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FRAP顯微鏡在化學(xué)和材料科學(xué)中的應(yīng)用

瀏覽次數(shù):1521 發(fā)布日期:2023-5-24  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
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本文作者:蘇華博士
南京中醫(yī)藥大學(xué)/南京大學(xué)

熒光漂白后恢復(fù)技術(shù)(Fluorescence recovery after photobleaching,簡(jiǎn)稱FRAP),是一種獲取微米尺度上分子擴(kuò)散動(dòng)力學(xué)信息的熒光成像技術(shù)。1生物分子功能的實(shí)現(xiàn)與其遷移行為密切相關(guān),F(xiàn)RAP技術(shù)的出現(xiàn)為研究高度動(dòng)態(tài)的生命體系中分子的擴(kuò)散、互作等提供了方便。2這一技術(shù)是由上個(gè)世紀(jì)70年代被Axelrod和Peter等人提出,目前已成為定量獲取細(xì)胞膜或者亞細(xì)胞器上的生物分子時(shí)空信息的重要工具。

熒光漂白是典型的光化學(xué)過(guò)程,然而FRAP技術(shù)在化學(xué)和材料科學(xué)領(lǐng)域應(yīng)用目前相對(duì)較少。事實(shí)上,熒光漂白,往往被化學(xué)工作者視為一種不太好的現(xiàn)象。筆者希望通過(guò)一些應(yīng)用實(shí)例展示這一技術(shù)在化學(xué)和材料科學(xué)領(lǐng)域的價(jià)值,也讓生命科學(xué)領(lǐng)域的研究人員一瞥化學(xué)FRAP過(guò)程的特點(diǎn)。

什么是FRAP?

FRAP的基本原理如圖1所示。對(duì)于一熒光分子均勻標(biāo)記的薄膜(圖1a,e),某一時(shí)刻用一束高功率密度的激光漂白掉某一個(gè)微區(qū)的熒光分子(t=0, 圖1b,f)。由于分子的擴(kuò)散,微區(qū)外未被漂白的熒光分子將和微區(qū)內(nèi)的熒光分子發(fā)生交換,于是漂白區(qū)域的熒光強(qiáng)度將會(huì)逐漸恢復(fù)(圖1c,g和d,h)。

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圖1 FRAP實(shí)驗(yàn)中的熒光圖像(a-d)及其對(duì)應(yīng)的分子擴(kuò)散示意圖(e-h)和熒光動(dòng)力學(xué)曲線(i)

如果漂白區(qū)域內(nèi)的分子都是流動(dòng)的,那么其熒光強(qiáng)度將恢復(fù)到初始水平(前提是漂白區(qū)域遠(yuǎn)小于整個(gè)熒光薄膜)。如果不能完全恢復(fù),則預(yù)示著漂白區(qū)域內(nèi)有不能自由移動(dòng)的分子。選取適合的分子擴(kuò)散模型,對(duì)熒光恢復(fù)曲線(圖1i)進(jìn)行擬合,就可以獲得目標(biāo)蛋白的擴(kuò)散系數(shù)或者擴(kuò)散速率。

