確定的,由 poly(I:C) 處理誘導(dǎo)的 SGs 核心蛋白列表。

隨后,研究人員為了探究poly(I:C)處理導(dǎo)致的TRIM25被招募到SG中是否有特異性,使用各種應(yīng)激誘導(dǎo)劑,系統(tǒng)地處理了過表達(dá)GFP-TRIM25的HeLa細(xì)胞:RNA病毒入侵(仙臺病毒,SeV)、外源dsRNA應(yīng)激(poly(I:C))、氧化應(yīng)激(亞砷酸鈉)、ER應(yīng)激(毒胡蘿卜素)、翻譯抑制(嘌呤霉素)、蛋白酶體抑制(MG132)、能量耗竭(CCCP)、熱休克和滲透壓應(yīng)激(山梨醇)。并使用四川大學(xué)華西第二醫(yī)院技術(shù)平臺EVIDENT FV3000激光共聚焦顯微鏡檢測TRIM25與G3BP1顆粒的共定位狀態(tài)。不出所料地,所有誘導(dǎo)劑都輕易地誘導(dǎo) G3BP1 陽性顆粒的形成。有趣的是,雖然在多種條件下都能觀察到 TRIM25 點狀聚集,但只有當(dāng)細(xì)胞感染 SeV 或用 poly(I:C) 處理時,TRIM25 和 G3BP1 才會形成共定位的點狀物(圖2)。

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圖2. TRIM25僅在poly(I:C)和SeV處理下與G3BP1共定位

(A) 具有代表性的熒光顯微鏡圖像顯示了在各種應(yīng)激條件下 TRIM25 與 HeLa 細(xì)胞中內(nèi)源性 G3BP1 的共定位。(B) TRIM25 和 G3BP1 病灶之間的最短距離。在 HeLa 細(xì)胞中,各種應(yīng)激類型如(A)所示。在所有應(yīng)激類型中,Sev 感染和 poly(I:C) 處理導(dǎo)致的距離最短。

然后,為了確定 TRIM25-G3BP1 相互作用是如何促成其共相分離發(fā)生的,研究人員構(gòu)建了一系列TRIM25截短突變體,并將“PTFG”鑒定為TRIM25結(jié)合G3BP1所需的最小氨基酸片段(數(shù)據(jù)未展示)。將 mCh-TRIM25(WT 或 ∆PTFG )和 GFP-G3BP1 共轉(zhuǎn)染到 HeLa 細(xì)胞中,并使用四川大學(xué)生物治療全國重點實驗室平臺EVIDENT SpinSR轉(zhuǎn)盤共聚焦快速成像和快速超高分辨率系統(tǒng)進行活細(xì)胞成像,觀察 TRIM25 液滴和 SGs的動態(tài)特征。TRIM25 WT 和 G3BP1 液滴在poly(I:C) 轉(zhuǎn)染后不到 5 小時就出現(xiàn)了,并顯示出很強的共定位(圖3)。相比之下,TRIM25 ∆PTFG 液滴的形成明顯延遲,直到 poly(I:C) 處理后 8 小時才被觀察到(圖3)。TRIM25 ∆PTFG 與 G3BP1 之間的共相分離傾向遠(yuǎn)低于 TRIM25 WT 與 G3BP1(圖3)。免疫熒光實驗進一步證實了這些觀察結(jié)果(圖3)。

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圖3. PTFG序列是TRIM25與G3BP1形成共相分離所必需的

(A) 轉(zhuǎn)染 poly(I:C) 后 G3BP1(綠色)和 TRIM25 WT 或 ∆PTFG (紅色)點狀顆粒形成的延時顯微照片,以及轉(zhuǎn)染后 6 小時或 10 小時斑點的放大圖像。比例尺:10 µm。插圖:白色框內(nèi)區(qū)域的放大圖。(B) TRIM25 的 PTFG 基序是與 HeLa 細(xì)胞中的 G3BP1 共定位所必需的。細(xì)胞轉(zhuǎn)染了 GFP-TRIM25 ∆PTFG 而不是 TRIM25 WT。比例尺:10 μm。

最后,研究人員發(fā)現(xiàn)TRIM25 和 G3BP1的共相分離對調(diào)節(jié) RIG-I 信號通路至關(guān)重要。使用定量 RT-PCR (qPCR) 方法測定干擾素通路中多個關(guān)鍵基因的 RNA水平。研究人員發(fā)現(xiàn)經(jīng) poly(I:C) 處理后,TRIM25 WT 能顯著增強 IFNα、IFNβ、IFNγ 和 ISG56 的表達(dá)。相反,轉(zhuǎn)染 TRIM25 PTFGAAAA或∆PTFG后,這些 IRF3 依賴性基因的表達(dá)則不被增強(圖4)。

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圖4. TRIM25-G3BP1 共相分離激活RIG-I介導(dǎo)的先天免疫

(A-D) 用 TRIM25 WT、TRIM25 PTFGAAAA或∆PTFG轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,然后用poly(I:C) 處理 12 小時。用qPCR測定IFNα (A)、IFNβ (B)、IFNγ (C)和ISG56 (D)的 mRNA 水平。

綜上,本文作者通過鄰近標(biāo)記G3BP1蛋白互作組結(jié)合活細(xì)胞成像與無膜細(xì)胞器的亞細(xì)胞定位分析的方法將TRIM25鑒定為應(yīng)激顆粒中承擔(dān)抗病毒功能的重要成分。該工作構(gòu)建了一個研究應(yīng)激顆粒亞型的研究框架,有助于開發(fā)更有針對性的療法來治療與應(yīng)激有關(guān)的疾病。
本文中多色熒光標(biāo)記的細(xì)胞圖像都是采用Evident激光掃描共聚焦FV3000拍攝。FV3000的全真光譜技術(shù)可以自由調(diào)整標(biāo)記熒光信號的收集波段,并有效防止不同標(biāo)記之間的熒光串?dāng)_,幫助用戶獲取更加真實可靠的數(shù)據(jù)。另外,本文還利用FV3000觀察了活細(xì)胞中的G3BP1液滴以及通過FRAP實驗驗證了其相分離特性。FV3000靈活高效的龍卷風(fēng)光刺激模式以及追蹤運動中的液滴并分析其漂白區(qū)域熒光強度變化的功能,是幫助用戶進行相分離研究的利器。(Evident新一代激光掃描共聚焦系統(tǒng)FV4000現(xiàn)已發(fā)布。)
 

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Evident新一代激光掃描共聚焦顯微鏡FV4000
 
文章中的活細(xì)胞實驗采用了Evident轉(zhuǎn)盤共聚焦超分辨系統(tǒng)SpinSR,其高速、高分辨率和低光毒性的特點,適合對快速動態(tài)變化的活細(xì)胞進行長時程觀察。
 
Evident轉(zhuǎn)盤共聚焦超分辨系統(tǒng)SpinSR
 
四川大學(xué)生物治療全國重點實驗室賈大研究員與四川大學(xué)基礎(chǔ)與法醫(yī)學(xué)院Peng Bai為本文的共同通訊作者。碩士生尚澤華,博士生張思韜、王瑾瑞為本文共同第一作者,蘇州大學(xué)博士生周莉莉、四川大學(xué)華西生物治療國重創(chuàng)新班本科生張欣悅也為本研究做出重要貢獻。本研究還得到了周芳芳、楊培國、Daniel D. Billadeau、張令強等教授的大力支持,并得到了李丕龍教授的指導(dǎo)和幫助。

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