蛋白表達(dá)純化實驗流程
瀏覽次數(shù):585 發(fā)布日期:2023-8-2
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利用pFastBac1進(jìn)行目的蛋白的表達(dá)的時候,根據(jù)蛋白純化方式的需要以及融合表達(dá)目的蛋白以提高其表達(dá)量的需要,可以在質(zhì)粒構(gòu)建時添加His標(biāo)簽或GST標(biāo)簽。為了防止額外添加的His和GST等蛋白標(biāo)簽影響目的蛋白的生物學(xué)功能和結(jié)構(gòu)研究,可在融合蛋白和標(biāo)簽之間添加蛋白酶酶切位點,如TEV或PreScission的酶切位點。如果蛋白主要以可溶形式表達(dá),離心收集昆蟲細(xì)胞,超聲裂解細(xì)胞,但由于昆蟲細(xì)胞內(nèi)蛋白酶種類比較多,需要添加各種蛋白酶抑制劑。離心收集超聲后上清,使用鎳柱或GST柱等純化目的蛋白。同時可以利用離子交換、分子篩層析等進(jìn)一步純化目的蛋白。純化獲得的蛋白,可以添加適量甘油后保存,或者如果有需要也可以適當(dāng)濃縮后保存等。
蛋白表達(dá)純化詳細(xì)步驟:
一、桿狀病毒制備與鑒定
培養(yǎng)昆蟲細(xì)胞至密度達(dá)到5×106~1×107活細(xì)胞/ml,活性≥90%。用培養(yǎng)基將細(xì)胞稀釋成2.5×106活細(xì)胞/ml 稀釋液,27℃、127 r/min 恢復(fù)25 min。用Opti⁃MEMTMI 無血清培養(yǎng)基稀釋 ExpiFectamineTMSf 轉(zhuǎn)染試劑,并加入 Bacmid DNA(pc1⁃mfp5以及gus),室溫孵育5 min,隨后滴加到100 ml細(xì)胞稀釋液中。27℃、127 r/min孵育72~96 h至細(xì)胞存活率降至 60%~80%,300×g 離心 5 min,保留上清即P0代病毒。
使用 ExpiSfTMCD 培養(yǎng)基制備連續(xù) 10 倍的病毒稀釋液(10-2、10-3、10-4、10-5),并在培養(yǎng)基中將細(xì)胞稀釋至1.25×106活細(xì)胞/ml。將1 ml 病毒稀釋液添加到24深孔板中(每個稀釋液1孔),隨后將1 ml ExpiSfTMCD培養(yǎng)基添加到無病毒的陰性對照中。將800 μl細(xì)胞懸液添加到8個病毒稀釋液以及陰性對照孔中,并在27℃、227 r/min 搖床中避光孵育14~16 h。將24深孔板中細(xì)胞分別取出,300×g離心5 min,棄上清。細(xì)胞沉淀重懸于100 μl 稀釋的gp64APC抗體中,渦旋 3~5 s,室溫孵育 30 min,PBS洗滌后重懸于1 ml胎牛血清稀釋液中,通過流式細(xì)胞儀進(jìn)行鑒定。
二、蛋白表達(dá)與鑒定
培養(yǎng)細(xì)胞至細(xì)胞密度達(dá)到 5×106~1×107活細(xì)胞/ml,活性≥90%,用培養(yǎng)基稀釋至最終密度為5×106活細(xì)胞/ml,立即加入ExpiSfTM轉(zhuǎn)染增強(qiáng)劑,在127 r/min,27℃搖床上孵育18~24 h。當(dāng)細(xì)胞密度恢復(fù)至5×106~7×106活細(xì)胞/ml,活性≥80%時分別使用病毒感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI,平均每個細(xì)胞的病毒感染數(shù))30、60 以及 120的桿狀病毒感染細(xì)胞,27℃、127 r/min培養(yǎng)直至細(xì)胞活性降至30%以下,300×g離心5min取上清。取200 μl細(xì)胞上清液以及細(xì)胞裂解液分別加入50 μl 5×SDS緩沖液,沸水煮6 min,進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳,在90 V、90 min的狀態(tài)下電轉(zhuǎn)至醋酸纖維膜上。5% 脫脂奶粉封閉1 h,進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳驗證目的蛋白的表達(dá)情況”,純化之后還可以通過SDS-PAGE驗證,結(jié)合灰度分析驗證蛋白的純度
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