FRAP技術(shù)發(fā)展概覽

FRAP技術(shù)興起于上個(gè)世紀(jì)70年代,學(xué)術(shù)界一般認(rèn)為Axelrod和Peter是這一技術(shù)的發(fā)明人。1事實(shí)上,在Axelrod和Peter之前,Liebman和Mu-Ming Poo等人,已經(jīng)發(fā)展出基于光吸收的漂白恢復(fù)技術(shù),或許可以叫做“吸收漂白后恢復(fù)(Absorbance recovery after photobleaching)”,用以研究視紫紅質(zhì)蛋白在視桿細(xì)胞的外節(jié)膜中的定向遷移。
在Axelrod和Peter的研究中3-4,他們使用一束高功率密度的激光漂白掉細(xì)胞膜上某一個(gè)微區(qū)內(nèi)的熒光分子,然后將同一束激光用減光片減弱后激發(fā)熒光,并用光電倍增管記錄該區(qū)域的熒光強(qiáng)度,從而獲得生物分子擴(kuò)散的信息。5-7這些實(shí)驗(yàn)并未使用掃描式的激光照明,因此獲得的主要是時(shí)間維度的分子擴(kuò)散信息。80年代開始,相機(jī)的使用使得不僅可以觀測(cè)到時(shí)間維度的熒光恢復(fù)過(guò)程,還可以在空間上觀測(cè)到FRAP過(guò)程中的分子擴(kuò)散信息。
90年代激光掃描共聚焦顯微鏡(Laser scanning confocal microscopy,簡(jiǎn)稱LSCM)的迅猛發(fā)展促進(jìn)了FRAP技術(shù)的快速發(fā)展。在此之前,進(jìn)行FRAP實(shí)驗(yàn)需要自行搭建儀器裝置,LSCM的出現(xiàn)讓FRAP技術(shù)得到了迅速普及。8早期的共聚焦FRAP實(shí)驗(yàn),先用激光漂白掉某一區(qū)域的熒光,然后同樣使用減光片,通過(guò)移動(dòng)激光或者樣品,獲得FRAP過(guò)程中的分子擴(kuò)散的時(shí)空信息。但直到聲光調(diào)制器(Acousto-optical modulator,簡(jiǎn)稱AOM)和聲光可調(diào)諧濾波器(Acousto-optical tunable filter,簡(jiǎn)稱AOTF)的使用,結(jié)合LSCM顯微鏡激光逐個(gè)像素進(jìn)行掃描(每個(gè)像素停留的時(shí)間通常是微秒)的優(yōu)勢(shì),才使得共聚焦FRAP漂白任意形狀區(qū)域的熒光成為了可能,比如研究高爾基體上相關(guān)的蛋白的遷移。1相比于單光子激發(fā),雙光子激發(fā)激發(fā)體積更小,因此雙光子FRAP技術(shù)也被發(fā)展出來(lái),該技術(shù)在樣本的體相漂白中優(yōu)勢(shì)明顯。9
共聚焦技術(shù)的快速商業(yè)化,使得在共聚焦顯微鏡上實(shí)現(xiàn)FRAP功能成為首選,8但價(jià)格相對(duì)便宜的寬場(chǎng)FRAP技術(shù)也被廣泛使用。寬場(chǎng)FRAP技術(shù)的優(yōu)點(diǎn)在于易于實(shí)現(xiàn)漂白過(guò)程中整個(gè)樣本的快速熒光成像,這對(duì)于共聚焦系統(tǒng)來(lái)說(shuō)是較難實(shí)現(xiàn)的。寬場(chǎng)FRAP技術(shù)在實(shí)現(xiàn)方式上與共聚焦FRAP略有不同:光漂白是借助掃描振鏡快速移動(dòng)高度匯聚的激光束(焦點(diǎn)處光斑尺寸~1微米)來(lái)實(shí)現(xiàn)的,寬場(chǎng)成像則可以使用常規(guī)的汞燈照明或者全內(nèi)反射激發(fā)實(shí)現(xiàn)(Total internal reflection microscopy,簡(jiǎn)稱TIRF)。這意味著普通的倒置熒光顯微鏡,只需購(gòu)置FRAP模塊,即可實(shí)現(xiàn)寬場(chǎng)FRAP功能,降低了成本。
另外,TIRF顯微鏡高的z軸分辨率(~200 nm),搭配FRAP模塊,特別適合研究細(xì)胞膜表面蛋白分子的擴(kuò)散行為。比如商業(yè)化TIRF-cellFRAP系統(tǒng)(圖2),結(jié)合實(shí)時(shí)控制器(Real time controller,簡(jiǎn)稱RTC)和計(jì)算器控制軟件Cellsens,可以根據(jù)用戶需實(shí)時(shí)動(dòng)態(tài)漂白任意形狀的區(qū)域,獲得細(xì)胞膜表面的分子擴(kuò)散信息。
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圖2 奧林巴斯寬場(chǎng)TIRF-cellFRAP系統(tǒng)

FRAP技術(shù)目前已經(jīng)衍生出多種實(shí)驗(yàn)方案。
  • 如果重復(fù)漂白某微小的區(qū)域,那么與該區(qū)域相連的區(qū)域熒光強(qiáng)度將會(huì)逐漸降低,非連通區(qū)域?qū)?huì)凸顯出來(lái)(熒光強(qiáng)度更亮),這一技術(shù)稱為FLIP(即fluorescence loss in photobleaching)。
  • 而若將微區(qū)以外的區(qū)域的熒光全部漂白掉,而觀測(cè)微區(qū)以內(nèi)熒光逐漸變暗的過(guò)程,稱為iFRAP(即inverted FRAP)。
  • 光激活顯微成像技術(shù)(Photoactivation),也被稱為FLAP(即fluorescence loss in after photoactivation)。
FLAP技術(shù)基于特定的光轉(zhuǎn)換分子,在強(qiáng)激光刺激下,這些分子展現(xiàn)出激發(fā)波長(zhǎng)或者發(fā)射波長(zhǎng)的變化,從而使得刺激光照射的區(qū)域熒光信號(hào)被點(diǎn)亮,隨著分子的擴(kuò)散,該區(qū)域熒光強(qiáng)度逐漸下降(如圖3所示,表觀上和iFRAP相同)。FLAP的優(yōu)勢(shì)在于刺激區(qū)域以外的地方無(wú)熒光背景,只觀測(cè)被光激活的分子的動(dòng)力學(xué)。這在生物學(xué)研究中極其有用,譬如在自噬研究中,如果熒光激活自噬小體上的蛋白(被光激活熒光蛋白標(biāo)記),就可以觀測(cè)到自噬小體與溶酶體融合的過(guò)程,而之后產(chǎn)生的自噬小體蛋白因未被光激活就不會(huì)產(chǎn)生熒光干擾,就可以獲得自噬小體的壽命(半衰期~25min),這是傳統(tǒng)的FRAP技術(shù)難以做到的。11
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圖3 FRAP過(guò)程(a)和FLAP過(guò)程(b)對(duì)比

FRAP技術(shù)在化學(xué)和材料科學(xué)領(lǐng)域的最新的應(yīng)用實(shí)例

用FRAP顯微鏡研究一些人工分子膜體系,其方法與研究細(xì)胞膜表面膜蛋白的遷移類似,在此不再贅述。

下面重點(diǎn)介紹幾個(gè)比較新的實(shí)例——利用FRAP顯微鏡研究復(fù)雜的光化學(xué)和光物理過(guò)程。這些體系盡管同樣表現(xiàn)出FRAP行為,但卻不是分子物種的擴(kuò)散引起,其本質(zhì)是化學(xué)反應(yīng)或者光物理過(guò)程。這些應(yīng)用充分展現(xiàn)了FRAP技術(shù)在化學(xué)和材料科學(xué)研究中的價(jià)值。

  • 雙光子FRAP顯微鏡研究鈣鈦礦材料的自修復(fù)行為9
鈣鈦礦材料(結(jié)構(gòu)通式ABX3)因其獨(dú)特的光電性質(zhì),近年來(lái)在太陽(yáng)能電池領(lǐng)域引起廣泛的研究興趣。經(jīng)過(guò)近幾年的發(fā)展,鈣鈦礦太陽(yáng)能電池的光電轉(zhuǎn)換效率迅速突破了20%,展現(xiàn)出巨大的應(yīng)用前景。另一方面,與其它半導(dǎo)體材料顯著不同的是,鈣鈦礦材料在光、熱或者潮濕的條件下不穩(wěn)定,影響太陽(yáng)能電池的效率,因而其穩(wěn)定性問(wèn)題也備受關(guān)注。有意思的是,近期發(fā)現(xiàn),鈣鈦礦材料具有自修復(fù)特性,比如光照引起的結(jié)構(gòu)損傷,在黑暗條件下會(huì)逐漸恢復(fù)。這衍生出一個(gè)科學(xué)問(wèn)題:鈣鈦礦材料的自修復(fù)行為,與其接觸的界面或環(huán)境有關(guān),還是材料的本征(體相)屬性呢?
2018年,以色列魏茨曼科學(xué)研究所Ceratti等人,使用共聚焦顯微鏡上搭配的雙光子FRAP裝置回答了這一問(wèn)題,發(fā)現(xiàn)這是APbBr3(X=MA(甲胺),F(xiàn)A(甲脒),Cs+)鈣鈦礦的本征屬性,且自修復(fù)的速度與A位陽(yáng)離子的種類密切相關(guān)。在研究中,他們利用雙光子激發(fā)照明體積小的優(yōu)點(diǎn),用波長(zhǎng)為800 nm的激光照射了距離鈣鈦礦單晶表面110 mm處的體相區(qū)域(光刺激破壞材料結(jié)構(gòu),令A(yù)PbBr3分解成ABr,Pb(0),Br2,ABr3等),發(fā)現(xiàn)APbBr3表現(xiàn)出FRAP行為,證明了鈣鈦礦自修復(fù)是其本征屬性(如圖4所示),而與表界面或者水、空氣等無(wú)關(guān)。有趣的是,與生物膜相關(guān)的FRAP實(shí)驗(yàn)相比,鈣鈦礦自修復(fù)過(guò)程表現(xiàn)出更長(zhǎng)的熒光恢復(fù)時(shí)間(幾十分鐘)。

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圖4 雙光子FRAP研究鈣鈦礦單晶的自修復(fù)行為

研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),A位陽(yáng)離子顯著影響鈣鈦礦單晶的自修復(fù)行為:FAPbBr3的自修復(fù)速率最快,MAPbBr3次之,而CsPbBr3自修復(fù)速率最慢(圖5)。這一結(jié)果與鈣鈦礦領(lǐng)域的共識(shí)相悖——全無(wú)機(jī)CsPbBr3鈣鈦礦比有機(jī)-無(wú)機(jī)雜化鈣鈦礦具有更高的化學(xué)穩(wěn)定性。作者提出,不同陽(yáng)離子的鈣鈦礦分解,盡管產(chǎn)生相似的中間體,但中間體的物理化學(xué)性質(zhì)不同,MAPbBr3和FAPbBr3分解產(chǎn)生的ABr3物種是氣體,易于與分解產(chǎn)生的Pb(0)物種重新結(jié)合形成APbBr3結(jié)構(gòu),而CsBr3是固體,因而自修復(fù)速度最慢。作者進(jìn)一步研究了漂白功率對(duì)鈣鈦礦材料的自修復(fù)行為的影響,發(fā)現(xiàn)總體上還是FAPbBr3自修復(fù)速率最快,而且漂白功率越大材料自修復(fù)的時(shí)間越長(zhǎng)(可達(dá)數(shù)小時(shí)),但是漂白功率過(guò)大材料將無(wú)法修復(fù)(圖5)。更為有趣的是,MAPbBr3在低的漂白功率下會(huì)表現(xiàn)出光致亮化現(xiàn)象(LP8%,圖5),作者推斷可能是低功率激光照射產(chǎn)生了一些有利于發(fā)光的淺缺陷或者提高了材料的結(jié)晶度所致。

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圖5 激光漂白功率和陽(yáng)離子種類對(duì)APbBr3自修復(fù)速率的影響(LP是相對(duì)激光功率,左側(cè)為鈣鈦礦的晶胞結(jié)構(gòu)及MA和FA的化學(xué)結(jié)構(gòu))。虛線框表示熒光完全恢復(fù),點(diǎn)框表示熒光僅部分恢復(fù)。每個(gè)小方格對(duì)應(yīng)的鈣鈦礦單晶區(qū)域的尺寸為24.8´19 mm
  • 利用FRAP技術(shù)研究單個(gè)有機(jī)分子晶體當(dāng)中的化學(xué)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)12
溶液相或者氣相中的化學(xué)反應(yīng),反應(yīng)物分子彼此間相隔較遠(yuǎn),因此表現(xiàn)出一級(jí)反應(yīng)動(dòng)力學(xué),即產(chǎn)物濃度呈現(xiàn)指數(shù)型變化。固相反應(yīng)中,反應(yīng)物或者產(chǎn)物之間距離較近,可能呈現(xiàn)顯著的協(xié)同效應(yīng),那么固相下的化學(xué)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)到底會(huì)呈現(xiàn)什么規(guī)律呢?
2020年,加州大學(xué)河濱分校Christopher J. Bardeen課題組,使用FRAP顯微鏡測(cè)量單個(gè)有機(jī)分子晶體——4-甲基-9羧基蒽(4-fluoro-9-anthracenecarboxylic acid,4F-9AC)的光化學(xué)二聚產(chǎn)物在室溫下的固相熱分解動(dòng)力學(xué)。由于4F-9AC呈現(xiàn)出激基締合物熒光(excimer,Ex=405 nm, Em=510 nm),而4F-9AC二聚物不具有excimer熒光,Christopher J. Bardeen使用自行搭建的FRAP顯微鏡研究了4F-9AC二聚物分子的固相熱分解過(guò)程(刺激激光和探測(cè)激光均為405 nm,但后者的功率密度是前者的1%)。他們利用刺激激光去誘導(dǎo)4F-9AC二聚物分子的形成,而用探測(cè)激光觀測(cè)其熱分解動(dòng)力學(xué),發(fā)現(xiàn)該過(guò)程表現(xiàn)出FRAP行為(圖6a)。有趣的是,該FRAP過(guò)程在高的刺激功率下呈現(xiàn)出S型動(dòng)力學(xué),而非通常的FRAP實(shí)驗(yàn)中指數(shù)或者近指數(shù)的熒光恢復(fù)過(guò)程,顯著偏離了一級(jí)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)(圖6b)。這暗示高濃度的4F-9AC二聚物分子時(shí)該熱分解過(guò)程被抑制,也就是說(shuō)4F-9AC二聚物彼此之間存在相互作用。作者認(rèn)為,這是由于高濃度4F-9AC二聚物分子時(shí)彼此間的氫鍵作用阻礙二聚物的解聚所致,而低濃度時(shí)二聚物與4F-9AC之間的氫鍵在熱力學(xué)反而有利于熱分解過(guò)程(圖6c)。

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圖6 利用FRAP顯微鏡研究4F-9AC二聚物分子的固相熱分解過(guò)程。(a)FRAP過(guò)程和其對(duì)應(yīng)的分子結(jié)構(gòu)。(b)刺激功率對(duì)FRAP動(dòng)力學(xué)的影響。(c)4F-9AC分子之間通過(guò)羧基形成氫鍵的示意圖
更有趣的是,研究發(fā)現(xiàn)該FRAP動(dòng)力學(xué)不僅與刺激光的功率密度有關(guān),還與探測(cè)光的照射方式有關(guān)(功率不變,連續(xù)或者間歇照射):在低的刺激功率下,探測(cè)光連續(xù)或者間歇照射,其FRAP動(dòng)力學(xué)是一致的;但是高的刺激功率下,探測(cè)光如果連續(xù)照射,4F-9AC二聚物分子僅部分分解,而間斷性照射則完全分解(圖7ai)。同次實(shí)驗(yàn)中,探測(cè)光先連續(xù)照射再間歇式照射,也可以觀測(cè)到這種差別(圖7aii)。為什么探測(cè)光照明方式不同會(huì)造成這種差異呢?仔細(xì)研究發(fā)現(xiàn),低功率探測(cè)光持續(xù)照射下,未經(jīng)刺激光照射的樣本,1h后會(huì)最終達(dá)到和刺激光照射的樣品一樣的熒光強(qiáng)度(圖7b)?紤]到樣品未被光損傷,且刺激光照射后黑暗條件下4F-9AC二聚物分子會(huì)熱分解完全。這意味著弱功率密度的探測(cè)光照射,會(huì)形成4F-9AC二聚物分子(盡管動(dòng)力學(xué)較慢),最終達(dá)到穩(wěn)態(tài),而強(qiáng)刺激光照射之后再弱探測(cè)照射,會(huì)讓有機(jī)分子晶體更快的到達(dá)穩(wěn)態(tài)。也就是說(shuō),借助兩束激光,可以方便的調(diào)控不穩(wěn)定物種——4F-9AC二聚物分子的濃度。
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圖7 探測(cè)光的照射方式對(duì)4F-9AC二聚物分子的固相熱分解過(guò)程的影響。(a)兩種刺激功率和不同的探測(cè)光照射方式下的FRAP過(guò)程(i和ii分別為同一樣品的不同次和同次實(shí)驗(yàn),紅色代表高的刺激激光功率,點(diǎn)代表間歇式探測(cè)光照射)。(b)低功率探測(cè)激光持續(xù)照射下,樣本未經(jīng)刺激光照射和照射后的熒光動(dòng)力學(xué)曲線(紅色代表未經(jīng)刺激激光照射)
  • 研究二維過(guò)渡金屬硫族化合物的光物理機(jī)制13
上面兩個(gè)例子展示了FRAP技術(shù)在研究光化學(xué)反應(yīng)中的價(jià)值。2021年,南京大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院王偉教授課題組和徐偉高教授課題組合作,首次利用FRAP顯微鏡研究了材料的光物理過(guò)程:實(shí)現(xiàn)了對(duì)二維過(guò)渡金屬硫族化合物單層(transition metal dichalcogenide monolayers,1L-TMDs)的光生載流子動(dòng)力學(xué)的同步觀測(cè)和操控,即時(shí)空操控了二維單層半導(dǎo)體的熒光暗態(tài),如圖8所示。
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圖8 借助FRAP顯微鏡時(shí)空操控二維單層半導(dǎo)體的熒光暗態(tài)的示意圖

二維過(guò)渡金屬硫族化合物單層(1L-TMDs,如MX2, M=W, Mo,  X=S, Se),因其高的熒光量子產(chǎn)率、易通過(guò)光/電調(diào)控的載流子濃度、高激子結(jié)合能(幾十meV到數(shù)百meV)、顯著的激子–激子湮滅效應(yīng)(EEA)等特點(diǎn),近年來(lái)備受關(guān)注。另一方面,3個(gè)原子層的厚度的1L-TMDs表面具有大量的表面缺陷(主要是硫族元素缺陷),對(duì)其發(fā)光性能影響顯著。為此,作者以1L-TMDs為模型半導(dǎo)體,使用商用奧林巴斯FRAP顯微鏡研究了其光生載流子間的相互作用(圖9A所示),意外發(fā)現(xiàn)1L-TMDs表現(xiàn)出類似生物膜系統(tǒng)的FRAP行為,如圖9B和C所示。眾所周知,生物膜系統(tǒng)中的FRAP現(xiàn)象是由于生物膜的流動(dòng)性(膜分子擴(kuò)散)決定的。研究發(fā)現(xiàn),1L-WS2熒光恢復(fù)過(guò)程中半峰寬(FWHM)逐漸減小,明顯不同于生物膜FRAP過(guò)程中的FWHM逐漸增大的過(guò)程(圖9D和E)。作者提出1L-WS2的這一過(guò)程為光物理過(guò)程,即1L-TMDs的FRAP行為源于光生載流子之間以及載流子與缺陷之間的相互作用(而非表面原子的擴(kuò)散)。作者對(duì)光生載流子濃度進(jìn)行了計(jì)算(以一個(gè)光子產(chǎn)生一個(gè)載流子估計(jì)),探測(cè)激光和泵浦激光功率分別為5 kW cm-2和40.8 kW cm-2時(shí),對(duì)應(yīng)產(chǎn)生的載流子濃度分別為~4.88×108 cm-2和~8.34×1012 cm-2(相鄰激子之間的距離分別為~452.5 nm和~3.5 nm)。因此,光斑尺寸為~0.7 mm泵浦激光刺激,將會(huì)引發(fā)強(qiáng)烈的激子間相互作用(譬如EEA效應(yīng)),而探測(cè)激光不會(huì)顯著引起這一效應(yīng)。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)這一FRAP現(xiàn)象具有普遍性:1L-WSe2也表現(xiàn)出該FRAP行為,但是熒光恢復(fù)動(dòng)力學(xué)較1L-WS2更快。

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圖9 1L-WS2具有類似于生物膜體系的FRAP行為。(A) FRAP顯微鏡示意圖。探測(cè)光和泵浦光(泵浦時(shí)間為3–30 ms)均為連續(xù)光源(CW),波長(zhǎng)分別為488 nm和405 nm,在樣品表面光斑大小分別為~100mm和~0.7mm,功率分別為5 kW cm-2和40.8 kW cm-2,成像速度29.4幀/秒,樣品置于溫濕度可控的腔室中。(B) 1L-WS2具有FRAP行為。泵浦光刺激后1L-WS2熒光圖像上呈現(xiàn)高斯分布的熒光暗區(qū)。(C))1L-WS2的 FRAP過(guò)程呈現(xiàn)單指數(shù)熒光恢復(fù)的特征。(D, E) 1L-WS2在熒光恢復(fù)過(guò)程中半峰寬(FWHM)逐漸減小
為了深入理解這一FRAP現(xiàn)象的本質(zhì),作者原位測(cè)量了1L-WS2在這一過(guò)程中的拉曼光譜,發(fā)現(xiàn)該過(guò)程中1L-WS2結(jié)構(gòu)并未發(fā)生改變(譬如缺陷形成或者產(chǎn)生相變),排除了材料結(jié)構(gòu)變化導(dǎo)致的FRAP行為。原位熒光光譜測(cè)試表明,泵浦激光刺激之后,出現(xiàn)了明顯的帶電激子(X-)發(fā)射峰(位于1.97 eV,中性激子X(jué)0位于2.02 eV),且熒光恢復(fù)過(guò)程中X-相對(duì)于X0的比例逐漸減。▓D10A–C)。這一結(jié)果確認(rèn)了X-的形成是泵浦激光照射導(dǎo)致的,并在熒光恢復(fù)過(guò)程中逐步轉(zhuǎn)變?yōu)閄。由于X-的形成需要自由載流子,這暗示著高功率的泵浦激光照射導(dǎo)致了自由載流子的形成(即光摻雜效應(yīng))。如何理解這一現(xiàn)象呢?在本工作中,泵浦激光照射產(chǎn)生的載流子濃度范圍為3.27×1011–2.9×1013cm-2,如此高的載流子濃度下,電子–空穴之間的庫(kù)侖相互作用被削弱,激子–激子碰撞的幾率大大增加,激子容易解離成自由載流子(俄歇電離)。熒光壽命測(cè)試進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),泵浦激光刺激后,熒光壽命從刺激前的~440 ps縮短到了~350 ps,隨后又逐漸恢復(fù)到~440 ps,與原位熒光光譜測(cè)量時(shí)X-的演化相一致。這些結(jié)果確證,1L-WS2熒光暗態(tài)是帶電激子的俄歇非輻射過(guò)程導(dǎo)致的;谶@些實(shí)驗(yàn)事實(shí),作者提出了1L-WS2的FRAP過(guò)程的光物理機(jī)制(圖10D)。

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圖10  1L-WS2的FRAP過(guò)程熒光暗態(tài)的本質(zhì)。(A)原位熒光光譜表征。(B) FRAP機(jī)理。泵浦光照射下,1L-WS2瞬間注入大量載流子,電子–空穴之間庫(kù)侖相互作用被削弱,激子–激子碰撞幾率大大增加,引起激子解離,表面缺陷捕獲解離的空穴后,1L-WS2呈現(xiàn)帶電態(tài),帶電激子的俄歇非輻射過(guò)程導(dǎo)致了1L-WS2的熒光暗態(tài)。隨著被捕獲空穴從缺陷處逐漸釋放,1L-WS2恢復(fù)到電中性狀態(tài),熒光強(qiáng)度逐漸恢復(fù)到初始的亮態(tài)
相對(duì)于零維的量子點(diǎn),2D 1L-TMDs大平面的特性為位置可控的操控載流子提供了方便。為此,作者選擇了尺寸為~10mm的1L-WS2,交替改變泵浦光和探測(cè)光功率,探究其對(duì)FRAP動(dòng)力學(xué)的影響。研究發(fā)現(xiàn),固定探測(cè)激光的功率,隨著泵浦激光功率的增加(1.6–142.8 kW cm-2),1L-WS2熒光暗斑的FWHM逐漸增大(最大FWHM約為~4mm),F(xiàn)RAP過(guò)程的動(dòng)力學(xué)逐漸變慢(圖11A, B)。有趣的是,固定泵浦激光的功率,隨著探測(cè)激光功率的增加(0.17–166.7 W cm-2),F(xiàn)RAP過(guò)程的動(dòng)力學(xué)逐漸加快,1L-WS2熒光暗斑的FWHM逐漸減。‵WHM = ~0.5–5 mm,圖11C, D),這說(shuō)明激發(fā)光能夠促進(jìn)被捕獲空穴從缺陷處釋放出來(lái)(即光致去摻雜)。需要指出的是,盡管光摻雜效應(yīng)在2D 1L-TMDs發(fā)光材料領(lǐng)域已經(jīng)被廣泛報(bào)道,但這一光致去摻雜效應(yīng)尚未見諸報(bào)道。這意味著,盡管大量存在的硫族元素缺陷在工作狀態(tài)下可能捕獲光生載流子降低2D 1L-TMDs發(fā)光效率,光照也能夠?qū)⑦@些被捕獲的載流子釋放出來(lái),確保2D 1L-TMDs處于電荷平衡態(tài)。這一發(fā)現(xiàn)或許能夠解釋2D 1L-TMDs熒光閃爍不顯著的現(xiàn)象(在W cm-2這個(gè)激發(fā)條件下)。
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圖11 泵浦激光和探測(cè)激光功率對(duì)1L-WS2納米片的FRAP動(dòng)力學(xué)的影響。(A, B) 固定探測(cè)激光功率,查看泵浦激光功率的影響。(C, D) 固定泵浦激光功率,查看探測(cè)激光功率的影響

展望

FRAP顯微鏡自上個(gè)世紀(jì)70年代被發(fā)展出來(lái),目前主要被生物學(xué)家用作研究生物體系中生物分子的擴(kuò)散和遷移,它在揭示生物分子功能和研究分子互作方面發(fā)揮了重要作用。然而,除了一些類生物膜分子的擴(kuò)散研究,F(xiàn)RAP顯微鏡尚未被廣大化學(xué)工作者所熟知和采用。
總體而言,生物體系中的FRAP實(shí)驗(yàn)聚焦在觀察生物分子的遷移。本文所列舉的幾個(gè)用FRAP顯微鏡研究光化學(xué)和光物理的例子表明,F(xiàn)RAP過(guò)程在化學(xué)領(lǐng)域也廣泛存在。與生物體系中的FRAP所不同的是,這些化學(xué)領(lǐng)域的FRAP過(guò)程與分子的擴(kuò)散往往沒(méi)有顯著的關(guān)聯(lián),而是與物質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變有關(guān),即分子層次可逆的化學(xué)反應(yīng)或者電子位態(tài)的可逆改變。總結(jié)起來(lái),化學(xué)領(lǐng)域的FRAP過(guò)程,大致有以下幾個(gè)特點(diǎn):
1)時(shí)間維度的FRAP過(guò)程,往往是局部區(qū)域可逆的物質(zhì)結(jié)構(gòu)改變所致;瘜W(xué)領(lǐng)域的FRAP過(guò)程可呈現(xiàn)毫秒到小時(shí)的時(shí)間跨度。
2)與生物體系中因物種擴(kuò)散而產(chǎn)生的FRAP現(xiàn)象相比,化學(xué)FRAP過(guò)程往往表現(xiàn)出FWHM逐漸減小的特點(diǎn),這一現(xiàn)象很可能與刺激激光束的光強(qiáng)呈高斯分布有關(guān)。
3)除了刺激光強(qiáng)度影響FRAP動(dòng)力學(xué),探測(cè)光也會(huì)顯著影響FRAP動(dòng)力學(xué),根據(jù)化學(xué)體系的不同,可以呈現(xiàn)抑制恢復(fù)或者促進(jìn)恢復(fù)的效果。
4)化學(xué)領(lǐng)域所觀測(cè)到的FRAP現(xiàn)象,須結(jié)合多種原位結(jié)構(gòu)表征手段探究變化本質(zhì),不能簡(jiǎn)單歸因于原子、分子或者電子擴(kuò)散,更不能生搬硬套生物膜FRAP的數(shù)學(xué)模型。

總之,化學(xué)乃變化之學(xué)。這些FRAP案例,生動(dòng)的展示了FRAP在操控化學(xué)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)和物質(zhì)狀態(tài)上的重要價(jià)值。筆者堅(jiān)信,未來(lái)將會(huì)涌現(xiàn)更多有趣的例子,充分發(fā)揮 FRAP這一研究工具在化學(xué)和材料科學(xué)領(lǐng)域的價(jià)值。

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